Summary

Biaxiaal basgeluid en passieve testen van het Muriene voortplantingssysteem met behulp van een Myograph-druk

Published: August 13, 2019
doi:

Summary

Dit protocol gebruikt een commercieel beschikbare druk myograph systeem te voeren druk myograph testen op de Murine vagina en cervix. Met behulp van media met en zonder calcium werden de bijdragen van de gladde spiercellen (SMC) basale Toon en passieve extracellulaire matrix (ECM) geïsoleerd voor de organen onder geschatte fysiologische omstandigheden.

Abstract

De vrouwelijke voortplantingsorganen, in het bijzonder de vagina en de cervix, zijn samengesteld uit verschillende cellulaire componenten en een unieke extracellulaire matrix (ECM). Gladde spiercellen vertonen een contractiele functie binnen de vaginale en cervicale wanden. Afhankelijk van de biochemische omgeving en de mechanische uitzetting van de orgel wanden, veranderen de gladde spiercellen de contractiele omstandigheden. De bijdrage van de gladde spiercellen onder fysiologische voorwaarden bij aanvang is geclassificeerd als een basale Toon. Specifieker, een basale Toon is de baseline gedeeltelijke vernauwing van gladde spiercellen in de afwezigheid van hormonale en neurale stimulatie. Bovendien biedt de ECM structurele ondersteuning voor de orgel wanden en fungeert het als reservoir voor biochemische signalen. Deze biochemische aanwijzingen zijn van vitaal belang voor verschillende orgel functies, zoals het aanzetten tot groei en het handhaven van homeostase. De ECM van elk orgaan bestaat voornamelijk uit collageenvezels (meestal collageen types I, III en V), elastische vezels en glycosaminoglycans/proteoglycans. De samenstelling en organisatie van de ECM dicteren de mechanische eigenschappen van elk orgaan. Een verandering in de ECM-samenstelling kan leiden tot de ontwikkeling van reproductieve pathologieën, zoals verzakking van het bekken of vroegtijdige cervicale remodellering. Bovendien kunnen veranderingen in ECM-microstructuur en stijfheid de activiteit van de gladde spiercellen en het fenotype veranderen, wat resulteert in het verlies van de contractiele kracht.

In dit werk worden de gerapporteerde protocollen gebruikt om de basale Toon en passieve mechanische eigenschappen van de nonpregnant Murine vagina en baarmoederhals op 4-6 maanden oud in Estrus te beoordelen. De organen werden gemonteerd in een in de handel verkrijgbare druk myograph en zowel druk-diameter en kracht-lengte tests werden uitgevoerd. Voorbeeldgegevens en gegevensanalyse technieken voor de mechanische karakterisering van de voortplantingsorganen zijn opgenomen. Dergelijke informatie kan nuttig zijn voor het construeren van wiskundige modellen en het rationaal ontwerpen van therapeutische interventies voor gezondheids pathologieën van vrouwen.

Introduction

De vaginale wand bestaat uit vier lagen, het epitheel, lamina propria, Muscularis en adventitia. Het epitheel bestaat voornamelijk uit epitheelcellen. De lamina propria heeft een grote hoeveelheid elastische en fibrillar collageenvezels. De Muscularis is ook samengesteld uit elastine en collageenvezels, maar heeft een toegenomen hoeveelheid gladde spiercellen. De adventitia bestaat uit Elastin, collageen en fibroblasten, zij het in gereduceerde concentraties in vergelijking met de voorgaande lagen. De gladde spiercellen zijn van belang voor biomechanisch gemotiveerde onderzoeksgroepen als ze een rol spelen in de contractiele aard van de organen. Als zodanig, kwantificeren van de gladde spier cel gebied breuk en organisatie is de sleutel tot het begrijpen van de mechanische functie. Eerdere onderzoeken suggereren dat de gladde spier inhoud binnen de vaginale wand voornamelijk wordt georganiseerd in de omtrek en lengteas. Histologische analyse suggereert dat de Fractie van de gladde spier gebied is ongeveer 35% voor zowel de proximale en distale delen van de muur1.

De baarmoederhals is een zeer collagene structuur, die tot voor kort werd gedacht te hebben minimale gladde spier celinhoud2,3. Recente studies, echter, hebben gesuggereerd dat gladde spiercellen kunnen een grotere overvloed en rol in de baarmoederhals4,5hebben. De baarmoederhals vertoont een gradiënt van gladde spiercellen. De interne OS bevat 50-60% gladde spiercellen waar de externe OS slechts 10% bevat. Muis studies, echter, verslag van de baarmoederhals worden samengesteld uit 10-15% gladde spiercellen en 85-90% vezelgebonden bindweefsel zonder vermelding van regionale verschillen6,7,8. Gezien het feit dat het muismodel verschilt van het frequent gemelde menselijk model, zijn verdere onderzoeken met betrekking tot de muis baarmoederhals nodig.

Het doel van dit protocol was om de mechanische eigenschappen van de Murine vagina en cervix te verhelmaken. Dit werd bereikt met behulp van een druk myograph-apparaat waarmee de beoordeling van mechanische eigenschappen in de omtrek en axiale richtingen tegelijkertijd met behoud van inheemse cel-matrix interacties en orgel geometrie. De organen werden gemonteerd op twee aangepaste canules en beveiligd met zijde 6-0 hechtingen. Druk-diameter tests werden uitgevoerd rond de geschatte fysiologische axiale stretch om te bepalen van de conformiteit en Tangent moduli9. Er werden tests van de kracht lengte uitgevoerd om het geschatte axiale rek te bevestigen en om ervoor te zorgen dat de mechanische eigenschappen in het fysiologische bereik werden gekwantificeerd. Het experimentele protocol werd uitgevoerd op de nonpregnant Murine vagina en baarmoederhals op 4-6 maanden oud in Estrus.

Het protocol is onderverdeeld in twee belangrijke mechanische test secties: basale Toon en passieve testen. Een basale Toon wordt gedefinieerd als de baseline gedeeltelijke vernauwing van gladde spiercellen, zelfs in de afwezigheid van externe lokale, hormonale en neurale stimulatie10. Deze Baseline contractiele aard van de vagina en baarmoederhals levert karakteristieke mechanische gedragingen die vervolgens worden gemeten door de druk myograph systeem. De passieve eigenschappen worden beoordeeld door het verwijderen van het intercellulaire calcium dat de baseline toestand van contractie handhaaft, resulterend in ontspanning van de gladde spiercellen. In de passieve toestand leveren collageen en elastinevezels de dominante bijdragen voor de mechanische eigenschappen van de organen.

Het model van de Murine wordt veelvuldig gebruikt om pathologieën in de reproductieve gezondheid van vrouwen te bestuderen. De muis biedt verschillende voordelen voor het kwantificeren van de evoluerende relaties tussen ECM en mechanische eigenschappen binnen het voortplantingssysteem11,12,13,14. Deze voordelen omvatten korte en goed gekarakteriseerde Oestrische cycli, relatief lage kosten, gemak van handling, en een relatief korte zwangerschaps tijd15. Bovendien is het genoom van laboratorium muizen goed in kaart gebracht en genetisch gemodificeerde muizen zijn waardevolle hulpmiddelen om mechanistische hypotheses16,17,18te testen.

In de handel verkrijgbare druk myograph systemen worden intensief gebruikt om de mechanische reacties van verschillende weefsels en organen te kwantificeren. Sommige opmerkelijke structuren geanalyseerd op de druk myograph systeem omvatten elastische slagaders19,20,21,22, aderen en weefsel engineered vasculaire grafts23,24, de slokdarm25, en de grote darmen26. De druk myograph-technologie maakt gelijktijdige beoordeling van eigenschappen in de axiale en omtrek richtingen mogelijk met behoud van de native Cell-ECM interacties en in vivo geometrie. Ondanks het uitgebreide gebruik van myograph systemen in zachte weefsel en orgel mechanica, een protocol met behulp van de druk myograph technologie was niet eerder ontwikkeld voor de vagina en cervix. Voorafgaand onderzoek naar de mechanische eigenschappen van de vagina en baarmoederhals werden beoordeeld uniaxially27,28. Deze organen ervaren echter multiaxiaal laden binnen het lichaam29,30, dus kwantificeren hun Biaxiale mechanische respons is belangrijk.

Bovendien, recent werk suggereert dat gladde spiercellen een mogelijke rol kunnen spelen bij pathologieën van weke delen5,28,31,32. Dit biedt een andere aantrekkingskracht van het gebruik van de druk myograph technologie, als het behoudt de inheemse cel-matrix interacties, waardoor afbakening van de bijdrage die gladde spiercellen spelen in fysiologische en pathofysiologisch Voorwaarden. Hierin stellen we een protocol voor om de multiaxiale mechanische eigenschappen van de vagina en de baarmoederhals te kwantificeren onder zowel basale Toon als passieve omstandigheden.

Protocol

Nulliparous 4-6 maanden vrouwelijke C57BL6J muizen (29,4 ± 6,8 gram) bij oestrus werden gebruikt voor deze studie. Alle procedures werden goedgekeurd door het Instituut Dierenzorg en gebruik Comité aan Tulane University. Na de bevalling werden de muizen één week voor euthanasie geacclimeerd en werden ze onder standaardomstandigheden ondergebracht (12 uur durende licht/donker cycli). 1. opoffering van de muis bij oestrus Bepaal de oestrische cyclus: de oestrische cyclus werd gemon…

Representative Results

Succesvolle analyse van de mechanische eigenschappen van de vrouwelijke voortplantingsorganen is afhankelijk van de juiste orgaan dissectie, cannulatie, en testen. Het is noodzakelijk om de baarmoeder hoorns zonder gebreken naar de vagina te planten (Figuur 1). Afhankelijk van het type orgel zal de canule grootte variëren (Figuur 2). De cannulatie moet worden uitgevoerd zodat het orgel niet kan bewegen tijdens het experiment, maar ook de wand van het orgel niet beschadi…

Discussion

Het protocol in dit artikel geeft een methode voor het bepalen van de mechanische eigenschappen van de Murine vagina en cervix. De in dit protocol geanalyseerde mechanische eigenschappen omvatten zowel de passieve als de basale Toon omstandigheden van de organen. Passieve en basale Toon omstandigheden worden veroorzaakt door het veranderen van de biochemische omgeving waarin het orgel wordt ondergedompeld. Voor dit protocol bevat de bij de basale test betrokken media calcium. Testen van de basale Toon voorwaarde staat is…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Het werk werd gefinancierd door de NSF CAREER Award subsidie #1751050.

Materials

2F catheter Millar SPR-320 catheter to measure cervical pressure
6-0 Suture Fine Science Tools 18020-60 larger suture ties
CaCl2 (anhydrous) VWR 97062-590 HBSS concentration: 140 mg/ mL
CaCl2-2H20 Fischer chemical BDH9224-1KG
KRB concentration: 3.68 g/L
Dextrose (D-glucose) VWR 101172-434 HBSS concentration: 1000 mg/mL
KRB concentration: 19.8 g/L
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35 curved forceps
Dumont SS Forceps Fine Science Tools 11203-25 straight forceps
Eclipse Nikon E200 microscope used for imaging
Flow meter Danish MyoTechnologies 161FM flow meter within the testing apparatus
Force Transducer – 110P Danish MyoTechnologies 100079 force transducer
ImageJ SciJava ImageJ1 used to measure volume
Instrument Cases Fine Science Tools 20830-00 casing to hold dissection tools
KCl Fisher Chemical 97061-566 HBSS concentration: 400 mg/ mL
KRB concentration: 3.5 g/L
KH2PO4 G-Biosciences 71003-454 HBSS concentration: 60 mg/ mL
MgCl2 VWR 97064-150
KRB concentration: 1.14 g/L
MgCl2-6H2O VWR BDH9244-500G HBSS concentration: 100 mg/ mL
MgSO4-7H20 VWR 97062-134 HBSS concentration: 48 mg/ mL
Mircosoft excel Microsoft 6278402 program used for spreadsheet
Na2HPO4 (dibasic anhydrous) VWR 97061-588 HBSS concentration: 48 mg/mL
KRB concentration: 1.44 g/L
NaCl VWR 97061-274 HBSS concentration: 8000 mg/mL
KRB concentration: 70.1 g/L
NaHCO3 VWR 97062-460 HBSS concentration: 350 mg/ mL
KRB concentration: 21.0 g/L
Pressure myograph systems Danish MyoTechnologies 110P and 120CP Pressure myograph system:
prorgram, cannulation device,
and controller unit
Pressure Transducer Danish MyoTechnologies 100106 pressure transducer
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20 straight forceps
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91500-09 micro-scissors
Tissue dye Bradley Products 1101-3 ink to measure in vivo stretch
Ultrasound transducer FujiFilm Visual Sonics LZ-550 ultrasound transducer used; 256 elements, 40 MHz center frequency
VEVO2100 FujiFilm Visual Sonics VS-20035 ultrasound used for imaging
Wagner Scissors Fine Science Tools 14069-12 larger scissors

References

  1. Capone, D., et al. Evaluating Residual Strain Throughout the Murine Female Reproductive System. Journal of Biomechanics. 82, 299-306 (2019).
  2. Danforth, D. The fibrous nature of the human cervix, and its relation to the isthmic segment in gravid and nongravid uteri. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 53 (4), 541-560 (1947).
  3. Hughesdon, P. The fibromuscular structure of the cervix and its changes during pregnancy and labour. Journal of Obstetrics and Gynecology of the British Commonwealth. 59, 763-776 (1952).
  4. Bryman, I., Norstrom, A., Lindblo, B. Influence of neurohypophyseal hormones on human cervical smooth muscle cell contractility in vitro. Obstetrics and Gynecology. 75 (2), 240-243 (1990).
  5. Joy, V., et al. A New Paradigm for the Role of Smooth Muscle Cells in the Human Cervix. Obstetrics. 215 (4), e471-e478 (2016).
  6. Xu, X., Akgul, Y., Mahendroo, M., Jerschow, A. Ex vivo assessment of mouse cervical remodeling through pregnancy via Na (23) MRS. NMR Biomedical. 23 (23), 907-912 (2014).
  7. Leppert, P. Anatomy and Physiology of cervical ripening. Clinical Obstetrics and Gynecology. 43 (43), 433-439 (2000).
  8. Schlembach, D., et al. Cervical ripening and insufficiency: from biochemical and molecular studies to in vivo clinical examination. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 144, S70-S79 (2000).
  9. Stoka, K., et al. Effects of Increased Arterial Stiffiness on Atherosclerotic Plaque Amounts. Journal of Biomechanical Engineering. 140 (5), (2018).
  10. Mohram, D., Heller, L. Ch. 7. Cardiovascular Physiology. , (2006).
  11. Yoshida, K., et al. Quantitative Evaluation of Collagen Crosslinks and Corresponding Tensile Mechanical Properties in Mouse Cervical Tissue during Normal Pregnancy. PLoS One. 9, e112391 (2014).
  12. Mahendroo, M. Cervical remodeling in term and preterm birth: insight from an animal model. Society for Reproduction and Fertility. 143 (4), 429-438 (2012).
  13. Elovitz, M., Miranlini, C. Can medroxyprogesterone acetate alter Toll-like receptor expression in a mouse model of intrauterine inflammation?. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 193 (3), 1149-1155 (2005).
  14. Ripperda, C., et al. Vaginal estrogen: a dual-edged sword in postoperative healing of the vaginal wall. North American Menopause Society. 24 (7), 838-849 (2017).
  15. Nelson, J., Felicio, P., Randall, K., Sims, C., Finch, E. A Longitudinal Study of Estrous Cyclicity in Aging C57/6J Mice: Cycle, Frequency, Length, and Vaginal Cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  16. Ferruzzi, J., Collins, M., Yeh, A., Humphrey, J. Mechanical assessment of elastin integrity in fibrillin-1-deficient carotid arteries: implications for Marfan Syndrome. Cardiovascular Research. 92 (2), 287-295 (2011).
  17. Mariko, B., et al. Fribrillin-1 genetic deficiency leads to pathological ageing of arteries in mice. The Journal of Pathology. 224 (1), 33-44 (2011).
  18. Rahn, D., Ruff, M., Brown, S., Tibbals, H., Word, R. Biomechanical Properties of The Vaginal Wall: Effect of Pregnancy, Elastic Fiber Deficiency, and Pelvic Organ Prolapse. American Urogynecological Society. 198 (5), (2009).
  19. Caulk, A., Nepiyushchikh, Z., Shaw, R., Dixon, B., Gleason, R. Quantification of the passive and active biaxial mechanical behavior and microstructural organization of rat thoracic ducts. Royal Society Interface. 12 (108), 20150280 (2015).
  20. Amin, M., Le, V., Wagenseil, J. Mechanical Testing of Mouse Carotid Arteries: from Newborn to Adult. Journal of Visualized Experiments. (60), e3733 (2012).
  21. Sokolis, D., Sassani, S., Kritharis, E., Tsangaris, S. Differential histomechanical response of carotid artery in relation to species and region: mathematical description accounting for elastin and collagen anisiotropy. Medical and Biological Engineering and Computing. 49 (8), 867-879 (2011).
  22. Kim, J., Baek, S. Circumferential variations of the mechanical behavior of the porcine thoracic aorta during the inflation test. Journal of Biomechanics. 44 (10), 1941-1947 (2011).
  23. Faury, G., et al. Developmental adaptation of the mouse cardiovascular system to elastin haploinsufficency. Journal of Clinical Investigation. 11 (9), 1419-1428 (2003).
  24. Naito, Y., et al. Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue-Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model. Tissue Engineering. 20, 346-355 (2014).
  25. Sommer, G., et al. Multaxial mechanical response and constitutive modeling of esophageal tissues: Impact on esophageal tissue engineering. Acta Biomaterialia. 9 (12), 9379-9391 (2013).
  26. Sokolis, D., Orfanidis, I., Peroulis, M. Biomechanical testing and material characterization for the rat large intestine: regional dependence of material parameters. Physiological Measurement. 32 (12), 1969-1982 (2011).
  27. Martins, P., et al. Prediction of Nonlinear Elastic Behavior of Vaginal Tissue: Experimental Results and Model Formation. Computational Methods of Biomechanics and Biomedical Engineering. 13 (3), 317-337 (2010).
  28. Feola, A., et al. Deterioration in Biomechanical Properties of the Vagina Following Implantation of a High-stiffness Prolapse Mesh. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 120 (2), 224-232 (2012).
  29. Huntington, A., Rizzuto, E., Abramowitch, S., Prete, Z., De Vita, R. Anisotropy of the Passive and Active Rat Vagina Under Biaxial Loading. Annals of Biomedical Engineering. 47, 272-281 (2018).
  30. Tokar, S., Feola, A., Moalli, P., Abramowitch, S. Characterizing the Biaxial Mechanical Properties of Vaginal Maternal Adaptations During Pregnancy. ASME 2010 Summer Bioengineering Conference, Parts A and B. , 689-690 (2010).
  31. Feloa, A., et al. Impact of Pregnancy and Vaginal Delivery on the Passive and Active Mechanics of the Rat Vagina. Annals of Biomedical Engineering. 39 (1), 549-558 (2010).
  32. Baah-Dwomoh, A., Alperin, M., Cook, M., De Vita, R. Mechanical Analysis of the Uterosacral Ligament: Swine vs Human. Annual Biomedical Engineering. 46 (12), 2036-2047 (2018).
  33. Champlin, A. Determining the Stage of the Estrous Cycle in the Mouse by the Appearance. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  34. Byers, S., Wiles, M., Dunn, S., Taft, R. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS One. 7 (4), e35538 (2012).
  35. McLean, A. Performing Vaginal Lavage, Crystal Violet Staining and Vaginal Cytological Evaluation for Mouse Estrous Cycle Staging Identification. Journal of Visualized Experiments. 67, e4389 (2012).
  36. Bugg, G., Riley, M., Johnston, T., Baker, P., Taggart, M. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition. European Journal of Clinical Investigation. 36 (2), 133-140 (2006).
  37. Taggart, M., Wray, S. Hypoxia and smooth muscle function: key regulatory events during metabolic stress. Journal of Physiology. 509, 315-325 (1998).
  38. Yoo, K., et al. The effects of volatile anesthetics on spontaneous contractility of isolated human pregnant uterine muscle: a comparison among sevoflurane, desflurane, isoflurane, and halothane. Anesthesia and Analgesia. 103 (2), 443-447 (2006).
  39. de Souza, L., et al. Effects of redox disturbances on intentional contractile reactivity in rats fed with a hypercaloric diet. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 6364821 (2018).
  40. Jaue, D., Ma, Z., Lee, S. Cardiac muscarinic receptor function in rats with cirrhotic cardiomyopathy. Hepatology. 25, 1361-1365 (1997).
  41. Xu, Q., Shaffer, E. The potential site of impaired gallbladder contractility in an animal mode of cholesterol gallstone disease. Gastroenterology. 110 (1), 251-257 (1996).
  42. Rodriguez, U., et al. Effects of blast induced Neurotrauma on pressurized rodent middle cerebral arteries. Journal of Visualized Experimentals. (146), e58792 (2019).
  43. Rubod, C., Boukerrou, M., Brieu, M., Dubois, P., Cosson, M. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue Part 1: New Experimental Protocol. Journal of Urology. 178, 320-325 (2007).
  44. Robison, K., Conway, C., Desrosiers, L., Knoepp, L., Miller, K. Biaxial Mechanical Assessment of the Murine Vaginal Wall Using Extension-Inflation Testing. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (10), 104504 (2017).
  45. Van loon, P. Length-Force and Volume-Pressure Relationships of Arteries. Biorheology. 14 (4), 181-201 (1977).
  46. Fernandez, M., et al. Investigating the Mechanical Function of the Cervix During Pregnancy using Finite Element Models Derived from High Resolution 3D MRI. Computational Methods Biomechanical and Biomedical Engineering. 19 (4), 404-417 (2015).
  47. House, M., Socrate, S. The Cervix as a Biomechanical Structure. Ultrasound Obstetric Gynecology. 28 (6), 745-749 (2006).
  48. Martins, P., et al. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue in Women with Pelvic Organ Prolapse. Gynecologic and Obstetrics Investigation. 75, 85-92 (2013).
  49. Rada, C., Pierce, S., Grotegut, C., England, S. Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In vivo. Journal of Visualized Experiments. (98), e52541 (2015).
  50. Lumsden, M. A., Baird, D. T. Intra-uterine pressure in dysmenorrhea. Acta Obstectricia at Gynecologica Scandinavica. 64 (2), 183-186 (1985).
  51. Milsom, I., Andersch, B., Sundell, G. The Effect of Flurbiprofen and Naproxen Sodium On Intra-Uterine Pressure and Menstrual Pain in Patients With Primary Dysmennorrhea. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (8), 711-716 (1988).
  52. Park, K., et al. Vasculogenic female sexual dysfunction: the hemodynamic basis for vaginal engorgement insufficiency and clitoral erectile insufficiency. International Journal of Impotence Journal. 9 (1), 27-37 (1997).
  53. Bulletti, C., et al. Uterine Contractility During Menstrual Cycle. Human Reproduction. 15, 81-89 (2000).
  54. Kim, N. N., et al. Effects of Ovariectomy and Steroid Hormones on Vaginal Smooth Muscle Contractility. International Journal of Impotence Research. 16, 43-50 (2004).
  55. Giraldi, A., et al. Morphological and Functional Characterization of a Rat Vaginal Smooth Muscle Sphincter. International Journal of Impotence Research. 14, 271-282 (2002).
  56. Gleason, R., Gray, S. P., Wilson, E., Humphrey, J. A Multiaxial Computer-Controlled Organ Culture and Biomechanical Device for Mouse Carotid Arteries. Journal of Biomechanical Engineering. 126 (6), 787-795 (2005).
  57. Swartz, M., Tscumperlin, D., Kamm, R., Drazen, J. Mechanical Stress is Communicated Between Different Cell Types to Elicit Matrix Remodeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (11), 6180-6185 (2001).
  58. Rachev, A. Remodeling of Arteries in Response to Changes in their Mechanical Environment. Biomechanics of Soft Tissue in Cardiovascular Systems. 441, 221-271 (2003).
  59. Lee, E. J., Holmes, J., Costa, K. Remodeling of Engineered Tissue Anisotropy in Response to Altered Loading Conditions. Annals of Biomedical Engineering. 36 (8), 1322-1334 (2008).
  60. Akintunde, A., et al. Effects of Elastase Digestion on the Murine Vaginal Wall Biaxial Mechanical Response. Journal of Biomechanical Engineering. 141 (2), 021011 (2018).
  61. Griffin, M., Premakumar, Y., Seifalian, A., Butler, P., Szarko, M. Biomechanical Characterization of Human Soft Tissues Using Indentation and Tensile Testing. Journal of Visualized Experiments. (118), e54872 (2016).
  62. Myers, K., Socrate, S., Paskaleva, A., House, M. A Study of the Anisotripy and Tension/Compression Behavior of Human Cervical Tissue. Journal of Biomechanical Engineering. 132 (2), 021003 (2010).
  63. Murtada, S., Ferruzzi, J., Yanagisawa, H., Humphrey, J. Reduced Biaxial Contractility in the Descending Thoracic Aorta of Fibulin-5 Deficent Mice. Journal of Biomechanical Engineering. 138 (5), 051008 (2016).
  64. Berkley, K., McAllister, S., Accius, B., Winnard, K. Endometriosis-induced vaginal hyperalgesia in the rat: effect of estropause, ovariectomy, and estradiol replacement. Pain. 132, s150-s159 (2007).
  65. van der Walt, I., Bø, K., Hanekom, S., Rienhardt, G. Ethnic Differences in pelvic floor muscle strength and endurance in South African women. International Urogynecology Journal. 25 (6), 799-805 (2014).
check_url/60125?article_type=t

Play Video

Cite This Article
White, S. E., Conway, C. K., Clark, G. L., Lawrence, D. J., Bayer, C. L., Miller, K. S. Biaxial Basal Tone and Passive Testing of the Murine Reproductive System Using a Pressure Myograph. J. Vis. Exp. (150), e60125, doi:10.3791/60125 (2019).

View Video