JoVE Journal > Bioengineering
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Results
Discussion
Disclosures
Acknowledgements
Materials
References
Automatic Translation
Bioengineering

Biaksiale basal tone og passiv testing av murine reproduktive system ved hjelp av en Pressure Myograph

Published: August 13, 2019
doi:
10.3791/60125
, , , , ,
1Department of Biomedical Engineering,Tulane University

Summary

Denne protokollen benyttet et kommersielt tilgjengelig trykk myograph system for å utføre trykk myograph testing på murine vagina og cervix. Bruker Media med og uten kalsium, bidrag av glatt muskelceller (SMC) basal tone og passiv ekstracellulære matrise (ECM) ble isolert for organene under estimerte fysiologiske forhold.

Abstract

Den kvinnelige reproduktive organer, spesielt vagina og cervix, er sammensatt av ulike cellulære komponenter og en unik ekstracellulære matrise (ECM). Glatte muskelceller viser en kontraktile funksjon innenfor vaginal og cervical vegger. Avhengig av biokjemiske miljø og mekaniske distensjon av orgel veggene, de glatte muskelceller endre kontraktile forhold. Bidraget av den glatte muskelceller under Baseline fysiologiske forhold er klassifisert som en basal tone. Mer spesifikt, en basal tone er Baseline delvis innsnevring av glatte muskelceller i fravær av hormonelle og neural stimulering. Videre gir ECM strukturell støtte til orgel veggene og fungerer som et reservoar for biokjemiske signaler. Disse biokjemiske Stikkordene er avgjørende for ulike organ funksjoner, for eksempel oppfordre vekst og opprettholde homeostase. ECM av hvert organ består hovedsakelig av kollagen fibre (for det meste kollagen typer I, III og V), elastiske fibre, og glykosaminoglykaner/proteoglycans. Sammensetningen og organiseringen av ECM dikterer de mekaniske egenskapene til hvert organ. En endring i ECM sammensetning kan føre til utvikling av reproduktive patologi, slik som bekken orgel prolaps eller prematur cervical remodeling. Videre kan endringer i ECM-mikrostruktur og stivhet endre jevn muskel celle aktivitet og fenotype, noe som resulterer i tap av kontraktile kraft.

I dette arbeidet, de rapporterte protokollene brukes til å vurdere basal tone og passive mekaniske egenskaper av nonpregnant murine vagina og cervix på 4-6 måneders alder i estrus. Organene ble montert i et kommersielt tilgjengelig trykk myograph og både trykk-diameter og Force-lengde tester ble utført. Eksempel data og dataanalyse teknikker for mekanisk karakterisering av reproduktive organer er inkludert. Slik informasjon kan være nyttig for å konstruere matematiske modeller og rasjonelt designe terapeutiske intervensjoner for kvinners helse patologi.

Introduction

Den vaginal veggen består av fire lag, epitel, lamina propria, muscularis, og adventitia. Epitel er hovedsakelig sammensatt av epitelceller. Lamina propria har en stor mengde elastiske og fibrillær kollagen fibre. Muscularis er også sammensatt av elastin og kollagen fibre, men har en økt mengde glatte muskelceller. Adventitia består av elastin, kollagen og fibroblaster, riktignok i reduserte konsentrasjoner sammenlignet med tidligere lag. Den glatte muskelceller er av interesse for å biomekanisk motiverte forskningsgrupper som de spiller en rolle i kontraktile natur organer. Som sådan, Kvantifisere det glatte muskelen cellen område brøk og organisasjon er nøkkel å forståelse det mekanisk funksjonen. Tidligere undersøkelser tyder på at glatt muskel innhold i vaginal veggen er primært organisert i circumferential og langsgående aksen. Histologiske analyse tyder på at den glatte muskelområdet brøkdel er ca 35% for både proksimale og de flate delene av veggen1.

Livmorhalsen er en svært Collagenous struktur, som inntil nylig ble antatt å ha minimal glatt muskel celleinnhold2,3. Nyere studier har imidlertid antydet at glatte muskelceller kan ha en større overflod og rolle i livmorhalsen4,5. Livmorhalsen utstillinger en gradient av glatte muskelceller. Det indre OS behersker 50-60% glatte muskelen celler der hvor det ekstern OS bare behersker 10%. Mus studier imidlertid rapportere cervix å være sammensatt av 10-15% glatte muskelceller og 85-90% fiber bindevev uten omtale av regionale forskjeller6,7,8. Gitt at musen modellen er forskjellig fra den ofte rapporterte menneskelige modellen, videre undersøkelser om musen cervix er nødvendig.

Hensikten med denne protokollen var å belyse de mekaniske egenskapene til murine vagina og cervix. Dette ble gjort ved hjelp av en trykk myograph enhet som muliggjør vurdering av mekaniske egenskaper i circumferential og aksial retninger samtidig samtidig som innfødte celle-matrise interaksjoner og organ geometri. Organene ble montert på to tilpassede kanyler og sikret med silke 6-0 sting. Trykk-diameter testene ble utført rundt estimert fysiologisk aksial strekk for å bestemme samsvar og tangent moduli9. Force-lengde testene ble gjennomført for å bekrefte estimert aksial strekk og for å sikre at mekaniske egenskaper ble kvantifisert i det fysiologiske området. Den eksperimentelle protokollen ble utført på nonpregnant murine vagina og cervix på 4-6 måneders alder i estrus.

Protokollen er delt inn i to viktigste mekaniske test seksjoner: basal tone og passiv testing. En basal tone er definert som baseline delvis innsnevring av glatte muskelceller, selv i fravær av eksterne lokale, hormonelle, og neural stimulering10. Denne Baseline kontraktile natur vagina og cervix gir karakteristisk mekanisk adferd som deretter måles ved trykk myograph systemet. De passive egenskapene er vurdert ved å fjerne intercellulære kalsium som opprettholder den opprinnelige tilstanden av sammentrekning, noe som resulterer i avslapping av glatte muskelceller. I passiv tilstand, kollagen og elastin fibre gir den dominerende bidrag for mekaniske egenskaper av organene.

Den murine modellen brukes mye for å studere patologi i kvinners reproduktive helse. Musen har flere fordeler for å kvantifisere de utviklende relasjonene mellom ECM og mekaniske egenskaper innenfor reproduksjonssystemet11,12,13,14. Disse fordelene inkluderer korte og godt preget estrous sykluser, relativt lav kostnad, enkel håndtering, og en relativt kort svangerskaps tid15. I tillegg er det Genova av laboratoriet mus godt kartlagt og genetisk modifiserte mus er verdifulle verktøy for å teste mekanistisk hypoteser16,17,18.

Kommersielt tilgjengelige trykk myograph systemer brukes i stor utstrekning for å kvantifisere de mekaniske reaksjonene til ulike vev og organer. Noen bemerkelsesverdige strukturer analysert på trykk myographsystemet inkluderer elastisk arterier19,20,21,22, årer og vev konstruert vaskulær hud på23,24, spiserøret25, og den store tarmen26. Trykket myograph teknologien tillater samtidig vurdering av egenskaper i aksial og circumferential retninger samtidig opprettholde den innfødte Cell-ECM interaksjoner og in vivo geometri. Til tross for utstrakt bruk av myograph systemer i bløtvev og organ mekanikk, en protokoll utnytte trykket myograph teknologi hadde ikke tidligere blitt utviklet for vagina og cervix. Tidligere undersøkelser av mekaniske egenskaper i skjeden og cervix ble vurdert uniaxially27,28. Disse organene, men opplever multiaxial lasting i kroppen29,30, og dermed kvantifisere deres biaksiale mekanisk respons er viktig.

Videre antyder nyere arbeid glatte muskelceller kan spille en potensiell rolle i bløtvev patologi5,28,31,32. Dette gir en annen attraksjon for å utnytte trykket myograph teknologi, som det bevarer den innfødte celle-matrise interaksjoner, og dermed tillater avgrensning av bidraget som glatte muskelceller spille i fysiologiske og patofysiologiske Forhold. Heri, foreslår vi en protokoll for å kvantifisere multiaxial mekaniske egenskaper av vagina og cervix under både basal tone og passive forhold.

Protocol

Nulliparous 4-6 måneder kvinnelige C57BL6J mus (29,4 ± 6,8 gram) ved estrus ble brukt for denne studien. Alle prosedyrer ble godkjent av instituttet Animal Care og use Committee ved Tulane University. Etter fødselen acclimated musene i en uke før døds aktiv og ble plassert under standard forhold (12-timers lys/mørke sykluser). 1. mus offer på estrus Bestem estrous syklusen: estrous syklusen ble overvåket av visuell vurdering i henhold til tidligere studier15…

Representative Results

Vellykket analyse av mekaniske egenskaper av de kvinnelige reproduktive organer er betinget av hensiktsmessig organ disseksjon, kanyleringen, og testing. Det er viktig å explant livmor hornene til skjeden uten defekter (figur 1). Avhengig av organ type, vil kanyle størrelse variere (figur 2). Kanyleringen må gjøres slik at orgelet ikke kan bevege seg under eksperimentet, men heller ikke skade veggen av orgelet under prosedyren (Figur 3). Unnlatelse a…

Discussion

Protokollen som tilbys i denne artikkelen presenterer en metode for å bestemme de mekaniske egenskapene til murine vagina og cervix. De mekaniske egenskapene analysert i denne protokollen omfatter både passiv og basal tone forholdene i organene. Passive og basale tone forhold er indusert ved å endre det biokjemiske miljøet som orgelet er neddykket. For denne protokollen inneholder Media som er involvert i basal testing kalsium. Testing av basal tone tilstand tillater isolering av glatt muskel celle mekanisk bidrag in…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet var finansiert av NSF CAREER Award Grant #1751050.

Materials

2F catheter Millar SPR-320 catheter to measure cervical pressure
6-0 Suture Fine Science Tools 18020-60 larger suture ties
CaCl2 (anhydrous) VWR 97062-590 HBSS concentration: 140 mg/ mL
CaCl2-2H20 Fischer chemical BDH9224-1KG
KRB concentration: 3.68 g/L
Dextrose (D-glucose) VWR 101172-434 HBSS concentration: 1000 mg/mL
KRB concentration: 19.8 g/L
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35 curved forceps
Dumont SS Forceps Fine Science Tools 11203-25 straight forceps
Eclipse Nikon E200 microscope used for imaging
Flow meter Danish MyoTechnologies 161FM flow meter within the testing apparatus
Force Transducer – 110P Danish MyoTechnologies 100079 force transducer
ImageJ SciJava ImageJ1 used to measure volume
Instrument Cases Fine Science Tools 20830-00 casing to hold dissection tools
KCl Fisher Chemical 97061-566 HBSS concentration: 400 mg/ mL
KRB concentration: 3.5 g/L
KH2PO4 G-Biosciences 71003-454 HBSS concentration: 60 mg/ mL
MgCl2 VWR 97064-150
KRB concentration: 1.14 g/L
MgCl2-6H2O VWR BDH9244-500G HBSS concentration: 100 mg/ mL
MgSO4-7H20 VWR 97062-134 HBSS concentration: 48 mg/ mL
Mircosoft excel Microsoft 6278402 program used for spreadsheet
Na2HPO4 (dibasic anhydrous) VWR 97061-588 HBSS concentration: 48 mg/mL
KRB concentration: 1.44 g/L
NaCl VWR 97061-274 HBSS concentration: 8000 mg/mL
KRB concentration: 70.1 g/L
NaHCO3 VWR 97062-460 HBSS concentration: 350 mg/ mL
KRB concentration: 21.0 g/L
Pressure myograph systems Danish MyoTechnologies 110P and 120CP Pressure myograph system:
prorgram, cannulation device,
and controller unit
Pressure Transducer Danish MyoTechnologies 100106 pressure transducer
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20 straight forceps
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91500-09 micro-scissors
Tissue dye Bradley Products 1101-3 ink to measure in vivo stretch
Ultrasound transducer FujiFilm Visual Sonics LZ-550 ultrasound transducer used; 256 elements, 40 MHz center frequency
VEVO2100 FujiFilm Visual Sonics VS-20035 ultrasound used for imaging
Wagner Scissors Fine Science Tools 14069-12 larger scissors
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Capone, D., et al. Evaluating Residual Strain Throughout the Murine Female Reproductive System. Journal of Biomechanics. 82, 299-306 (2019).
  2. Danforth, D. The fibrous nature of the human cervix, and its relation to the isthmic segment in gravid and nongravid uteri. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 53 (4), 541-560 (1947).
  3. Hughesdon, P. The fibromuscular structure of the cervix and its changes during pregnancy and labour. Journal of Obstetrics and Gynecology of the British Commonwealth. 59, 763-776 (1952).
  4. Bryman, I., Norstrom, A., Lindblo, B. Influence of neurohypophyseal hormones on human cervical smooth muscle cell contractility in vitro. Obstetrics and Gynecology. 75 (2), 240-243 (1990).
  5. Joy, V., et al. A New Paradigm for the Role of Smooth Muscle Cells in the Human Cervix. Obstetrics. 215 (4), e471-e478 (2016).
  6. Xu, X., Akgul, Y., Mahendroo, M., Jerschow, A. Ex vivo assessment of mouse cervical remodeling through pregnancy via Na (23) MRS. NMR Biomedical. 23 (23), 907-912 (2014).
  7. Leppert, P. Anatomy and Physiology of cervical ripening. Clinical Obstetrics and Gynecology. 43 (43), 433-439 (2000).
  8. Schlembach, D., et al. Cervical ripening and insufficiency: from biochemical and molecular studies to in vivo clinical examination. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 144, S70-S79 (2000).
  9. Stoka, K., et al. Effects of Increased Arterial Stiffiness on Atherosclerotic Plaque Amounts. Journal of Biomechanical Engineering. 140 (5), (2018).
  10. Mohram, D., Heller, L. Ch. 7. Cardiovascular Physiology. , (2006).
  11. Yoshida, K., et al. Quantitative Evaluation of Collagen Crosslinks and Corresponding Tensile Mechanical Properties in Mouse Cervical Tissue during Normal Pregnancy. PLoS One. 9, e112391 (2014).
  12. Mahendroo, M. Cervical remodeling in term and preterm birth: insight from an animal model. Society for Reproduction and Fertility. 143 (4), 429-438 (2012).
  13. Elovitz, M., Miranlini, C. Can medroxyprogesterone acetate alter Toll-like receptor expression in a mouse model of intrauterine inflammation?. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 193 (3), 1149-1155 (2005).
  14. Ripperda, C., et al. Vaginal estrogen: a dual-edged sword in postoperative healing of the vaginal wall. North American Menopause Society. 24 (7), 838-849 (2017).
  15. Nelson, J., Felicio, P., Randall, K., Sims, C., Finch, E. A Longitudinal Study of Estrous Cyclicity in Aging C57/6J Mice: Cycle, Frequency, Length, and Vaginal Cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  16. Ferruzzi, J., Collins, M., Yeh, A., Humphrey, J. Mechanical assessment of elastin integrity in fibrillin-1-deficient carotid arteries: implications for Marfan Syndrome. Cardiovascular Research. 92 (2), 287-295 (2011).
  17. Mariko, B., et al. Fribrillin-1 genetic deficiency leads to pathological ageing of arteries in mice. The Journal of Pathology. 224 (1), 33-44 (2011).
  18. Rahn, D., Ruff, M., Brown, S., Tibbals, H., Word, R. Biomechanical Properties of The Vaginal Wall: Effect of Pregnancy, Elastic Fiber Deficiency, and Pelvic Organ Prolapse. American Urogynecological Society. 198 (5), (2009).
  19. Caulk, A., Nepiyushchikh, Z., Shaw, R., Dixon, B., Gleason, R. Quantification of the passive and active biaxial mechanical behavior and microstructural organization of rat thoracic ducts. Royal Society Interface. 12 (108), 20150280 (2015).
  20. Amin, M., Le, V., Wagenseil, J. Mechanical Testing of Mouse Carotid Arteries: from Newborn to Adult. Journal of Visualized Experiments. (60), e3733 (2012).
  21. Sokolis, D., Sassani, S., Kritharis, E., Tsangaris, S. Differential histomechanical response of carotid artery in relation to species and region: mathematical description accounting for elastin and collagen anisiotropy. Medical and Biological Engineering and Computing. 49 (8), 867-879 (2011).
  22. Kim, J., Baek, S. Circumferential variations of the mechanical behavior of the porcine thoracic aorta during the inflation test. Journal of Biomechanics. 44 (10), 1941-1947 (2011).
  23. Faury, G., et al. Developmental adaptation of the mouse cardiovascular system to elastin haploinsufficency. Journal of Clinical Investigation. 11 (9), 1419-1428 (2003).
  24. Naito, Y., et al. Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue-Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model. Tissue Engineering. 20, 346-355 (2014).
  25. Sommer, G., et al. Multaxial mechanical response and constitutive modeling of esophageal tissues: Impact on esophageal tissue engineering. Acta Biomaterialia. 9 (12), 9379-9391 (2013).
  26. Sokolis, D., Orfanidis, I., Peroulis, M. Biomechanical testing and material characterization for the rat large intestine: regional dependence of material parameters. Physiological Measurement. 32 (12), 1969-1982 (2011).
  27. Martins, P., et al. Prediction of Nonlinear Elastic Behavior of Vaginal Tissue: Experimental Results and Model Formation. Computational Methods of Biomechanics and Biomedical Engineering. 13 (3), 317-337 (2010).
  28. Feola, A., et al. Deterioration in Biomechanical Properties of the Vagina Following Implantation of a High-stiffness Prolapse Mesh. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 120 (2), 224-232 (2012).
  29. Huntington, A., Rizzuto, E., Abramowitch, S., Prete, Z., De Vita, R. Anisotropy of the Passive and Active Rat Vagina Under Biaxial Loading. Annals of Biomedical Engineering. 47, 272-281 (2018).
  30. Tokar, S., Feola, A., Moalli, P., Abramowitch, S. Characterizing the Biaxial Mechanical Properties of Vaginal Maternal Adaptations During Pregnancy. ASME 2010 Summer Bioengineering Conference, Parts A and B. , 689-690 (2010).
  31. Feloa, A., et al. Impact of Pregnancy and Vaginal Delivery on the Passive and Active Mechanics of the Rat Vagina. Annals of Biomedical Engineering. 39 (1), 549-558 (2010).
  32. Baah-Dwomoh, A., Alperin, M., Cook, M., De Vita, R. Mechanical Analysis of the Uterosacral Ligament: Swine vs Human. Annual Biomedical Engineering. 46 (12), 2036-2047 (2018).
  33. Champlin, A. Determining the Stage of the Estrous Cycle in the Mouse by the Appearance. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  34. Byers, S., Wiles, M., Dunn, S., Taft, R. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS One. 7 (4), e35538 (2012).
  35. McLean, A. Performing Vaginal Lavage, Crystal Violet Staining and Vaginal Cytological Evaluation for Mouse Estrous Cycle Staging Identification. Journal of Visualized Experiments. 67, e4389 (2012).
  36. Bugg, G., Riley, M., Johnston, T., Baker, P., Taggart, M. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition. European Journal of Clinical Investigation. 36 (2), 133-140 (2006).
  37. Taggart, M., Wray, S. Hypoxia and smooth muscle function: key regulatory events during metabolic stress. Journal of Physiology. 509, 315-325 (1998).
  38. Yoo, K., et al. The effects of volatile anesthetics on spontaneous contractility of isolated human pregnant uterine muscle: a comparison among sevoflurane, desflurane, isoflurane, and halothane. Anesthesia and Analgesia. 103 (2), 443-447 (2006).
  39. de Souza, L., et al. Effects of redox disturbances on intentional contractile reactivity in rats fed with a hypercaloric diet. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 6364821 (2018).
  40. Jaue, D., Ma, Z., Lee, S. Cardiac muscarinic receptor function in rats with cirrhotic cardiomyopathy. Hepatology. 25, 1361-1365 (1997).
  41. Xu, Q., Shaffer, E. The potential site of impaired gallbladder contractility in an animal mode of cholesterol gallstone disease. Gastroenterology. 110 (1), 251-257 (1996).
  42. Rodriguez, U., et al. Effects of blast induced Neurotrauma on pressurized rodent middle cerebral arteries. Journal of Visualized Experimentals. (146), e58792 (2019).
  43. Rubod, C., Boukerrou, M., Brieu, M., Dubois, P., Cosson, M. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue Part 1: New Experimental Protocol. Journal of Urology. 178, 320-325 (2007).
  44. Robison, K., Conway, C., Desrosiers, L., Knoepp, L., Miller, K. Biaxial Mechanical Assessment of the Murine Vaginal Wall Using Extension-Inflation Testing. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (10), 104504 (2017).
  45. Van loon, P. Length-Force and Volume-Pressure Relationships of Arteries. Biorheology. 14 (4), 181-201 (1977).
  46. Fernandez, M., et al. Investigating the Mechanical Function of the Cervix During Pregnancy using Finite Element Models Derived from High Resolution 3D MRI. Computational Methods Biomechanical and Biomedical Engineering. 19 (4), 404-417 (2015).
  47. House, M., Socrate, S. The Cervix as a Biomechanical Structure. Ultrasound Obstetric Gynecology. 28 (6), 745-749 (2006).
  48. Martins, P., et al. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue in Women with Pelvic Organ Prolapse. Gynecologic and Obstetrics Investigation. 75, 85-92 (2013).
  49. Rada, C., Pierce, S., Grotegut, C., England, S. Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In vivo. Journal of Visualized Experiments. (98), e52541 (2015).
  50. Lumsden, M. A., Baird, D. T. Intra-uterine pressure in dysmenorrhea. Acta Obstectricia at Gynecologica Scandinavica. 64 (2), 183-186 (1985).
  51. Milsom, I., Andersch, B., Sundell, G. The Effect of Flurbiprofen and Naproxen Sodium On Intra-Uterine Pressure and Menstrual Pain in Patients With Primary Dysmennorrhea. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (8), 711-716 (1988).
  52. Park, K., et al. Vasculogenic female sexual dysfunction: the hemodynamic basis for vaginal engorgement insufficiency and clitoral erectile insufficiency. International Journal of Impotence Journal. 9 (1), 27-37 (1997).
  53. Bulletti, C., et al. Uterine Contractility During Menstrual Cycle. Human Reproduction. 15, 81-89 (2000).
  54. Kim, N. N., et al. Effects of Ovariectomy and Steroid Hormones on Vaginal Smooth Muscle Contractility. International Journal of Impotence Research. 16, 43-50 (2004).
  55. Giraldi, A., et al. Morphological and Functional Characterization of a Rat Vaginal Smooth Muscle Sphincter. International Journal of Impotence Research. 14, 271-282 (2002).
  56. Gleason, R., Gray, S. P., Wilson, E., Humphrey, J. A Multiaxial Computer-Controlled Organ Culture and Biomechanical Device for Mouse Carotid Arteries. Journal of Biomechanical Engineering. 126 (6), 787-795 (2005).
  57. Swartz, M., Tscumperlin, D., Kamm, R., Drazen, J. Mechanical Stress is Communicated Between Different Cell Types to Elicit Matrix Remodeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (11), 6180-6185 (2001).
  58. Rachev, A. Remodeling of Arteries in Response to Changes in their Mechanical Environment. Biomechanics of Soft Tissue in Cardiovascular Systems. 441, 221-271 (2003).
  59. Lee, E. J., Holmes, J., Costa, K. Remodeling of Engineered Tissue Anisotropy in Response to Altered Loading Conditions. Annals of Biomedical Engineering. 36 (8), 1322-1334 (2008).
  60. Akintunde, A., et al. Effects of Elastase Digestion on the Murine Vaginal Wall Biaxial Mechanical Response. Journal of Biomechanical Engineering. 141 (2), 021011 (2018).
  61. Griffin, M., Premakumar, Y., Seifalian, A., Butler, P., Szarko, M. Biomechanical Characterization of Human Soft Tissues Using Indentation and Tensile Testing. Journal of Visualized Experiments. (118), e54872 (2016).
  62. Myers, K., Socrate, S., Paskaleva, A., House, M. A Study of the Anisotripy and Tension/Compression Behavior of Human Cervical Tissue. Journal of Biomechanical Engineering. 132 (2), 021003 (2010).
  63. Murtada, S., Ferruzzi, J., Yanagisawa, H., Humphrey, J. Reduced Biaxial Contractility in the Descending Thoracic Aorta of Fibulin-5 Deficent Mice. Journal of Biomechanical Engineering. 138 (5), 051008 (2016).
  64. Berkley, K., McAllister, S., Accius, B., Winnard, K. Endometriosis-induced vaginal hyperalgesia in the rat: effect of estropause, ovariectomy, and estradiol replacement. Pain. 132, s150-s159 (2007).
  65. van der Walt, I., Bø, K., Hanekom, S., Rienhardt, G. Ethnic Differences in pelvic floor muscle strength and endurance in South African women. International Urogynecology Journal. 25 (6), 799-805 (2014).

Tags

Keywords: Biaxial TestingPressure MyographReproductive SystemCervixVaginaSmooth MusclePassive MatrixMechanical PropertiesWomen’s HealthBiomechanics
check_url/60125?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Cite This Article
White, S. E., Conway, C. K., Clark, G. L., Lawrence, D. J., Bayer, C. L., Miller, K. S. Biaxial Basal Tone and Passive Testing of the Murine Reproductive System Using a Pressure Myograph. J. Vis. Exp. (150), e60125, doi:10.3791/60125 (2019).
Download Citation
Reprints and Permissions

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image