Summary

En onkogen hepatocyte-inducerad ortotopisk musmodell av Hepatocellulär cancer som uppkommer vid fastställandet av lever inflammation och fibros

Published: September 12, 2019
doi:

Summary

Här beskriver vi utvecklingen av en kliniskt relevant murin modell av levercancer går igenom de typiska immun funktioner av Hepatocellulär cancer (HCC).

Abstract

Avsaknaden av en kliniskt relevant djurmodell som behandlar de typiska immun egenskaperna hos Hepatocellulär cancer (HCC) har påtagligt hämmad klargörande av de bakomliggande mekanismerna och utvecklingen av innovativa immunterapeutiska strategier. För att utveckla en idealisk djurmodell går igenom mänskliga HCC, immunkompetenta manliga C57BL/6j möss först få en koltetraklorid (CCL4) injektion för att inducera leverfibros, sedan få histologiskt-normala onkogena hepatocyter från unga manliga SV40 T-antigen (TAg)-transgena möss (MTD2) genom intrasplenic (ISPL) inympning. Androgen genereras i mottagaren manliga möss vid puberteten initierar TAg uttryck under kontroll av en leverspecifik promotor. Som ett resultat, de överförda hepatocyterna blir cancerceller och bildar tumör massorna i inställningen av leverfibros/cirros. Denna roman modell härmar mänskliga HCC initiering och progression i samband med leverfibros/cirros och återspeglar de mest typiska dragen av mänskliga HCC inklusive immun dysfunktion.

Introduction

Hepatocellulär cancer (HCC) är den mest snabbt ökande typ av cancer i USA (USA)1,2,3. Varje år diagnostiseras cirka 850 000 nya fall4,5 och 700 000 patienter dör av denna dödliga sjukdom6,7,8,9,10 , vilket gör den till den näst högsta orsaken till cancerrelaterad död i hela världen. Hantering av HCC inkluderar kirurgisk resektion, transplantation, ablation, kemoembolisering, eller systemiska terapier, såsom sorafenib11. Tidig diagnostik och hantering med kirurgisk resektion eller transplantation har den högsta totala överlevnads förmånen4. Tyvärr, majoriteten av patienterna närvarande i ett senare skede och kräver hantering med ablation, chemoembolization eller sorafenib12. Sorafenib, en receptortyrosinkinashämmare (RTKI), godkändes av Food and Drug Administration i 2008 som den enda systemiska läkemedelsbehandling som finns tillgänglig för behandling av icke-resektabel HCC. Även om drogen ger bara en blygsam ökning av den totala överlevnaden, från 7,9 till 10,7 månader13, det gav en ny terapeutisk strategi som skulle kunna utnyttjas för att hantera HCC.

Att manipulera immunförsvaret för att eliminera etablerade cancerformer är ett snabbt växande fält inom cancerforskningen14. Immun kontrollpunkt studier har betydligt avancerad immunterapeutisk läkemedelsutveckling i cancerbehandling15,16. FDA godkände användningen av antikroppar (ABS) mot cytotoxiska T-lymfocytantigen 4 (CTLA-4), programmerad celldöd protein 1 (PD-1), och dess ligand PD-L1 för behandling av melanom, lungcancer, huvud-och halscancer, och cancer i urinblåsan17, 18 , 19 , 20. kliniska prövningar med monoterapi eller kombinationsbehandling som använder en eller flera antikroppar mot PD-1, PD-L1 eller CTLA-4 för behandling av avancerad HCC pågår21,22,23och prövningar har visat goda resultat. I 2017, FDA beviljade påskyndat godkännande för anti-PD-1 antikropp för att behandla HCC patienter, som är resistens mot sorafenib, men den totala responsfrekvensen av denna behandling är endast 14,3%. Andra strategier har inte översatts till klinisk praxis vid denna tid24,25. Övervinna tumör-inducerad djup immuntolerans för att förbättra immun kontrollpunkt terapi26; förutsäga effekten av immun kontrollpunkt terapi; förhindra immunrelaterade biverkningar; optimera administreringsväg, dosering, och frekvens; och hitta effektiva kombinationer av terapier27,28,29 alla är fortfarande mycket utmanande uppgifter.

Det finns flera konventionella metoder som används för att inducera HCC i musmodeller för närvarande och utnyttjas beroende på prövarens särskild forskning fråga30. Kemiskt inducerad HCC musmodeller med genotoxiska föreningar imitera skada-inducerad malignitet. Xenograft-modeller genom antingen ektopisk eller ortotopisk implantation av HCC-cellinjer lämpar sig för läkemedels screening. Ett antal genetiskt modifierade möss har konstruerats för att undersöka den patofysiologi av HCC. Transgena möss som uttrycker virala gener, onkogener och/eller tillväxtfaktorer gör det möjligt att identifiera vägar som är involverade i hepatocarcinogenes. På grund av inneboende begränsningar, dessa modeller inte recapitulate de typiska immun egenskaper ses i mänskliga HCC, som har signifikant hämmad klargörande av de bakomliggande mekanismerna och utvecklingen av innovativa immunterapeutiska strategier14 ,15. Vi har nyligen skapat en kliniskt relevant murinmodell. Denna roman modell inte bara härmar mänskliga HCC initiering och progression, men återspeglar också de flesta typiska egenskaper hos mänskliga sjukdomar inklusive immun dysfunktion. Vi har karakteriserat dess biologiska och immunologiska egenskaper. Genom att utnyttja denna nya modell har vi undersökt olika immunterapeutiska strategier för att behandla HCC31,32,33,34,35,36, 37. denna unika plattform ger oss möjlighet att studera mekanismer för tumörinducerad immunotolerans och att utveckla proof-of-Concept terapeutiska strategier för HCC mot eventuell klinisk översättning.

Protocol

Anmärkning: alla förfaranden inklusive djur försökspersoner har godkänts av IACUC vid University of Missouri. Alla möss fick Human vård enligt de kriterier som beskrivs i “handledning för vård och användning av försöksdjur”. Följande procedur för cell isolering och inympning ska utföras i en huva. Alla utövande konstnärer bör bära standard personlig skyddsutrustning för hantering av möss och vävnad. 1. induktion av leverfibros och cirros med IP-insprutning av koltetraklorid…

Representative Results

Onkogen hepatocyter isolerade från tagg-transgena möss (figur 2) var seedade i levern av vild typ möss genom intrasplenic injektion (figur 3). De transplanterade hepatocyterna framgångsrikt och tillförlitligt växte ortotopiska HCC tumörer (figur 4) med tumörspecifika antigen SV40 TAg (figur 5) vid fastställandet av leverinflammation och fibros (figur 1). <img alt="Figu…

Discussion

Med detta protokoll har vi etablerat en tillförlitlig och reproducerbar murina modell av HCC som härmar mänskliga HCC initiering och progression. Kliniskt, många riskfaktorer successivt inducera leverskada, leverfibros, cirros och den sista etappen av HCC. I vårt protokoll, IP injektion av CCl4 används för att först producera leverfibros i vild typ möss, vilket gör att efterföljande onkogena hepatocyter att bilda tumörer i inställningen av leverfibros. Vi fann att tumör bildning inträffade mest …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av NIH/NCI R01 CA164335-01A1 (K. F. Staveley-o ‘ Carroll, PI) och NIH/NCI R01CA208396 (mark Kester, Guangfu Li, Kevin F. Staveley-o ‘ Carroll).

Materials

Anesthesia machine VETEQUIP IMPAC6 anesthesia machine for surgery
Butterfly needle BD 8122963 Needle used for liver perfusion
C57BL/6 mice Jackson Lab 000664  mice used in prototol
Carprofen CRESCENT CHEMICAL 20402 carprofen for pain release
Cell Strainer  CORNING REF 431751 Cell strainer, 70µm, for hepatocytes isolation
Centrifuge Beckman Coulter Allegra X-30R centrifuge for cell isolation
Clips  Teleflex Medical REF 523700 Titanium Clips for spleen
Microscope Zeiss Primovert  microscope for cell observation
Mtd2 mice N/A Gift from Dr. William A Held at roswell Park Cancer Institute in 2002, maintained in our lab
Needle BD REF 305109 BD precisionglide needle, 27G x 1/2 (0.4mm x 13mm)
Suture ETHICON J303H coated VICRYL suture
SV40 T Ag antibody Abcam ab16879 anti-SV40 T-antigen antibody for IHC
Syringe BD REF 309626 1 mL TB syringe for cell injection
Trypan blue SIGMA T 8154 Trypan blue solution for cell viability test
Wound clips Reflex reflex9, Part. No. 201-1000 stainless steel wound clips for wound close

References

  1. O’Connor, S., Ward, J. W. Hepatocellular carcinoma – United States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 59, 517-520 (2010).
  2. Petrick, J., Kelly, S., Altekruse, S., McGlynn, K., Rosenberg, P. Future of Hepatocellular Carcinoma Incidence in the United States Forecast Through 2030. Journal of clinical oncology: official journal of the American Society of Clinical Oncology. 34, 1787-1794 (2016).
  3. Greten, T., Lai, C., Li, G., Staveley-O’Carroll, K. Targeted and Immune-based Therapies for Hepatocellular Carcinoma. Gastroenterology. 156, 510-524 (2019).
  4. Llovet, J., Zucman-Rossi, J., Pikarsky, E., Sangro, B., Schwartz, M., Sherman, M., Gores, G. Hepatocellular Carcinoma. Nature reviews. Disease primers. 2, 16018 (2016).
  5. Ding, X., et al. Precision medicine for hepatocellular carcinoma: driver mutations and targeted therapy. Oncotarget. 8, 55715-55730 (2017).
  6. Colombo, M., Maisonneuve, P. Controlling liver cancer mortality on a global scale: still a long way to go. Journal of Hepatology. 67, 216-217 (2017).
  7. Llovet, J., Burroughs, A., Bruix, J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 362, 1907-1917 (2003).
  8. Parkin, D., Bray, F., Ferlay, J., Pisani, P. Estimating the world cancer burden: Globocan 2000. International Journal of Cancer. 94, 153-156 (2001).
  9. Thomas, M., Zhu, A. Hepocellular carcinoma: the need for progress. Journal of Clinical Oncology. 23, 2892-2899 (2005).
  10. Llovet, J., Bruix, J. Molecular targeted therapies in hepatocellular carcinoma. Hepatology. 48, 1312-1327 (2008).
  11. Bruix, J., Sherman, M. Management of hepatocellular carcinoma: an update. Hepatology. 53, 1020-1022 (2011).
  12. Pang, T., Lam, V. Surgical management of hepatocellular carcinoma. World Journal of Hepatology. 7, 245-252 (2015).
  13. Llovet, J., et al. Design and endpoints of clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of the National Cancer Institution. 100, 698-711 (2008).
  14. Mueller, K. Cancer immunology and immunotherapy. Realizing the promise. Introduction. Science. 348, 54-55 (2015).
  15. Gajewski, T., Schreiber, H., Fu, Y. Innate and adaptive immune cells in the tumor microenvironment. Nature Immunology. 14, 1014-1022 (2013).
  16. Ribas, A., Wolchok, J. Combining cancer immunotherapy and targeted therapy. Current Opinion in Immunology. 25, 291-296 (2013).
  17. Postow, M., Callahan, M., Wolchok, J. Immune checkpoint blockade in cancer therapy. Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology. 33, 1974-1982 (2015).
  18. Gao, J., et al. VISTA is an inhibitory immune checkpoint that is increased in ipilimumab therapy in patients with prostate cancer. Nature Medicine. 23, 551-555 (2017).
  19. Hahn, A., Gill, D., Pal, S., Agarwal, N. The future of immune checkpoint cancer therapy after PD-1 and CTLA-4. Immunotherapy. 9, 681-692 (2017).
  20. Remon, J., Besse, B. Immune checkpoint inhibitors in first-line therapy of advanced non-small cell lung cancer. Current Opinion in Oncology. 29, 97-104 (2017).
  21. Kudo, M. Immune checkpoint blockade in hepatocellular carcinoma: 2017 update. Liver Cancer. 6, 1-12 (2017).
  22. Kudo, M. Immune checkpoint inhibition in hepatocellular carcinoma: Basics and ongoing clinical trials. Oncology. 92, 50-62 (2017).
  23. Breous, E., Thimme, R. Potential of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 54, 830-834 (2011).
  24. Sprinzl, M., Galle, P. Facing the dawn of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 59, 9-10 (2013).
  25. Liu, D., Staveley-O’Carroll, K., Li, G. Immune-based therapy clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of Clinical Cell Immunology. 6, 376 (2015).
  26. Greten, T., Wang, X., Korangy, F. Current concepts of immune based treatments for patients with HCC: from basic science to novel treatment approaches. Gut. 64, 842-848 (2015).
  27. Koster, B., de Gruijl, T., van den Eertwegh, A. Recent developments and future challenges in immune checkpoint inhibitory cancer treatment. Current Opinion in Oncology. 27, 482-488 (2015).
  28. Johnson, D., Sullivan, R., Menzies, A. Immune checkpoint inhibitors in challenging populations. Cancer. 123, 1904-1911 (2017).
  29. Li, H., et al. Programmed cell death-1 (PD-1) checkpoint blockade in combination with an mTOR inhibitor restrains hepatocellular carcinoma growth induced by hepatoma cell-intrinsic PD-1. Hepatology. 66, 1920-1933 (2017).
  30. Heindryckx, F., Colle, I., van Vlierberghe, H. Experimental mouse models for hepatocellular carcinoma research. International Journal of Experimental Pathology. 90, 367-386 (2009).
  31. Qi, X., et al. Development of inCVAX, in situ cancer vaccine, and its immune response in mice with hepatocellular cancer. Journal of Clinical and Cellular Immunology. 7, 438 (2016).
  32. Qi, X., et al. Development of a radiofrequency ablation platform in a clinically relevant murine model of hepatocellular cancer. Cancer Biology and Therapy. 16, 1812-1819 (2015).
  33. Liu, D., et al. Sunitinib represses regulatory T cells to overcome immunotolerance in a murine model of hepatocellular cancer. Oncoimmunology. 7, 1372079 (2017).
  34. Staveley-O’Carroll, K., et al. In vivo ligation of CD40 enhances priming against the endogenous tumor antigen and promotes CD8+ T cell effector function in SV40 T antigen transgenic mice. Journal of Immunology. 171, 697-707 (2003).
  35. Avella, D., et al. Regression of established hepatocellular carcinoma is induced by chemoimmunotherapy in an orthotopic murine model. Hepatology. 55, 141-152 (2012).
  36. Li, G., et al. Successful chemoimmunotherapy against hepatocellular cancer in a novel murine model. Journal of Hepatology. 66, 75-85 (2017).
  37. Li, G., et al. Nanoliposome C6-ceramide increases the anti-tumor immune response and slows growth of liver tumors in ice. Gastroenterology. 154, 1024-1036 (2018).
  38. Held, W., et al. T antigen expression and tumorigenesis in transgenic mice containing a mouse major urinary protein/SV40 T antigen hybrid gene. EMBO Journal. 8, 183-191 (1989).
  39. Hanahan, D., Weinber, R. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
check_url/59368?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Qi, X., Schepers, E., Avella, D., Kimchi, E. T., Kaifi, J. T., Staveley-O’Carroll, K. F., Li, G. An Oncogenic Hepatocyte-Induced Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Cancer Arising in the Setting of Hepatic Inflammation and Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e59368, doi:10.3791/59368 (2019).

View Video