Summary

Lentiviral vektör-aracılı gen terapisi tetkikine Ex Vivo domuz otolog nakli için

Published: November 04, 2018
doi:

Summary

Bu iletişim kuralı modelleri otolog hücre transplantasyonu ile metabolik hastalıkların tedavisi için domuz hepatosit yalıtım ve ex vivo gen teslim açıklamak için tasarlanmıştır. Her ne kadar bu modelle başarılı terapi lehine benzersiz avantajlar sahiptir, uygulama ek hastalıklar ve göstergeler yönelik olarak ilgili bir temelidir.

Abstract

Gen tedavisi karaciğer metabolizmasının birçok doğuştan hataları tedavisi için ideal bir seçimdir. Ex vivo, lentiviral vektörler kullanılmıştır başarıyla insanlarda, hematopoetik birçok hastalığın tedavisinde kullanımları vector öğesinin ana bilgisayar genom entegre yeteneği nedeniyle istikrarlı transgene ifade sunduğundan. Bu yöntem ex vivo gen terapisi tetkikine, uygulamaya büyük bir hayvan modeli kalıtsal tyrosinemia türü gösterir ben. Bu işlem 1) birincil tetkikine otolog donör/alıcı hayvandan 2 yalıtım oluşur) bir lentiviral vektör ve düzeltilmiş tetkikine yolu ile taşınabilir 3) otolog nakli ile hepatosit iletim yoluyla ex vivo gen teslim Enjeksiyon damar. Başarı yöntemi genellikle karaciğer rezeksiyonu, uygun tetkikine izole hücreler yeniden engrafting, yüksek yüzdesi iletim için yeterli yalıtım için çıkarılan numune taşıma dikkatli verimli ve steril kaldırılması üzerine dayanır ve Aseptik cerrahi işlemler boyunca enfeksiyonu önlemek için. Bu adımlardan herhangi birini teknik başarısızlık otolog nakli için uygun transduced tetkikine düşük verim veya donör/alıcı hayvan enfeksiyonu neden olur. Düzeltilmiş hücre engraftment bile küçük bir yüzdesi için karaciğer repopulation sağlıklı hücreler üzerinde güçlü bir temel sağlayacaktır gibi domuz insan tipi 1 kalıtsal tyrosinemia (HT-1) Bu yaklaşım için seçilen benzersiz olarak böyle bir yönteme mükellef modeldir yerli hastalıklı tetkikine seçici avantaj. Bu büyüme seçimi için tüm göstergeler gerçek olmayacak olsa da, bu yaklaşım diğer göstergeler doğru genişleme için bir temel ve ek hastalıklar, her ikisi de karaciğer içinde adres ve ötesinde, süre için bu ortamda manipülasyon için sağlar viral vektör ve hedef kapalı toksisite ve tumorigenicity için fırsat maruz için kontrol etmek.

Introduction

Karaciğer metabolizmasının doğuştan hataları topluca 1 800 canlı Doğum1en çok etkileyen genetik hastalıkların bir aileyiz. Çoğu bu hastalıkların tek gen kusurları2 ve işlevsel olarak etkilenen gen tek bir düzeltilmiş kopyasını tetkikine3yeterli sayıda tanıtarak tedavi edilebilir. Düzeltilmesi gereken tetkikine gerçek yüzdesi hastalığı4 tarafından değişir ve büyük ölçüde bu kodlar, örneğin, atılan protein karşı sitoplazmik protein niteliğine bağlıdır. Çoğu durumda, herhangi bir tedavi etmek için metabolik etkinliğini kolayca aracılığıyla biyolojik dolaşımda bulunan çoğu kullanılabilir varlığı denetlesinler.

HT-1 sonuç fumarylacetoacetate hidrolaz (FAH)5bir üründe, Tirozin metabolizma6enzimatik son adımda karaciğer metabolizmasının doğuştan bir hatadır. FAH eksikliği için sürüme akut karaciğer yetmezliğine ve ölüme neden olabilir veya hastalık kronik şeklinde siroz ve hepatosellüler karsinom neden olabilir karaciğerde toksik metabolitleri, uzun ve zorludur. Hastalığın klinik olarak 2-(2-nitro-4-trifluoromethylbenzoyl)-1,3-cyclohexanedione (NTBC), küçük molekül inhibitörü olan bir enzim akıntıya karşı FAH, Tirozin metabolizması İdaresi tarafından yönetilir. Gibi başarılı tetkikine bile az sayıda düzeltilmesi hem küçük hem de büyük hayvan modellerinde düzeltilmiş hücrelerle sonunda tüm karaciğer repopulation içinde sonuçlanır hastalık hangi gen tedavi yöntemleri, test etmek ideal bir ortam sağlar 7 , 8. bu düzeltilmiş için hücreleri var toksik metabolitleri birikimi nedeniyle düzeltilemeyen hücreleri üzerinde derin hayatta kalma avantaj ikincisi oluşur. Düzeltilmemiş tetkikine kaybı düzeltilmiş tetkikine seçici genişleme için karaciğer yeniden üretim kapasitesi ile tutarlı sağlar. Tedavi kolayca nakli takip tirozin ve succinylacetone düzeyleri dolaşan içinde azalma ölçerek izlenebilir.

Kısmi bir hepatectomy içerir, yordam, invaziv doğası haklı göstermek için bu yaklaşım amacı dayanıklı bir tedavi olmalı. Bu nedenle, stabil hepatosit genom9içine entegre olacak çünkü çoğaltma beceriksiz lentiviral vektörler kullanılır. karaciğer olarak tüm kızı hücreleri için düzeltilmiş gen teslim sağlanması büyür ve düzeltilmeyen hücrelerinin hızlı kaybı değiştirmek için genişler. Bu sadece tek bir kızı hücre mitoz10 böylece herhangi bir etkisi birkaç hafta içinde tedavisinin kaybetme sırasında geçirilen episomes olarak öncelikle mevcut ilişkili adeno virüs (AAV) vektörler üzerinde avantajlıdır.

Edebiyat büyüyen bir vücut üzerinde lentivirus11, endişeleri Emanet desteklese genotoksik olaylar kontrollü vitro ortama konak hücreleri iletim sınırlayarak hafifletilmiş. Bu yöntem gerçekleştirildiğinde portal ven yoluyla otolog nakli ile yeniden kullanılmaya olacak tetkikine maruz sınırlayan ücretsiz vektör asla sistemik ana bilgisayara giriliyor.

Bu rapor cerrahi yöntemin ve gen terapisi ex vivo için tetkikine ve sonraki otolog transplantasyon12 HT-1 domuz8tedavisi için ayırmak için kullanılan ex vivo yordamlar açıklanmaktadır. Tam işlem tetkikine ve bir ana bilgisayarın karaciğer için büyüme uyarıcı bir kaynak, 2) ardından ex vivo gen düzeltme ve son olarak 3) reintroduction eksize karaciğer üzerinden tetkikine yalıtım olarak hizmet veren 1) bir kısmi hepatectomy içerir düzeltilmiş tetkikine ev sahibi geri. Açıklanan yöntemi bazı değişiklik ile tüm büyük hayvan modeller için geçerlidir ama sadece FAH eksikliği domuz13 seçici çevre düzeltilmiş tetkikine için avantaj olacaktır.

Protocol

Tüm hayvan yordamları kurumsal kılavuzlarınıza uygun olarak gerçekleştirilen ve incelenmeli ve kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi (IACUC) tarafından çalışma kuralları önce onaylanmalıdır. Burada açıklanan yordamları büyük beyaz çiftlik erkek ve dişi domuz (% 50 Landrace/50% büyük beyaz genetik arka plan) kadar sağlıklı ve cerrahi için uygun olarak kabul edilir 3 ay yaş için yapıldı.  Hayvan sosyal kurumsal hayvan hastalıklarıyla ilgili kaygı personeli tarafından uyumsuz kabu…

Representative Results

Karaciğer rezeksiyonu ve otolog transplantasyon şematik resim 1′ de temsil edilir. Hepatik rezeksiyon uygulanan 5 domuz temsilcisi bir kohort içinde çoğu verimi vardı > hücreler bol sağlayan herhangi bir türü için 1 x 109 tetkikine yaklaşık % 80’i canlılık (Tablo 2), ile istenen manipülasyonlar, gene de dahil olmak üzere terapi. Her bu 5 domuz gösterdi iyi canlılığı ve yapışma, tipik hepatosit morfoloji ilet…

Discussion

Bu rapor bir domuz model HT-1’in tedavi bir ex vivo otolog gen terapisi yaklaşım açıklar. Ex vivo hepatosit yalıtım ve izole tetkikine iletim düzeltici transgene taşıyan lenti virüsle ardından kısmi bir hepatectomy içerir. Düzeltilmiş otolog tetkikine sonra geri FAH eksik hayvan ile portal ven8nakledilmektedir. Açıklanan yöntemi bazı değişiklik ile tüm büyük hayvan modelleri için geçerli olsa da, FAH eksikliği domuz için düzeltilmiş hücreleri<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar Duane Meixner destek için gösteri cerrahi işlemler sırasında portal ven enjeksiyon, Steve Krage, Joanne Pederson ve Lori Hillin uzmanlık için teşekkür ederiz. Bu eser Çocuk Hastanesi Minnesota Vakfı ve rejeneratif tıp Minnesota tarafından desteklenmiştir. R.D.H. rejeneratif tıp kariyer geliştirme Ödülü NIH K01 DK106056 ödül ve bir Mayo Kliniği Merkezi üzerinden finanse edildi.

Materials

2-(2-nitro-4-trifluoromethylbenzoyl)-1,3-cyclohexanedione (NTBC) Yecuris 20-0027
12 mm Trocar Covidien B12STS
5 mm Trocar Covidien B5SHF
Endo Surgical Stapler 60 Covidien EGIA60AMT
Endo Surgical Stapler 45 Covidien EGIA45AVM
Endo Surgical Stapler 30 Covidien SIG30AVM
Endo catch bag Covidien 173050G
0 PDS Ethicon Z340H
2-0 Vicryl Ethicon J459H
4-0 Vicryl Ethicon J426H
Dermabond Ethicon DNX12 Sterile Dressing
Williams’-E Powder  Gibco ME16060P1
NaHCO3  Sigma Aldrich S8875-1KG
HEPES  Fisher BP310-1
Pen/Strep  Gibco 15140-122
Fetal Bovine Serum Corning 35-011-CV
NaCl (g/L) Sigma Aldrich S1679-1KG
KCl (g/L) Sigma Aldrich P3911-500G
EGTA (g/L) Oakwood Chemical 45172
N-acetyl-L-cysteine Oakwood Chemical 3631
(N-A-C, g/L) Sigma Aldrich A9165-100G
CaCl2 2H2O (g/L) Sigma Aldrich 223506-500G
Collagenase D (mg/mL) Crescent Chemical 17456.2
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Corning 15-013-CV
Dexamethasone Fresenius Kabi NDC6337
Epidermal Growth Factor Gibco PHG0314

References

  1. Mak, C. M., Lee, H. C., Chan, A. Y., Lam, C. W. Inborn errors of metabolism and expanded newborn screening: review and update. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences. 50 (6), 142-162 (2013).
  2. Hansen, K., Horslen, S. Metabolic liver disease in children. Liver Transplantation. 14 (5), 713-733 (2008).
  3. Schneller, J. L., Lee, C. M., Bao, G., Venditti, C. P. Genome editing for inborn errors of metabolism: advancing towards the clinic. BMC Medicine. 15 (1), 43 (2017).
  4. Brunetti-Pierri, N. Gene therapy for inborn errors of liver metabolism: progress towards clinical applications. Italian Journal of Pediatrics. 34 (1), 2 (2008).
  5. Carlson, D. F., et al. Efficient TALEN-mediated gene knockout in livestock. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (43), 17382-17387 (2012).
  6. Lindblad, B., Lindstedt, S., Steen, G. On the enzymic defects in hereditary tyrosinemia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 74 (10), 4641-4645 (1977).
  7. Hickey, R. D., et al. Noninvasive 3-dimensional imaging of liver regeneration in a mouse model of hereditary tyrosinemia type 1 using the sodium iodide symporter gene. Liver Transplantation. 21 (4), 442-453 (2015).
  8. Hickey, R. D., et al. Curative ex vivo liver-directed gene therapy in a pig model of hereditary tyrosinemia type 1. Science Translational Medicine. 8 (349), (2016).
  9. Naldini, L., et al. In vivo gene delivery and stable transduction of nondividing cells by a lentiviral vector. Science. 272 (5259), 263-267 (1996).
  10. Bouard, D., Alazard-Dany, D., Cosset, F. L. Viral vectors: from virology to transgene expression. British Journal of Pharmacology. 157 (2), 153-165 (2009).
  11. Sakuma, T., Barry, M. A., Ikeda, Y. Lentiviral vectors: basic to translational. Biochemical Journal. 443 (3), 603-618 (2012).
  12. Chowdhury, J. R., et al. Long-term improvement of hypercholesterolemia after ex vivo gene therapy in LDLR-deficient rabbits. Science. 254 (5039), 1802-1805 (1991).
  13. Elgilani, F., et al. Chronic Phenotype Characterization of a Large-Animal Model of Hereditary Tyrosinemia Type 1. The American Journal of Pathology. 187 (1), 33-41 (2017).
  14. Patyshakuliyeva, A., et al. Carbohydrate utilization and metabolism is highly differentiated in Agaricus bisporus. BMC Genomics. 14, 663 (2013).
  15. Hickey, R. D., et al. Fumarylacetoacetate hydrolase deficient pigs are a novel large animal model of metabolic liver disease. Stem Cell Research. 13 (1), 144-153 (2014).
check_url/58399?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kaiser, R. A., Mao, S. A., Glorioso, J., Amiot, B., Nicolas, C. T., Allen, K. L., Du, Z., VanLith, C. J., Hickey, R. D., Nyberg, S. L., Lillegard, J. B. Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine. J. Vis. Exp. (141), e58399, doi:10.3791/58399 (2018).

View Video