Summary

循環死後の心臓寄付の前臨床モデル

Published: August 02, 2019
doi:

Summary

このプロトコルは、循環死後の心臓寄付の実現可能性を高めるための新しいコンディショニング剤または戦略の評価のためのシンプルで柔軟なアプローチを示す。

Abstract

心臓移植需要は増加しています。それにもかかわらず、臓器の入手可能性は、適切なドナーの貧弱さのために制限されています。循環死後の臓器提供(DCD)は、この限られた利用可能性に対処するための解決策であるが、長期にわたる温暖虚血症の期間と組織損傷のリスクのために、心臓移植におけるその日常的な使用はめったに見られない。この原稿では、心臓機能の継続的なモニタリングを伴うDCDの文脈における現在の臨床慣行を厳密に模倣した詳細なプロトコルを提供し、新しい心保護戦略の評価と介入を減少させることを可能にする。虚血再灌流損傷。

このモデルでは、DCDプロトコルは、循環死を誘発するために換気を停止することによって麻酔されたルイスラットで開始される。収縮期血圧が30mmHgを下回ると、暖かい虚血時間が開始される。あらかじめ設定された暖かい虚血期の後、心臓はノルマザー性心筋溶液で洗い流され、調達され、Langendorff ex vivo心臓灌流システムに取り付けられる。初期再灌流および安定化の10分後、心室内圧力モニタリングを用いて60分間、心臓の再調整を連続的に評価する。心臓のトロポニンTを測定することによって心臓損傷を評価し、梗塞の大きさは組織染色によって定量される。暖かい虚血時間は、構造的および機能的損傷の所望の量を開発するために変調し、調整することができる。この簡単なプロトコルは、心脾痛、初期再灌流および/または排生灌流中に導入された異なる心保護調節戦略の評価を可能にします。このプロトコルから得られた知見は、臨床翻訳を容易にする、大規模なモデルで再現することができる。

Introduction

固体臓器移植全般および心臓移植は、特に、世界的に増加している1,2.臓器調達の標準的な方法は、脳死後の寄付(DBD)です。DBDの厳格な包含基準を考えると、提供された心臓の40%未満が3を受け入れられ、それによって需要の増加に直面して提供を制限し、臓器待ちリストを拡張する。この問題に対処するために、循環死後に寄付された臓器の使用(DCD)は、潜在的な解決策考えられる4.

しかし、DCDドナーでは、ケアの撤退後の経度相と蘇生前の無防備な温暖虚血の期間は避けられない5.循環死後の潜在的な臓器損傷は臓器機能障害を引き起こす可能性がある。DCD心臓を臨床的に使用しているのは4つのセンターのみで、非常に短い温暖な虚血時間と慢性病理を持たない若いドナーを含む厳しい基準を有する6、7が報告されている。倫理的および法的な理由から、循環死5、8、9の前にドナーに限定された、または全く心保護介入を適用することができる。したがって、虚血再灌流(IR)損傷を緩和するための緩和策は、心置行溶液による早期再灌流中に開始される心保護療法に限定され、適切な機能評価を可能にしない。専用プラットフォームを用いてDCD心臓のエクスビボ心臓灌流(EVHP)とリコンディショニングが代替ソリューションとして提案され、様々な学者によって研究されている10、11、12、13.EVHPは、機能回復を改善するためにDCD心臓にポストコンディショニング剤を提供するユニークな機会を提供しています。しかし、効率的な臨床翻訳のためには、多くの技術的および実用的な問題が解決されるべきであり、これは移植性決定するための灌流および機能基準の範囲に関するコンセンサスの欠如によってさらに悪化する6、 8.

ここでは、調達時に開始された臓器ポストコンディショニングを調査するために使用できるex vivo心臓灌流システムと組み合わせた再現可能な前臨床小型動物DCDプロトコルの開発を報告し、初期再灌流中に、/またはEVHP全体で。

Protocol

すべての動物のケアと実験プロトコルは、実験動物のケアと使用のためのガイドに準拠し、センターホスピタリティ・ド・ル・ユニバーシテ・ド・モントリオール研究センターの施設動物ケアと使用委員会によって承認されました。 1. 予備準備 水浴をオンにして、心プレア送達システム(図1A)とランジェンドルフex生体灌流システム(<strong cla…

Representative Results

挿管後、血圧は予測可能なパターンで急速に低下する(図3)。予想死亡時間は5分未満です。 図 4は、WIT の 0、10、および 15 分に続くリコンディショニング開始時の平均圧力/時間曲線を示しています。収縮機能は時間の経過とともに改善されます。WITの短期間の使用は、収縮性が正常に戻ることを可能にし、形態学的損傷は検出?…

Discussion

ここで提示されるプロトコルは、心臓DCDのシンプルで便利で汎用性の高いモデルを導入し、心臓機能回復、組織損傷、およびドナーの回復を改善するためのポストコンディショニング心保護剤の使用を評価する機会を提供します。そうでなければ移植のために廃棄される心臓。Ex vivo心臓灌流システム(EVHP)システムは、心臓機能を評価するためのプラットフォームを提供し、ポストコンディシ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品の一部は、フォンダシオン・マルセル・エ・ローランデ・ゴセリンとフォンダシオン氏ステファン・フーミーの寛大な貢献によって支えられました。ニコラス・ノイズはFRQ-Sの学者です。

著者らは、ジョシュ・ジュオ・ル・フアン、ガブリエル・ガスコン、ソフィア・ギアッシ、キャサリン・スカラブリニのデータ収集支援に感謝したいと考えています。

Materials

0,9% Sodium Chloride. 1L bag Baxter Electrolyte solution for flushing in the modified Langendorff system.
14G 2" I.V catheter Jelco 4098 To act as endotracheal tube.
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride Milipore-Sigma T8877 Vital coloration
22G 1" I.V catheter BD 383532 I.V catheter with extension tube that facilitates manipulation for carotid catheterization
Adson Dressing Fcp, 4 3/4", Serr Skalar 50-3147 Additional forceps for tissue manipulation
Alm Self-retaining retractor 4×4 Teeth Blunt 2-3/4" Skalar 22-9027 Tissue retractor used to maintain the chest open.
Bridge amp ADinstruments FE221 Bridge amp for intracarotid blood pressure measurement
Calcium chloride Milipore-Sigma C1016 CaCl2 anhydrous, granular, ≤7.0 mm, ≥93.0% Part of the Krebs solution
D-(+)-Glucose Milipore-Sigma G8270 D-Glucose ≥99.5% Part of the Krebs solution
DIN(8) to Disposable BP Transducer ADinstruments MLAC06 Adapter cable for link between bridge amp and pressure transducer
Disposable BP Transducer (stopcock) ADinstruments MLT0670 Pressure transducer for intracarotid blood pressure measurement
dPBS Gibco 14190-144 Electrolyte solution without calcium or magnesium.
Eye Dressing Fcp, Str, Serr, 4" Skalar 66-2740 Additional forceps for tissue manipulation
Formalin solution, neutral buffered, 10% Milipore-Sigma HT501128 Fixative solution
Heating Pad Sunbean 756-CN
Heparin sodium 1000 UI/mL Sandoz For systemic anticoagulation
Hydrochloric Acid 36,5 to 38,0% Fisher scientific A144-500 Diluted 1:1 for pH correction
Ketamine Bimeda Anesthetic. 100 mg/ml
LabChart ADinstruments Control software for the Powerlab polygraph, allowing off-line analyses. Version 7, with blood pressure and PV loop modules enabled
Left ventricle pressure balloon Radnoti 170404 In latex. Size 4.
Lidocaine HCl 2% solution AstraZeneca Antiarrhythmic for the cardioplegic solution
Magnesium Chloride ACS ACP Chemicals M-0460 MgCl2+6H2O ≥99.0% Part of the Krebs solution
Micro pressure sensor Radnoti 159905 Micro pressure sensor and amplifier connected to the intraventricular balloon
Pacemaker Biotronik Reliaty Set to generate a pulse each 200 ms for a heart rate of 300 bpm.
pH bench top meter Fisher scientific AE150
Physiological monitor Kent Scientific Physiosuite For continuous monitoring of rodent temperature and saturation during the procedure
Plasma-Lyte A Baxter Electrolyte solution used as base to prepare cardioplegia
Potassium Chloride Milipore-Sigma P4504 KCl ≥99.0% Part of the Krebs solution
Potassium Chloride 2 meq/ml Hospira Part of the cardioplegic solution
PowerLab 8/30 Polygraph ADinstruments Electronic polygraph
Silk 2-0 Ethicon A305H Suture material for Langendorff apparatus
Silk 5-0 Ethicon A302H Suture material for carotid
Small animal anesthesia workstation Hallowell EMC 000A2770 Small animal ventilator
Sodium bicarbonate Milipore-Sigma S5761 NaHCO3 ≥99,5% Part of the Krebs solution
Sodium Chloride Milipore-Sigma S7653 NaCl ≥99.5% Part of the Krebs solution
Sodium Hydroxide pellets ACP chemicals S3700 Diluted to 5N (10 g in 50 ml) for pH correction
Sodium phosphate monobasic Milipore-Sigma S0751 NaH2PO4 ≥99.0% Part of the Krebs solution
Stevens Tenotomy Sciss, Str, Delicate, SH/SH, 4 1/2" Skalar 22-1240 Small scisors for atria and cava vein opening
Tissue slicer blades Thomas scientific 6727C18 Straight carbon steel blades for tissue slicing at the end of the protocol
Tuberculin safety syringe with needle 25G 5/8" CardinalHealth 8881511235 For heparin injection
Veterinary General Surgery Set Skalar 98-1275 Surgery instruments including disection scisors and mosquito clamps
Veterinary Micro Set Skalar 98-1311 Surgery instruments with microscisors used for carotid artery opening
Working Heart Rat/Guinea Pig/Rabbit system Radnoti 120101BEZ Modular working heart system modified for the needs of the protocol. Includes all the necesary tubbing, water jacketed reservoirs and valves, including 2 and 3 way stop cock
Xylazine Bayer Sedative. 20 mg/ml

References

  1. Gass, A. L., et al. Cardiac Transplantation in the New Era. Cardiology in Review. 23 (4), 182-188 (2015).
  2. von Dossow, V., Costa, J., D’Ovidio, F., Marczin, N. Worldwide trends in heart and lung transplantation: Guarding the most precious gift ever. Best Practice & Research. Clinical Anaesthesiology. 31 (2), 141-152 (2017).
  3. Hornby, K., Ross, H., Keshavjee, S., Rao, V., Shemie, S. D. Non-utilization of hearts and lungs after consent for donation: a Canadian multicentre study. Canadian Journal Of Anaesthesia. 53 (8), 831-837 (2006).
  4. Manyalich, M., Nelson, H., Delmonico, F. L. The need and opportunity for donation after circulatory death worldwide. Current Opinion In Organ Transplantation. 23 (1), 136-141 (2018).
  5. Shemie, S. D., et al. National recommendations for donation after cardiocirculatory death in Canada: Donation after cardiocirculatory death in Canada. CMAJ : Canadian Medical Association Journal. 175 (8), S1 (2006).
  6. Page, A., Messer, S., Large, S. R. Heart transplantation from donation after circulatory determined death. Annals of Cardiothoracic Surgery. 7 (1), 75-81 (2018).
  7. Monteagudo Vela, M., Garcia Saez, D., Simon, A. R. Current approaches in retrieval and heart preservation. Annals of Cardiothoracic Surgery. 7 (1), 67-74 (2018).
  8. Dhital, K. K., Chew, H. C., Macdonald, P. S. Donation after circulatory death heart transplantation. Current Opinion In Organ Transplantation. 22 (3), 189-197 (2017).
  9. McNally, S. J., Harrison, E. M., Wigmore, S. J. Ethical considerations in the application of preconditioning to solid organ transplantation. Journal of Medical Ethics. 31 (11), 631-634 (2005).
  10. Rao, V., Feindel, C. M., Weisel, R. D., Boylen, P., Cohen, G. Donor blood perfusion improves myocardial recovery after heart transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 16 (6), 667-673 (1997).
  11. Ramzy, D., et al. Cardiac allograft preservation using donor-shed blood supplemented with L-arginine. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 24 (10), 1665-1672 (2005).
  12. Xin, L., et al. A New Multi-Mode Perfusion System for Ex vivo Heart Perfusion Study. Journal of Medical Systems. 42 (2), 25 (2017).
  13. Messer, S., Ardehali, A., Tsui, S. Normothermic donor heart perfusion: current clinical experience and the future. Transplant International. 28 (6), 634-642 (2015).
  14. Flecknell, P. . Laboratory Animal Anaesthesia (Fourth Edition). , 77-108 (2016).
  15. Kearns, M. J., et al. A Rodent Model of Cardiac Donation After Circulatory Death and Novel Biomarkers of Cardiac Viability During Ex vivo Heart Perfusion. Transplantation. 101 (8), e231-e239 (2017).
  16. Sandha, J. K., et al. Steroids Limit Myocardial Edema During Ex vivo Perfusion of Hearts Donated After Circulatory Death. The Annals of Thoracic Surgery. 105 (6), 1763-1770 (2018).
  17. Iyer, A., et al. Increasing the tolerance of DCD hearts to warm ischemia by pharmacological postconditioning. American Journal of Transplantation. 14 (8), 1744-1752 (2014).
  18. Sanz, M. N., et al. Cardioprotective reperfusion strategies differentially affect mitochondria:studies in an isolated rat heart model of donation after circulatory death (DCD). American Journal of Transplantation. , (2018).
  19. Van de Wauwer, C., et al. The mode of death in the non-heart-beating donor has an impact on lung graft quality. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 36 (5), 919-926 (2009).
  20. Quader, M., et al. Determination of Optimal Coronary Flow for the Preservation of "Donation after Circulatory Death" in Murine Heart Model. ASAIO journal (American Society for Artificial Internal Organs : 1992). 64 (2), 225-231 (2018).
  21. Priebe, H. J. The acute open-chest model. British Journal Of Anaesthesia. 60 (8 Suppl 1), 38-41 (1988).
  22. Narita, M., et al. Cardiac effects of vecuronium and its interaction with autonomic nervous system in isolated perfused canine hearts. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 19 (6), 1000-1008 (1992).
  23. Dhital, K. K., et al. Adult heart transplantation with distant procurement and ex-vivo preservation of donor hearts after circulatory death: a case series. Lancet (London, England). 385 (9987), 2585-2591 (2015).
  24. Messer, S. J., et al. Functional assessment and transplantation of the donor heart after circulatory death. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (12), 1443-1452 (2016).
  25. White, C. W., et al. Assessment of donor heart viability during ex vivo heart perfusion. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 93 (10), 893-901 (2015).
  26. Mayr, A., et al. Cardiac troponin T and creatine kinase predict mid-term infarct size and left ventricular function after acute myocardial infarction: a cardiac MR study. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 33 (4), 847-854 (2011).
  27. Remppis, A., et al. Intracellular compartmentation of troponin T: release kinetics after global ischemia and calcium paradox in the isolated perfused rat heart. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 27 (2), 793-803 (1995).
  28. Rossello, X., Hall, A. R., Bell, R. M., Yellon, D. M. Characterization of the Langendorff Perfused Isolated Mouse Heart Model of Global Ischemia-Reperfusion Injury: Impact of Ischemia and Reperfusion Length on Infarct Size and LDH Release. Journal of Cardiovascular Pharmacology and Therapeutics. 21 (3), 286-295 (2016).
  29. Dornbierer, M., et al. Early reperfusion hemodynamics predict recovery in rat hearts: a potential approach towards evaluating cardiac grafts from non-heart-beating donors. PloS One. 7 (8), e43642 (2012).
  30. Henry, P. D. Positive staircase effect in the rat heart. The American Journal of Physiology. 228 (2), 360-364 (1975).
  31. Markert, M., et al. Evaluation of a method to correct the contractility index LVdP/dt(max) for changes in heart rate. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 66 (2), 98-105 (2012).
  32. Azar, T., Sharp, J., Lawson, D. Heart rates of male and female Sprague-Dawley and spontaneously hypertensive rats housed singly or in groups. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (2), 175-184 (2011).
  33. Bonney, S., Hughes, K., Eckle, T. Anesthetic cardioprotection: the role of adenosine. Current Pharmaceutical Design. 20 (36), 5690-5695 (2014).
  34. Ali, A. A., et al. Rat model of veno-arterial extracorporeal membrane oxygenation. Journal of Translational Medicine. 12, 37 (2014).
check_url/59789?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aceros, H., Joulali, L., Borie, M., Ribeiro, R. V. P., Badiwala, M. V., Der Sarkissian, S., Noiseux, N. Pre-clinical Model of Cardiac Donation after Circulatory Death. J. Vis. Exp. (150), e59789, doi:10.3791/59789 (2019).

View Video