Summary

Bariyer geçişleri patojenler veya ilaçlar ve onların etkileşim beyin ile çalışmak için bir insan kan-beyin arabirim modeli

Published: April 09, 2019
doi:

Summary

Burada bir içinde cellulo BBB (kan beyin bariyerini) ayarını açıklayan bir iletişim kuralı mevcut-Minibrain polyester geçirgen membran kültür taşıma biomolecules veya enfeksiyöz ajanlar arasında bir insan BBB değerlendirmek için sistem eklemek ve onların komşu beyin hücreleri üzerinde fizyolojik etkisi.

Abstract

Erken üzerinde uygun bir sinir sistemi ilaçların eleme ve hala bir karşılanmamış ihtiyaç cellulo BBB modelindeki onların penetrasyon ve bariyer ve beyin parankimi ile onların etkileşim için güvenilirdir. Bu boşluğu doldurmak için biz geçirgen membran kültür Ekle insan BBB modeli ile bir Minibrain tri-etik, kültürler tarafından insan beyin hücrelerinin (nöron, astrocytes ve mikroglial hücreleri) oluşan bir polyester birleştirerek bir 2D cellulo modelinde, BBB-Minibrain, tasarlanmıştır. BBB-Minibrain nöroprotektif uyuşturucu aday (örneğin, Neurovita) taşıma test bize aracılığıyla BBB, bu molekül nöronlar için belirli hedef belirlemek ve ilaç nöroprotektif mülkiyeti sonra korundu göstermek için izin ilaç BBB geçmişti. BBB-Minibrain virüs parçacıkları geçirilmesi endotel hücreleri bariyer arasında algılamak ve Minibrain enfeksiyon neuroinvasive virüs parçacıkları tarafından izlemek için ilginç bir model teşkil de göstermiştir. BBB-Minibrain tedavi veya hakaret sonra araştırmacı hücre Kültür Teknoloji eğitim ve beyin hücreleri fenotipleri akıllı kolay güvenilir bir sistemdir. Cellulo test ilgi tür iki kat olurdu: ilaç geliştirme erken adımda bir yandan derisking ve hayvan testleri Öte yandan kullanımının azaltılması tanıtımı.

Introduction

Beyin beyin parankimi ve kan – beyin bariyerini (BBB) denilen kan arasında değişim kısıtlar geçirgen olmayan bir yapı sistemik dolaşım ayrılır. Çoğunlukla beyin endotel hücreleri oluşur, BBB dinamik olarak astrocytes, Perivasküler microglia ve komşu beyin parankimi nöronlar ile etkileşime girer. Oluşturma ve bakımını iyonik homeostazı besin ve toksik yaralanmaları koruma ile beyin temini veya giriş katkıda patojenler1,2, nöronal iþlevlerinin BBB üç önemli işlevleri vardır beyin homeostazı ve onun fonksiyonları3bakım. Sadece birkaç uyuşturucu BBB4,5geçebileceğinizi verimli bir engeldir. Şu anda, bir molekül BBB geçmek ve beyine diffüz tahmin etmek için kullanılabilir yöntemleri, ex vivo çalışmalar otopsi malzeme, görüntü izleme beyin MRI (manyetik rezonans görüntüleme) ya da evde beslenen hayvan (pozisyon emisyon tarafından insan gönüllü oluşur Tomografi) veya özellikler ve farmakokinetik preklinik çalışmalar hayvanlar6,7,8. Bu teknikleri ve modelleri evde beslenen hayvan sınırlı çözünürlük ve MRI6,8, molekülleri (yani, örneğin dayalı antikor moleküller) bu kötü ölçmek için zorluk düşük duyarlılık gibi bazı kısıtlamalar bulunmaktadır beyin7nüfuz ve preklinik için onların yüksek maliyet ve resort hayvan test çalışmaları.

Son nokta önemlidir çünkü 3R’s kuralları, (değiştirme, azaltma ve hayvan test arıtma göre) düzenleyici idarelerin araştırmacılar acilen bilimsel olarak doğru seçimli-e doğru hayvan geliştirmek istedi, deney9,10,11,12,13,14,15.

Son on yıl içinde BBB birkaç tüp bebek modelleri16,17,18 filtresinde kalkındırırken tarafından önerilmiştir membran fare, sıçan, sığır ve domuz gibi farklı türlerden endotel hücreleri ekler. İnsan türünün ilgili olarak Primer hücre kıt ve zor durumu ölümsüzleştirdi beyin endotel hücreleri veya insan kaynaklı kök hücre19,20göre insan modellerinin geliştirilmesi için araştırmacılar istenir, 21. Onlar hızlı endotel hücre işaretleri, sıkı Kavşağı işaretleri, sızma taşıyıcılar, çözünen taşıyıcı, reseptörler, bu engelleri BBB uygun tüp bebek vekilleri ile mümkündür ve endotel uyaranlara 20‘ ye yanıt. Endotel hücreleri ve diğer hücre tipleri (yani, astrocytes, nöronlar veya perisitlerden22,23,24) ile kaplı filtre membran ekler kullanarak birkaç BBB modelleri denetlesinler. Astrocytes/nöronlar veya perisitlerden tarafından çözünür faktörler salgılanmasını avantajlarından yararlanarak BBB fiziksel özelliklerini artırmak için bu ortak kültürler amacı oldu.

Yine de, bu modellerin hiçbiri çalışma ve bariyer geçtikten sonra bir uyuşturucu aday kaderi tahmin beyin parankimi içerir. Bu nedenle, amacımız içinde bir cellulo yapı oldu kan/beyin arabirimi, BBB-BBB manken ve bir kültür karışık beyin hücrelerinin tek bir kiti birleştirerek Minibrain,. BBB-Minibrain multiwell hücre kültür kalıbının kuyuya eklenen gözenekli filtre oluşan bir kültür sistemi kullanır. Filtre BBB uyuşturucu BBB oluşturmak için25,26,27, testi için son derece güvenilir kanıtlanmıştır bir insan beyni endotel hücre kültürünü hCMEC/D3 hücreleri ile kaplanır. Minibrain, insan nöronların ortak farklılaşmış bir kültür olduğu ve türetilmiş NTera/Cl2.D1 hücre satırı28,29 astrocytes CHME/Cl530 oranı karşılık gelen insan mikroglial hücre satırı ile birlikte karışık microglia nöron-astrocytes oranları beyin31, vs ekili Kalenin dibinde de.

BBB ve kaderlerini parankimi içinde uyuşturucu geçiş eğitim yanı sıra, cellulo modeli kan-beyin arabiriminde beyin (neuroinvasiveness), beyin (neurotropism) içine dağılım içine patojenlerin girişi adresine güçlü bir araç olabilir ve onlar beyin parankimi hücreleri üzerinde sarfetmek toksisite (neurovirulence). Neurovirulence ve neuroinvasiveness çalışmaları etkili bir cellulo modeli geliştirilmesi yararlanın ve hayvan modelleri yerine avantajlı. BBB-Minibrain kiti32kullanarak, biz neuroinvasive fenotip hazırlamak için kullanılan Fransızca Neurotropic virüs suşu sarı humma virüsü (yani, FNV’nin-YFV33,34) içinde birikmiş nadir viral mutantların gösterdi bir iptal edilen canlı YFV aşı ve Neurovita (bundan böyle NV el yazması da adlandırılır)35denilen bir neuroregenerative ve nöroprotektif biomolecule geçirilmesi. Çünkü NV ikisi de doğal olarak hücre zarı haçlar ne de değişken bölümü (VHH) ile BBB dahil olmak üzere biyolojik membran aşar ve işlevleri molekül (BGBM)36delici bir hücre Lama bir tek zincir antikor, BBB, NV erimiş. VHH BGBM mülkiyeti isoelectric noktası ve VHH37uzunluğu bağlı gibi görünüyor.

Böyle cellulo testinde daha potansiyel olarak BBB farmakokinetik taşıyan ve özellikler analysis hayvanlarda ve ideal olarak gergin onların davranış tahmin edebilmek için aynı zamanda önce geçebileceği molekülleri sıralamak mümkün olacak parankimi. Bu sistem biyolojik olarak ilgili ve kolay kurulum ve hücre kültürü26,29,30,38içinde iyi eğitimli profesyoneller tarafından idare edilmiştir. Cellulo test ilgi tür iki kat olur: bir yandan preklinik testleri maliyetlerinin azaltılması ve diğer yandan hayvan test kullanımının azaltılması.

Protocol

1. hücre kültür Ntera/CL2 eseri. D1 sonrası Mitotik hNeurons ve hAstrocytes (NT2-N/A) ortak bir kültür hazırlamak için Not: Bu Minibrain (şekil 1) bileşenidir. Ntera/Cl2.D1 kültürü Donmuş hücreleri bir şişe sıvı azot haznesini çıkarın. Buz üstünde tutun. 37 ° C su banyosu hızla hücrelerde çözülme. 15 mL tüp 10 mL tam DMEM F12 orta içeren hücrelerde transfer (Dulbecco’nın modifiye kartal orta…

Representative Results

BBB-Minibrain içinde bir cellulo deneysel olduğunu kan-beyin arabirimi model. BBB-Minibrain polyester membran kültür ekleme sistemi üzerinde üst düzeyde bir kan bölme ve bir beyin bölme (şekil 2AB) kan-beyin arabiriminin alt düzeyde taklit etmek için ayarlanır. BBB şekillendirme filtre üzerinde hCMEC/D3 endotel hücreleri ile luminal bir bölme ve Min…

Discussion

Bu makalede biz içinde bir cellulo inşa etmek nasıl gösterdi kan/beyin arabirimi, BBB-BBB manken ve kültürünün birleştirerek Minibrain, karışık beyin beyin hücreleri (Minibrain) tek bir kit. Bu sistem biyolojik ilgili, basit-e doğru kurmak ve iyi eğitimli hücre kültüründe Denemecileri için kolu.

Şiddetli gerginlik bariyer kontrolünü uygulanırsa herhangi bir diğer tüp bebek model BBB gelince, güvenilir sonuçlar elde. Geçirgenliği ve herhangi bir INSERT yetersiz ge?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışmada Institut Pasteur bir Incitative Ödülü (PTR 435) dahil olmak üzere gelen iç hibe ve “Kervansaray’a de Soutien à la Recherche” sağlanan bir hibe tarafından Sanofi Pasteur Institut Pasteur için desteklenen bir durumdu. A. da Costa Sanofi Pasteur grant ve Florian Bakoa tarafından desteklenen olduğunu ANRT tarafından sağlanan bir doktora hibe alıcı (Derneği Nationale de la Recherche et de la Technologie). Biz yararlı tartışmalar için Pr Pierre-Olivier Couraud ve Dr Floransa Miller için borçlu bulunmaktadır.

Materials

12 well plates Corning 3336
5-fluoro-2’deoxyuridine Merck-Sigma Aldrich F0503
85mm Petri Dish Sarstedt 83-3902-500
Anti-Nf200 Merck-Sigma Aldrich N4142
β-mercapto-ethanol Merck-Sigma Aldrich M3148
CHME/Cl5 Unité de Neuroimmunologie Virale On request to Dr Lafon
CMC Calbiochem 217274
Cytosine β-D-arabinofuranoside Merck-Sigma Aldrich C1768
Dark 96 well plates Corning 3915
DMEM F12 Thermofisher Scientific 31330-038
DMSO Merck-Sigma Aldrich D2650
Endogro IV Millipore SCME004 endothelial cell medium
Ethanol Carlo Erba 529121
FBS Hyclone SV30015-04
Formaldehyde Merck-Sigma Aldrich 252549
GIEMSA RAL Diagnostic 320310
Goat-Anti Mouse Jackson Immuno Research 115-545-003
Goat-Anti Rabbit Thermofisher Scientific R37117
HBSS with Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14025-100
hCMEC/D3 Cedarlane CLU512
Hepes 1M Thermofisher Scientific 15630-070
Hoescht 33342 Merck-Sigma Aldrich 33263
Laminine Merck-Sigma Aldrich L6274
L-glutamin Thermofisher Scientific 25030-024
Lucifer Yellow Merck-Sigma Aldrich L0259
MEM 10X Thermofisher Scientific 21430
MEM 1X Thermofisher Scientific 42360
Ntera/Cl2D.1 ATCC CRL-1973
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15714
PBS without Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14190
PBS-Ca2+-Mg2+ Thermofisher Scientific 14040-091
Pen/Strep Eurobio CXXPES00-07
Poly-d-Lysine Merck-Sigma Aldrich P1149
Prolong Gold Thermofisher Scientific P36930
Qiashredder QIAGEN 79656
Rat Collagen I Cultrex 3443-100-01
Retinoic Acid All-Trans Merck-Sigma Aldrich R2625
RNA purification kit QIAGEN 74104
SDS Merck-Sigma Aldrich L4509
Sodium bicarbonate 5.6% Eurobio CXXBIC00-07
Sodium Pyruvate Thermofisher Scientific 11360
T75 Cell+ Flask Sarstedt 83-1813-302 Tissue culture polystyrene flask with specific surface treatment (Cell+) for sensitive adherent cells
Transwell Corning 3460 polyester porous membrane culture inserts
Trypsin-EDTA Merck-Sigma Aldrich T3924
Ultra Pure Water Thermofisher Scientific 10977-035
Uridine Merck-Sigma Aldrich U3750
Versene Thermofisher Scientific 15040-033 EDTA
YFV-FNV IP Dakar Vaccine vial

References

  1. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiology of Disease. 37 (1), 13-25 (2010).
  2. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nature Reviews Neuroscience. 7 (1), 41-53 (2006).
  3. Iadecola, C. The Neurovascular Unit Coming of Age: A Journey through Neurovascular Coupling in Health and Disease. Neuron. 96 (1), 17-42 (2017).
  4. Bicker, J., Alves, G., Fortuna, A., Falcao, A. Blood-brain barrier models and their relevance for a successful development of CNS drug delivery systems: a review. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 87 (3), 409-432 (2014).
  5. Banks, W. A. From blood-brain barrier to blood-brain interface: new opportunities for CNS drug delivery. Nature Reviews Drug Discovery. 15 (4), 275-292 (2016).
  6. Montagne, A., et al. Brain imaging of neurovascular dysfunction in Alzheimer’s disease. Acta Neuropathologica. 131 (5), 687-707 (2016).
  7. Stanimirovic, D., Kemmerich, K., Haqqani, A. S., Farrington, G. K. Engineering and pharmacology of blood-brain barrier-permeable bispecific antibodies. Advances in Pharmacology. 71, 301-335 (2014).
  8. Albrecht, D. S., Granziera, C., Hooker, J. M., Loggia, M. L. In Vivo Imaging of Human Neuroinflammation. ACS Chemical Neuroscience. 7 (4), 470-483 (2016).
  9. Caloni, F., et al. Alternative methods: 3Rs, research and regulatory aspects. ALTEX. 30 (3), 378-380 (2013).
  10. Whittall, H. Information on the 3Rs in animal research publications is crucial. The American Journal of Bioethics. 9 (12), 60-61 (2009).
  11. Sneddon, L. U. Pain in laboratory animals: A possible confounding factor. Alternatives to Laboratory Animals. 45 (3), 161-164 (2017).
  12. Sneddon, L. U., Halsey, L. G., Bury, N. R. Considering aspects of the 3Rs principles within experimental animal biology. The Journal of Experimental Biology. 220, 3007-3016 (2017).
  13. Wells, D. J. Animal welfare and the 3Rs in European biomedical research. Annals of the New York Academy of Sciences. 1245, 14-16 (2011).
  14. Daneshian, M., et al. A framework program for the teaching of alternative methods (replacement, reduction, refinement) to animal experimentation. ALTEX. 28 (4), 341-352 (2011).
  15. Niemi, S. M., Davies, G. F. Animal Research, the 3Rs, and the "Internet of Things": Opportunities and Oversight in International Pharmaceutical Development. ILAR Journal. 57 (2), 246-253 (2016).
  16. Modarres, H. P., et al. In vitro models and systems for evaluating the dynamics of drug delivery to the healthy and diseased brain. Journal of Controlled Release. 273, 108-130 (2018).
  17. Jamieson, J. J., Searson, P. C., Gerecht, S. Engineering the human blood-brain barrier in vitro. Journal of Biological Engineering. 11, 37 (2017).
  18. Kaisar, M. A., et al. New experimental models of the blood-brain barrier for CNS drug discovery. Expert Opinion on Drug Discovery. 12 (1), 89-103 (2017).
  19. Aday, S., Cecchelli, R., Hallier-Vanuxeem, D., Dehouck, M. P., Ferreira, L. Stem Cell-Based Human Blood-Brain Barrier Models for Drug Discovery and Delivery. Trends in Biotechnology. 34 (5), 382-393 (2016).
  20. Helms, H. C., et al. In vitro models of the blood-brain barrier: An overview of commonly used brain endothelial cell culture models and guidelines for their use. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 36 (5), 862-890 (2016).
  21. Lippmann, E. S., et al. Derivation of blood-brain barrier endothelial cells from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 30 (8), 783-791 (2012).
  22. Nakagawa, S., et al. A new blood-brain barrier model using primary rat brain endothelial cells, pericytes and astrocytes. Neurochemistry International. 54 (3-4), 253-263 (2009).
  23. Hatherell, K., Couraud, P. O., Romero, I. A., Weksler, B., Pilkington, G. J. Development of a three-dimensional, all-human in vitro model of the blood-brain barrier using mono-, co-, and tri-cultivation Transwell models. Journal of Neuroscience Methods. 199 (2), 223-229 (2011).
  24. Nakagawa, S., et al. Pericytes from brain microvessels strengthen the barrier integrity in primary cultures of rat brain endothelial cells. Cellular and Molecular Neurobiology. 27 (6), 687-694 (2007).
  25. Ohtsuki, S., et al. Quantitative targeted absolute proteomic analysis of transporters, receptors and junction proteins for validation of human cerebral microvascular endothelial cell line hCMEC/D3 as a human blood-brain barrier model. Molecular Pharmaceutics. 10 (1), 289-296 (2013).
  26. Weksler, B., Romero, I. A., Couraud, P. O. The hCMEC/D3 cell line as a model of the human blood brain barrier. Fluids Barriers CNS. 10 (1), 16 (2013).
  27. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19 (13), 1872-1874 (2005).
  28. Andrews, P. W. Retinoic acid induces neuronal differentiation of a cloned human embryonal carcinoma cell line in vitro. Developmental Biology. 103 (2), 285-293 (1984).
  29. Lafon, M., et al. Modulation of HLA-G expression in human neural cells after neurotropic viral infections. Journal of Virology. 79 (24), 15226-15237 (2005).
  30. Janabi, N., Peudenier, S., Heron, B., Ng, K. H., Tardieu, M. Establishment of human microglial cell lines after transfection of primary cultures of embryonic microglial cells with the SV40 large T antigen. Neuroscience Letters. 195 (2), 105-108 (1995).
  31. von Bartheld, C. S., Bahney, J., Herculano-Houzel, S. The search for true numbers of neurons and glial cells in the human brain: A review of 150 years of cell counting. The Journal of Comparative Neurology. 524 (18), 3865-3895 (2016).
  32. Prehaud, C., Lafon, M., Ceccaldi, P. E., Afonso, P., Lafaye, P. New in vitro Blood-Brain Barrier model. PCT. EP2015, 0706671 (2014).
  33. Holbrook, M. R., Li, L., Suderman, M. T., Wang, H., Barrett, A. D. The French neurotropic vaccine strain of yellow fever virus accumulates mutations slowly during passage in cell culture. Virus Research. 69 (1), 31-39 (2000).
  34. da Costa, A., et al. Innovative in cellulo method as an alternative to in vivo neurovirulence test for the characterization and quality control of human live Yellow Fever virus vaccines: A pilot study. Biologicals. 53, 19-29 (2018).
  35. Prehaud, C., Lafon, M., Lafaye, P. Nanobodies suitable for neuron regeneration therapy. Patent. , (2014).
  36. Li, T., et al. Selection of similar single domain antibodies from two immune VHH libraries obtained from two alpacas by using different selection methods. Immunology Letters. 188, 89-95 (2017).
  37. Schumacher, D., Helma, J., Schneider, A. F. L., Leonhardt, H., Hackenberger, C. P. R. Nanobodies: Chemical Functionalization Strategies and Intracellular Applications. Angewandte Chemie International Edition. 57 (9), 2314-2333 (2018).
  38. Prehaud, C., Megret, F., Lafage, M., Lafon, M. Virus infection switches TLR-3-positive human neurons to become strong producers of beta interferon. J Journal of Virology. 79 (20), 12893-12904 (2005).
  39. Siflinger-Birnboim, A., et al. Molecular sieving characteristics of the cultured endothelial monolayer. Journal of Cellular Physiology. 132 (1), 111-117 (1987).
  40. Prehaud, C., Lafon, M., Wolff, N., Khan, Z., Terrien, E., Sanderine, V. High Mast2-affinity polypeptides and uses thereof. Patent. , (2011).
  41. Cucullo, L., et al. Immortalized human brain endothelial cells and flow-based vascular modeling: a marriage of convenience for rational neurovascular studies. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 28 (2), 312-328 (2008).
  42. Beck, A. S., Wood, T. G., Widen, S. G., Thompson, J. K., Barrett, A. D. T. Analysis By Deep Sequencing of Discontinued Neurotropic Yellow Fever Vaccine Strains. Scientific Reports. 8 (1), 13408 (2018).
  43. Staples, J. E., Monath, T. P. Yellow fever: 100 years of discovery. The Journal of the American Medical Association. 300 (8), 960-962 (2008).
  44. Wang, E., et al. Comparison of the genomes of the wild-type French viscerotropic strain of yellow fever virus with its vaccine derivative French neurotropic vaccine. Journal of General Virology. 76 (Pt 11), 2749-2755 (1995).
  45. Li, T., et al. Cell-penetrating anti-GFAP VHH and corresponding fluorescent fusion protein VHH-GFP spontaneously cross the blood-brain barrier and specifically recognize astrocytes: application to brain imaging. FASEB J. 26 (10), 3969-3979 (2012).
  46. Garcia-Mesa, Y., et al. Immortalization of primary microglia: a new platform to study HIV regulation in the central nervous system. Journal of NeuroVirology. 23 (1), 47-66 (2017).

Play Video

Cite This Article
da Costa, A., Prehaud, C., Bakoa, F., Afonso, P., Ceccaldi, P., Lafaye, P., Lafon, M. A Human Blood-Brain Interface Model to Study Barrier Crossings by Pathogens or Medicines and Their Interactions with the Brain. J. Vis. Exp. (146), e59220, doi:10.3791/59220 (2019).

View Video