Summary

En onkogen Hepatocyte-induceret Ortotopisk muse model af Hepatocellulær cancer, der opstår i fastsættelsen af hepatisk inflammation og fibrose

Published: September 12, 2019
doi:

Summary

Her beskriver vi udviklingen af en klinisk relevant murine model af leverkræft rekapitulere de typiske immun funktioner af hepatocellulær cancer (HCC).

Abstract

Fraværet af en klinisk relevant dyremodel, der adresserer de typiske immun karakteristika ved hepatocellulær cancer (HCC), har i væsentlig grad forhindret elucidationen af de underliggende mekanismer og udviklingen af innovative immunterapeutiske strategier. For at udvikle en ideel dyremodel til at rekapitulere Human HCC, immunkompetente mandlige C57BL/6J mus først modtage en Carbon tetrachlorid (CCl4) injektion for at fremkalde lever fibrose, derefter modtage histologisk-normale onkogene hepatocytter fra unge mandlige SV40 T antigen (TAg)-Transgene mus (MTD2) ved intra-splenisk (ISPL) inokulation. Androgen genereret i recipient mandlige mus i puberteten indleder TAg udtryk under kontrol af en lever-specifik promotor. Som et resultat, de overførte hepatocytter bliver kræftceller og danne tumor masser i fastsættelsen af lever fibrose/cirrhose. Denne nye model efterligner Human HCC initiering og progression i forbindelse med lever fibrose/cirrhose og afspejler de mest typiske træk ved humant HCC herunder immun dysfunktion.

Introduction

Hepatocellulær cancer (HCC) er den mest hastigt voksende type kræft i USA (US)1,2,3. Hvert år diagnosticeres ca. 850.000 nye tilfælde4,5 og 700.000 patienter dør af denne dødeligesygdom 6,7,8,9,10 , hvilket gør den til den næsthøjeste årsag til kræft relateret død verden over. Administration af HCC omfatter kirurgisk resektion, transplantation, ablation, chemoembolization eller systemiske terapier, såsom sorafenib11. Tidlig diagnose og administration med kirurgisk resektion eller transplantation har den højeste samlede overlevelsesfordel4. Desværre, de fleste patienter til stede på et senere tidspunkt og kræver administration med ablation, chemoembolization eller sorafenib12. Sorafenib, en receptor tyrosinkinasehæmmer (RTKI), blev godkendt af Food and Drug Administration i 2008 som den eneste systemiske lægemiddelbehandling, der var tilgængelig til behandling af inoperabel HCC. Selv om stoffet kun giver en beskeden stigning i den samlede overlevelse, fra 7,9 til 10,7 måneder13, det gav en ny terapeutisk strategi, der kunne udnyttes til at forvalte HCC.

Manipulation af immunsystemet for at eliminere etablerede kræftformer er et hastigt voksende felt inden for kræftforskning14. Immun check point studier har betydeligt avanceret immunotherapeutisk lægemiddeludvikling i kræftbehandling15,16. FDA godkendte brugen af antistoffer (ABS) mod cytotoksisk T-lymfocyt antigen 4 (CTLA-4), programmeret celledød protein 1 (PD-1) og dets ligand PD-L1 til behandling af melanom, lungekræft, hoved-og nakke kræft og blærecancer17, 18 , 19 , 20. kliniske forsøg med monoterapi eller kombinationsbehandling med et eller flere antistoffer mod PD-1, PD-L1 eller ctla-4 til behandling af avanceret HCC er i gang21,22,23og nogle forsøg har vist gunstige resultater. I 2017, FDA givet fremskyndet godkendelse for anti-PD-1 antistof til behandling af HCC patienter, der er resistens over for sorafenib, men den samlede responsrate af denne behandling er kun 14,3%. Andre strategier er ikke blevet oversat til klinisk praksis på dette tidspunkt24,25. Overvinde tumor-induceret dyb immuntolerance for at forbedre immun check point terapi26; forudsigelse af effekten af immun check point terapi; forebyggelse af immunrelaterede uønskede hændelser optimering af administrationsvej, dosering og hyppighed; og finde effektive kombinationer af terapier27,28,29 alle forbliver yderst udfordrende opgaver.

Der er flere konventionelle tilgange, der anvendes til at inducere HCC i musemodeller i øjeblikket og udnyttes afhængigt af investigators særlige forskning spørgsmål30. Kemisk inducerede HCC-musemodeller med genotoksiske forbindelser efterligner skade forårsagede maligniteter. Xenograft-modeller gennem enten ektopisk eller ortotopisk implantation af HCC-cellelinjer er velegnede til lægemiddel screening. En række genetisk modificerede mus er blevet konstrueret til at undersøge Patofysiologi af HCC. Transgene mus, der udtrykker virale gener, onkogener og/eller vækstfaktorer gør det muligt at identificere veje involveret i hepatocarcinogenese. På grund af iboende begrænsninger, kan disse modeller ikke rekapitulere de typiske immun karakteristika, der ses i human HCC, som har betydeligt hæmmet belysning af de underliggende mekanismer og udvikling af innovative immunotherapeutiske strategier14 ,15. Vi har for nylig skabt en klinisk relevant murine model. Denne roman model ikke kun efterligner Human HCC initiering og progression, men også afspejler de fleste typiske træk ved sygdomme hos mennesker, herunder immun dysfunktion. Vi har karakteriseret dets biologiske og immunologiske egenskaber. Ved at udnytte denne nye model har vi undersøgt forskellige immun terapeutiske strategier til behandling af HCC31,32,33,34,35,36, 37. denne unikke platform giver os mulighed for at studere mekanismer af tumor-induceret immunotolerance og udvikle proof-of-koncept terapeutiske strategier for HCC mod eventuel klinisk oversættelse.

Protocol

Bemærk: alle de procedurer, herunder dyr emner er blevet godkendt af IACUC på University of Missouri. Alle mus fik human behandling i henhold til de kriterier, som er skitseret i “vejledning i pleje og anvendelse af forsøgsdyr”. Følgende procedure for celle isolering og inokulation bør udføres i en hætte. Alle udøvende kunstnere bør bære standard personlige værnemidler til håndtering af mus og væv. 1. induktion af lever fibrose og cirrhose med IP-injektion af Tetrachlorid (CCl4…

Representative Results

Onkogene hepatocytter isoleret fra TAg-Transgene mus (figur 2) blev seedet i leveren af vilde type mus ved intra-splenisk injektion (figur 3). Den transplanterede hepatocytter succesfuldt og pålideligt voksede ortotopisk HCC tumorer (figur 4) med tumor specifikke antigen SV40 TAg (figur 5) i indstillingen af hepatisk inflammation og fibrose (figur 1). <img alt="Figure 1" class…

Discussion

Med denne protokol har vi etableret en pålidelig og reproducerbar murine model af HCC, der efterligner Human HCC initiering og progression. Klinisk, mange risikofaktorer successivt inducere leverskade, lever fibrose, cirrhose og den sidste fase af HCC. I vores protokol, IP injektion af CCL4 bruges til først at producere lever fibrose i vildtype mus, som gør det muligt for de efterfølgende onkogene hepatocytter til dannelse af tumorer i fastsættelsen af lever fibrose. Vi fandt, at tumordannelse forekom mes…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde støttes af NIH/NCI R01 CA164335-01A1 (K. F. Staveley-O’Carroll, PI) og NIH/NCI R01CA208396 (Mark Kester, Guangfu Li, Kevin F. Staveley-O’Carroll).

Materials

Anesthesia machine VETEQUIP IMPAC6 anesthesia machine for surgery
Butterfly needle BD 8122963 Needle used for liver perfusion
C57BL/6 mice Jackson Lab 000664  mice used in prototol
Carprofen CRESCENT CHEMICAL 20402 carprofen for pain release
Cell Strainer  CORNING REF 431751 Cell strainer, 70µm, for hepatocytes isolation
Centrifuge Beckman Coulter Allegra X-30R centrifuge for cell isolation
Clips  Teleflex Medical REF 523700 Titanium Clips for spleen
Microscope Zeiss Primovert  microscope for cell observation
Mtd2 mice N/A Gift from Dr. William A Held at roswell Park Cancer Institute in 2002, maintained in our lab
Needle BD REF 305109 BD precisionglide needle, 27G x 1/2 (0.4mm x 13mm)
Suture ETHICON J303H coated VICRYL suture
SV40 T Ag antibody Abcam ab16879 anti-SV40 T-antigen antibody for IHC
Syringe BD REF 309626 1 mL TB syringe for cell injection
Trypan blue SIGMA T 8154 Trypan blue solution for cell viability test
Wound clips Reflex reflex9, Part. No. 201-1000 stainless steel wound clips for wound close

References

  1. O’Connor, S., Ward, J. W. Hepatocellular carcinoma – United States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 59, 517-520 (2010).
  2. Petrick, J., Kelly, S., Altekruse, S., McGlynn, K., Rosenberg, P. Future of Hepatocellular Carcinoma Incidence in the United States Forecast Through 2030. Journal of clinical oncology: official journal of the American Society of Clinical Oncology. 34, 1787-1794 (2016).
  3. Greten, T., Lai, C., Li, G., Staveley-O’Carroll, K. Targeted and Immune-based Therapies for Hepatocellular Carcinoma. Gastroenterology. 156, 510-524 (2019).
  4. Llovet, J., Zucman-Rossi, J., Pikarsky, E., Sangro, B., Schwartz, M., Sherman, M., Gores, G. Hepatocellular Carcinoma. Nature reviews. Disease primers. 2, 16018 (2016).
  5. Ding, X., et al. Precision medicine for hepatocellular carcinoma: driver mutations and targeted therapy. Oncotarget. 8, 55715-55730 (2017).
  6. Colombo, M., Maisonneuve, P. Controlling liver cancer mortality on a global scale: still a long way to go. Journal of Hepatology. 67, 216-217 (2017).
  7. Llovet, J., Burroughs, A., Bruix, J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 362, 1907-1917 (2003).
  8. Parkin, D., Bray, F., Ferlay, J., Pisani, P. Estimating the world cancer burden: Globocan 2000. International Journal of Cancer. 94, 153-156 (2001).
  9. Thomas, M., Zhu, A. Hepocellular carcinoma: the need for progress. Journal of Clinical Oncology. 23, 2892-2899 (2005).
  10. Llovet, J., Bruix, J. Molecular targeted therapies in hepatocellular carcinoma. Hepatology. 48, 1312-1327 (2008).
  11. Bruix, J., Sherman, M. Management of hepatocellular carcinoma: an update. Hepatology. 53, 1020-1022 (2011).
  12. Pang, T., Lam, V. Surgical management of hepatocellular carcinoma. World Journal of Hepatology. 7, 245-252 (2015).
  13. Llovet, J., et al. Design and endpoints of clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of the National Cancer Institution. 100, 698-711 (2008).
  14. Mueller, K. Cancer immunology and immunotherapy. Realizing the promise. Introduction. Science. 348, 54-55 (2015).
  15. Gajewski, T., Schreiber, H., Fu, Y. Innate and adaptive immune cells in the tumor microenvironment. Nature Immunology. 14, 1014-1022 (2013).
  16. Ribas, A., Wolchok, J. Combining cancer immunotherapy and targeted therapy. Current Opinion in Immunology. 25, 291-296 (2013).
  17. Postow, M., Callahan, M., Wolchok, J. Immune checkpoint blockade in cancer therapy. Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology. 33, 1974-1982 (2015).
  18. Gao, J., et al. VISTA is an inhibitory immune checkpoint that is increased in ipilimumab therapy in patients with prostate cancer. Nature Medicine. 23, 551-555 (2017).
  19. Hahn, A., Gill, D., Pal, S., Agarwal, N. The future of immune checkpoint cancer therapy after PD-1 and CTLA-4. Immunotherapy. 9, 681-692 (2017).
  20. Remon, J., Besse, B. Immune checkpoint inhibitors in first-line therapy of advanced non-small cell lung cancer. Current Opinion in Oncology. 29, 97-104 (2017).
  21. Kudo, M. Immune checkpoint blockade in hepatocellular carcinoma: 2017 update. Liver Cancer. 6, 1-12 (2017).
  22. Kudo, M. Immune checkpoint inhibition in hepatocellular carcinoma: Basics and ongoing clinical trials. Oncology. 92, 50-62 (2017).
  23. Breous, E., Thimme, R. Potential of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 54, 830-834 (2011).
  24. Sprinzl, M., Galle, P. Facing the dawn of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 59, 9-10 (2013).
  25. Liu, D., Staveley-O’Carroll, K., Li, G. Immune-based therapy clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of Clinical Cell Immunology. 6, 376 (2015).
  26. Greten, T., Wang, X., Korangy, F. Current concepts of immune based treatments for patients with HCC: from basic science to novel treatment approaches. Gut. 64, 842-848 (2015).
  27. Koster, B., de Gruijl, T., van den Eertwegh, A. Recent developments and future challenges in immune checkpoint inhibitory cancer treatment. Current Opinion in Oncology. 27, 482-488 (2015).
  28. Johnson, D., Sullivan, R., Menzies, A. Immune checkpoint inhibitors in challenging populations. Cancer. 123, 1904-1911 (2017).
  29. Li, H., et al. Programmed cell death-1 (PD-1) checkpoint blockade in combination with an mTOR inhibitor restrains hepatocellular carcinoma growth induced by hepatoma cell-intrinsic PD-1. Hepatology. 66, 1920-1933 (2017).
  30. Heindryckx, F., Colle, I., van Vlierberghe, H. Experimental mouse models for hepatocellular carcinoma research. International Journal of Experimental Pathology. 90, 367-386 (2009).
  31. Qi, X., et al. Development of inCVAX, in situ cancer vaccine, and its immune response in mice with hepatocellular cancer. Journal of Clinical and Cellular Immunology. 7, 438 (2016).
  32. Qi, X., et al. Development of a radiofrequency ablation platform in a clinically relevant murine model of hepatocellular cancer. Cancer Biology and Therapy. 16, 1812-1819 (2015).
  33. Liu, D., et al. Sunitinib represses regulatory T cells to overcome immunotolerance in a murine model of hepatocellular cancer. Oncoimmunology. 7, 1372079 (2017).
  34. Staveley-O’Carroll, K., et al. In vivo ligation of CD40 enhances priming against the endogenous tumor antigen and promotes CD8+ T cell effector function in SV40 T antigen transgenic mice. Journal of Immunology. 171, 697-707 (2003).
  35. Avella, D., et al. Regression of established hepatocellular carcinoma is induced by chemoimmunotherapy in an orthotopic murine model. Hepatology. 55, 141-152 (2012).
  36. Li, G., et al. Successful chemoimmunotherapy against hepatocellular cancer in a novel murine model. Journal of Hepatology. 66, 75-85 (2017).
  37. Li, G., et al. Nanoliposome C6-ceramide increases the anti-tumor immune response and slows growth of liver tumors in ice. Gastroenterology. 154, 1024-1036 (2018).
  38. Held, W., et al. T antigen expression and tumorigenesis in transgenic mice containing a mouse major urinary protein/SV40 T antigen hybrid gene. EMBO Journal. 8, 183-191 (1989).
  39. Hanahan, D., Weinber, R. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
check_url/59368?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Qi, X., Schepers, E., Avella, D., Kimchi, E. T., Kaifi, J. T., Staveley-O’Carroll, K. F., Li, G. An Oncogenic Hepatocyte-Induced Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Cancer Arising in the Setting of Hepatic Inflammation and Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e59368, doi:10.3791/59368 (2019).

View Video