Summary

3-D celle kultur-systemet for å studere invasjonen og evaluere legemiddelselskap i blærekreft

Published: September 13, 2018
doi:

Summary

Prosesser for blære kreft invasjonen representerer muligheter for biomarkør og terapeutiske utvikling. Her presenterer vi en blære kreft invasjonen modell som inkorporerer 3D kultur svulst spheroids, tidsinnstilt bildebehandling og AC confocal mikroskopi. Denne teknikken er nyttig for å definere funksjonene av invasiv og screening terapeutiske agenter.

Abstract

Blærekreft er en betydelig helseproblem. Det er anslått at mer enn 16.000 mennesker vil dø i år i USA fra blærekreft. Mens 75% av blære kreft er ikke-invasiv og neppe å metastase, videre ca 25% til en invasiv vekstmønster. Opp til halvparten av pasienter med invasiv kreft vil utvikle dødelige metastatisk tilbakefall. Forstå mekanismen av invasiv progresjon i blærekreft er derfor avgjørende å forutsi pasientens utfall og hindre dødelige metastaser. I denne artikkelen presenterer vi en tredimensjonal kreft invasjonen modell som lar innlemmelse av kreftceller og stromal komponenter å etterligne i vivo betingelser forekommer i blæren svulst microenvironment. Denne modellen gir mulighet til å observere invasiv prosessen i sanntid ved hjelp av tidsinnstilt bildebehandling, avhøre molekylær veier involvert med AC confocal immunofluorescent bildebehandling og skjermen forbindelser med potensial til å blokkere invasjonen. Mens denne protokollen fokuserer på blærekreft, er det sannsynlig at lignende metoder kan brukes til å undersøke invasjon og motilitet i andre svulst typer også.

Introduction

Invasjonen er et viktig skritt i kreft progresjon, som kreves for metastasering, og er forbundet med lavere overlevelse og dårlig prognose hos pasienter. I menneskelige blærekreft, vanligste malignancy av urinveiene som forårsaker ca 165,000 dødsfall per år over hele verden, er kreft stadium, behandling og prognose direkte relatert til tilstedeværelse eller fravær av invasjonen1. Rundt 75% av tilfellene av blærekreft administrert ikke-muskel invasiv og er av lokale resection. I kontrast, muskel-invasiv blære kreft (ca 25% av alle tilfeller) er aggressiv svulster med høye metastatisk og behandlet med aggressiv Multimodalitet terapi2,3. Derfor er forstå molekylær veier som utløser invasjonen avgjørende å bedre karakterisere risikoen for invasiv progresjon og utvikle terapeutiske tiltak som kan hindre invasiv progresjon.

Svulst invasiv progresjon skjer i komplekse tredimensjonale (3D) omgivelser og innebærer svulst celle interaksjon med andre kreftceller, stroma, kjelleren membran og andre typer cellene immunceller, fibroblaster, muskelceller og vaskulære endotelceller. Permeable støtte (f.eksTranswell) analysen systemer er ofte ansatt å quantitate kreft cellen invasjonen4, men disse systemene er begrenset fordi de ikke tillater mikroskopiske overvåking av invasjonen i sanntid og henting av prøver for ytterligere flekker og molekylære analyse er utfordrende. Utvikling av et 3D blæren svulst spheroid system å studere invasjonen er ønskelig fordi det tillater inkorporasjon av definerte microenvironmental komponenter av in vitro -systemer.

I denne protokollen, beskriver vi et system for å avhøre invasiv prosessene av menneskelig blære kreftceller ved hjelp av en 3D-formet invasjonen analysen omfatter kollagen-baserte gel matriser og AC confocal mikroskopi spesialopplæring for etterforskere overvåke celle motilitet og invasjonen i sanntid (figur 1A). Dette systemet er allsidig og kan endres for å avhøre ulike stromal/svulst innstillinger. Det kan ta de fleste blæren kreftcelle linjer eller primære blæren svulster og flere stromal celler som kreft tilhørende fibroblaster og immunceller5,6,7. Denne protokollen beskriver en matrise som består av type-1 kollagen, men kan endres for å innlemme andre molekyler som fibronectin, laminin eller andre kollagen proteiner. Invasiv prosesser kan følges for 72 h eller mer avhengig av evnen av mikroskopet og brukes. Fiksering og immunofluorescence flekker av svulsten innebygd i 3D-matrise før, under og etter invasjonen lar avhør av proteiner upregulated i invasiv celler, noe som gir viktig informasjon som vanligvis fraværende eller vanskelig å samle bruke andre 3D kultur modeller. Dette systemet kan også benyttes til skjermen forbindelser som blokkere invasjonen, samt avgrense signalveier påvirket av slike forbindelser.

Protocol

1. voksende kreft Spheroids Vokser fra linjer Kultur menneskelige blære kreftceller under konvensjonelle tilhenger celle oppdrettsforholdene og opprettholde i et 37 ° C inkubator leveres med 5% CO2. Opprettholde cellene på < 90% confluency.Merk: kultur medier brukt er Dulbeccos endret minimum viktige medier (DMEM) som inneholder 4.5 g/L D-glukose, L-Glutamine, 110 mg/L natrium pyruvate, og leveres med 10% fosterets bovin serum (FBS) gjennom denne protokollen. …

Representative Results

Vellykket etablering av invasiv blære kreft svulst spheroid krever dannelsen av passende størrelse svulst spheroids linjer eller primære svulster. Figur 2 En viser riktig størrelse spheroids fra fire menneskelige blære kreft cellelinjer (UM-UC9, UM-UC13, UM-UC14, 253J og UM-UC18). Figur 2 B viser en svulst-formet av en BBN generert musen blæren svulst i kollagen matrise. Disse spheroids ble…

Discussion

Her beskriver vi en 3D svulst spheroid modell som gjør at sanntid observasjon av blære kreft invasjonen som er kritisk for kreft progresjon og metastasering. Dette systemet er mottakelig for inkorporering av ulike stromal og cellulær komponenter slik at etterforskerne å bedre recapitulate vev microenvironment hvor blære kreft invasjonen finner sted. Blære kreft spheroids kan genereres fra ulike kilder som linjer (inkludert genmodifiserte cellelinjer nyttig for undersøkelse av signalnettverk trasé som påvirker in…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke laboratorium av Dr. Howard Crawford (University of Michigan) for kundestøtte og formidling materialer og utstyr for denne studien, og Alan Kelleher for kundestøtte.

Dette arbeidet ble finansiert av tilskudd fra University of Michigan Rogel Cancer Center Core Grant CA046592-26S3, NIH K08 CA201335-01A1 (PLP), BKAN YIA (PLP), NIH R01 CA17483601A1 (DMS).

Materials

Human bladder cancer cell lines UM-UC9, UM-UC13, UM-UC14, UM-UC18, 253J
DMEM cell culture medium Thermo Fisher Scientific 11995065
Fetal bovine serum  Thermo Fisher Scientific 26140079
Antibiotic-Antimycotic (100X) Thermo Fisher Scientific 15240062
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Thermo Fisher Scientific 25200056
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich A3803
Phosphate-buffered saline (PBS), pH 7.4  Thermo Fisher Scientific 10010023
Costar Ultral-low attachment 6-well cluster  Corning 3471
Conventional inverted microscope  Carl Zeiss 491206-0001-000 General use for cell culture and checking spheroids
Collagen type 1 from rat tail, high concentration  Corning 354249
Nunc Lab-Tek II Chambered Coverglass Thermo Fisher Scientific 155382
Confocal microscope  Carl Zeiss LSM800 A confocal miscoscope with climate chamber, multi-location imaging, and Z-stack scanning function 
Cryostat micromtome Leica Biosystems CM3050 S
Zen 2 Image processing software  Carl Zeiss
Paraformaldehyde solution Electron Microscopy Sciences 15710
ImmEdge Hydrophobic Barrier PAP Pen Vector Laboratories  H4000
O.C.T compound  Thermo Fisher Scientific 23730571
Hoechst 33342 solution  Thermo Fisher Scientific 62249
Anti-ATDC (Trim29) antibody Sigma-Aldrich HPA020053
Anti-Cytokeratin 14 antibody Abcam ab7800
Anti-Vimentin antibody Abcam ab24525
ProLong Diamond  Mounting medium

References

  1. American Cancer Society. . The Society. , (2018).
  2. Knowles, M. A., Hurst, C. D. Molecular biology of bladder cancer: new insights into pathogenesis and clinical diversity. Nature Reviews Cancer. 15 (1), 25-41 (2015).
  3. DeGeorge, K. C., Holt, H. R., Hodges, S. C. Bladder Cancer: Diagnosis and Treatment. American Family Physician. American Family Physician. 96 (8), 507-514 (2017).
  4. Repesh, L. A. A new in vitro. assay for quantitating tumor cell invasion. Invasion Metastasis. 9 (3), 192-208 (1989).
  5. Doillon, C. J., Gagnon, E., Paradis, R., Koutsilieris, M. Three-dimensional culture system as a model for studying cancer cell invasion capacity and anticancer drug sensitivity. Anticancer Research. 24 (4), 2169-2177 (2004).
  6. Duong, H. S., Le, A. D., Zhang, Q., Messadi, D. V. A novel 3-dimensional culture system as an in vitro. model for studying oral cancer cell invasion. International Journal of Expermintal Pathology. 86 (6), 365-374 (2005).
  7. Rebelo, S. P., et al. 3D-3-culture: A tool to unveil macrophage plasticity in the tumour microenvironment. Biomaterials. , 185-197 (2018).
  8. Vasconcelos-Nobrega, C., Colaco, A., Lopes, C., Oliveira, P. A. Review: BBN as an urothelial carcinogen. In Vivo. 26 (4), 727-739 (2012).
  9. Palmbos, P. L., et al. ATDC/TRIM29 Drives Invasive Bladder Cancer Formation through miRNA-Mediated and Epigenetic Mechanisms. Cancer Research. 75 (23), 5155-5166 (2015).
  10. Wang, L., et al. ATDC induces an invasive switch in KRAS-induced pancreatic tumorigenesis. Genes & Development. 29 (2), 171-183 (2015).
  11. Fife, C. M., McCarroll, J. A., Kavallaris, M. Movers and shakers: cell cytoskeleton in cancer metastasis. British Journal of Pharmacology. 171 (24), 5507-5523 (2014).
  12. Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Control of microtubule organization and dynamics: two ends in the limelight. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 16 (12), 711-726 (2015).
  13. Cheung, K. J., Gabrielson, E., Werb, Z., Ewald, A. J. Collective invasion in breast cancer requires a conserved basal epithelial program. Cell. 155 (7), 1639-1651 (2013).
  14. Kidd, M. E., Shumaker, D. K., Ridge, K. M. The role of vimentin intermediate filaments in the progression of lung cancer. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 50 (1), 1-6 (2014).
  15. Lowery, J., Kuczmarski, E. R., Herrmann, H., Goldman, R. D. Intermediate Filaments Play a Pivotal Role in Regulating Cell Architecture and Function. Journal of Biological Chemistry. 290 (28), 17145-17153 (2015).
  16. Papafotiou, G., et al. KRT14 marks a subpopulation of bladder basal cells with pivotal role in regeneration and tumorigenesis. Nature Communications. 7, 11914 (2016).
  17. Sun, W., Lim, C. T., Kurniawan, N. A. Mechanistic adaptability of cancer cells strongly affects anti-migratory drug efficacy. Journal of the Royal Society Interface. 11 (99), (2014).
  18. Goddette, D. W., Frieden, C. Actin polymerization. The mechanism of action of cytochalasin D. Journal of Biological Chemistry. 261 (34), 15974-15980 (1986).
  19. Berrier, A. L., Yamada, K. M. Cell-matrix adhesion. Journal of Cellular Physiology. 213 (3), 565-573 (2007).
  20. Lee, J. H., et al. Collagen gel three-dimensional matrices combined with adhesive proteins stimulate neuronal differentiation of mesenchymal stem cells. Journal of the Royal Society Interface. 8 (60), 998-1010 (2011).
  21. LeBleu, V. S., Macdonald, B., Kalluri, R. Structure and function of basement membranes. Experimental Biology and Medicine. 232 (9), 1121-1129 (2007).
  22. Rakha, E. A., et al. Invasion in breast lesions: the role of the epithelial-stroma barrier. Histopathology. , (2017).
  23. Erler, J. T., Weaver, V. M. Three-dimensional context regulation of metastasis. Clinical & Experimental Metastasis. 26 (1), 35-49 (2009).

Play Video

Cite This Article
Wang, Y., Day, M. L., Simeone, D. M., Palmbos, P. L. 3-D Cell Culture System for Studying Invasion and Evaluating Therapeutics in Bladder Cancer. J. Vis. Exp. (139), e58345, doi:10.3791/58345 (2018).

View Video