Summary

التصور والتحليل من الشرايين القوس البلعوم ية باستخدام كامل جبل الكيمياء المناعية وإعادة الإعمار 3D

Published: March 31, 2020
doi:

Summary

هنا، نصف بروتوكول لتصور وتحليل الشرايين القوس البلعوم3، 4، و 6 من أجنة الفئران باستخدام كامل جبل الفلورالس، تطهير الأنسجة، المجهر الكونكور، وإعادة الإعمار 3D.

Abstract

تشكيل غير لائق أو إعادة عرض الشرايين القوس البلعوم (PAAs) 3, 4, و 6 تسهم في بعض من أشد أشكال أمراض القلب الخلقية. لدراسة تشكيل PAAs ، قمنا بتطوير بروتوكول باستخدام الفلور المناعة كامل التركيب إلى جانب الكحول البنزيل / البنزوات (BABB) تطهير الأنسجة ، والمجهر confocal. وهذا يسمح لتصور الاندوثيوليوم القوس البلعوم في دقة الخلوية غرامة، فضلا عن اتصال 3D من الأوعية الدموية. باستخدام البرمجيات، وضعنا بروتوكولالتحديد عدد الخلايا الانتوليالية (ECs) في PAAs، فضلا عن عدد ECs داخل الضفيرة الوعائية المحيطة PAAs داخل أقواس البلعوم 3 و 4 و 6. عند تطبيقها على الجنين بأكمله ، توفر هذه المنهجية تصورًا شاملًا وتحليلًا كميًا للخلايا النفاسية الجنينية.

Introduction

أثناء تكوين الجنين بالماوس ، تنشأ شرايين القوس البلعومية (PAAs) كأزواج متناظرة ثنائية الأطراف من الشرايين التي تربط القلب بالأورتاي الظهري1. مع تطور الجنين ، يتراجع أول وثاني أزواج PAAs ، في حين أن 3rdو4th و6 TH PAAs تخضع لسلسلة من أحداث إعادة عرض غير متناظرة لتشكيل الشرايين القوس الأبهري2.

وPAAs 3 و 4 و 6 تطوير عن طريق تكوين الأوعية الدموية، وهو تشكيل دي نوفو من الأوعية الدموية3. عيوب في تشكيل أو إعادة عرض هذه الشرايين القوس تؤدي إلى عيوب القلب الخلقية المختلفة, مثل تلك التي ينظر إليها في المرضى الذين يعانون من متلازمة ديجورج4,5. ولذلك، يمكن أن تؤدي آليات الفهم التي تنظم تطور PAAs إلى فهم أفضل لأمراض القلب الخلقية (CHD).

النهج الحالية لتصور وتحليل تطوير PAA تشمل الفلور المناعي ة من أقسام الأنسجة، يلقي الأوعية الدموية، حقن الحبر الهند، عالية الدقة المجهر episcopic، و / أو كامل جبل المناعيالهيستوكيمياء,,,,7. هنا، نحن نصف بروتوكول يجمع بين الفلورالية كامل جبل، المجهر confocal وتقديم صورة 3D من أجل جمع وتحليل وقياس البيانات الحجمية، والاتصال الأوعية الدموية وهوية الخلية. علاوة على ذلك ، نقوم بتفصيل طريقة لتقسيم وقياس أعداد ECs في كل قوس بلعوم كوسيلة لدراسة تشكيل الضفيرة الوعائية القوس البلعومية وإعادة عرضها في PAAs. في حين تم تصميم هذا البروتوكول لتحليل تطوير PAA ، يمكن استخدامه لتحليل شبكات الأوعية الدموية النامية الأخرى.

Protocol

ووافقت اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في جامعة روتجرز على استخدام الحيوانات وإجراءاتها. 1- إعداد الحلول إعداد 1 لتر من الفوسفات المالحة المخزنة مؤقتا مع 0.1٪ تريتون-X-100 (PBST) وتعقيم تصفية. يمكن تخزين هذا الحل في درجة حرارة الغرفة (RT) لمدة عام على الأقل. إع…

Representative Results

ينتج بروتوكول الفلوروريسسين الكامل المعروض هنا نتائج واضحة ونظيفة ، مما يسمح بإعادة بناء البطانة القوسية البلعومية ثلاثية الأبعاد ، كما رأينا في الشكل 1A. من المهم احتضان الأجنة لفترة كافية من الوقت في كل محلول من الأجسام المضادة لضمان الاختراق …

Discussion

وقد وفرت القدرة على تصور البطانة في أجنة الماوس في 3D رؤى جديدة في تطورها3. نقدم هنا بروتوكولًا يسمح بالتصوير ثلاثي الأبعاد عالي الدقة للأجنة ، وتصور الاتصال بالأوعية الدموية ، والتحليلات الكمية لتشكيل PAA. يمكن استخدام هذا البروتوكول لمعرفة كيف تؤثر التعديلات الوراثية أو الإه?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر بريانا ألكسندر وتساولان أودونيل ومايكل واركالا على القراءة الدقيقة لهذه المخطوطة وتحريرها. وقد دعم هذا العمل بتمويل من المعهد الوطني للقلب والرئة والدم في المعهد الوطني للصحة العامة R01 HL103920، R01 HL134935، R21 OD025323-01 إلى SA؛ ويدعم AJR من قبل HL103920-08S1 NHLBI والمعهد الوطني لالتهاب المفاصل والعضلات والعظام والأمراض الجلدية منحة التدريب T32052283-11.

Materials

10x PBS MP Biomedicals PBS10X02
20x water immersion objective Nikon MRD77200
Agarose Bio-Rad Laboratories 1613101
Alexa Fluor 488 anti-goat Invitrogen A-11055
Alexa Fluor 555 anti-mouse Invitrogen A-31570
Analysis Software Imaris 9.2.0
Benzyl Alcohol Sigma-Aldrich 305197
Benzyl Benzoate Sigma-Aldrich 8.18701.0100
Cover Slips VWR 16004-312
DAPI (5 mg/mL stock) Fisher Scientific D3571
Eppendorf Tubes (2.0 mL) Fisher Scientific 05-408-138
Ethanol VWR 89370-084
Falcon tubes (50 mL) Corning 352098
Fast wells Grace Bio Labs 664113
Forceps Roboz RS-5015
Goat anti-VEGFR2 R&D Systems, Inc. AF644
Methanol VWR BDH1135-4LP
Microscope Nikon A1HD25
Mouse anti-ERG Abcam ab214341
Normal Donkey Serum Sigma-Aldrich D9663
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710
Pasteur pipets Fisher Scientific 13-678-20D
Petri dishes (35 mm) Genesee Scientific 32-103
Petri dishes (60 mm) Genesee Scientific 32-105
Plastic Molds VWR 18000-128
Scapels Exelint International Co. 29552
Triton-X-100 Fisher Scientific BP 151-500

References

  1. Hiruma, T., Nakajima, Y., Nakamura, H. Development of pharyngeal arch arteries in early mouse embryo. Journal of Anatomy. 201 (1), 15-29 (2002).
  2. Hutson, M. R., Kirby, M. L. Model systems for the study of heart development and disease Cardiac neural crest and conotruncal malformations. Seminars in Cell & Developmental Biology. 18 (1), 101-110 (2007).
  3. Wang, X., et al. Endothelium in the pharyngeal arches 3, 4 and 6 is derived from the second heart field. Developmental Biology. 421 (2), 108-117 (2017).
  4. Jerome, L. A., Papaioannou, V. E. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nature Genetics. 27 (3), 286-291 (2001).
  5. Lindsay, E. A., et al. Tbx1 haploinsufficieny in the DiGeorge syndrome region causes aortic arch defects in mice. Nature. 410 (6824), 97-101 (2001).
  6. Weninger, W., et al. Visualising the Cardiovascular System of Embryos of Biomedical Model Organisms with High Resolution Episcopic Microscopy (HREM). Journal of Cardiovascular Development and Disease. 5 (4), 58 (2018).
  7. Phillips, H. M., et al. Pax9 is required for cardiovascular development and interacts with Tbx1 in the pharyngeal endoderm to control 4th pharyngeal arch artery morphogenesis. Development. 146 (18), (2019).
  8. Vlaeminck-Guillem, V., et al. The Ets family member Erg gene is expressed in mesodermal tissues and neural crests at fundamental steps during mouse embryogenesis. Mechanisms of Development. 91 (1-2), 331-335 (2000).
  9. Ertürk, A., et al. Three-dimensional imaging of the unsectioned adult spinal cord to assess axon regeneration and glial responses after injury. Nature Medicine. 18 (1), 166-217 (2012).
  10. Azaripour, A., et al. A survey of clearing techniques for 3D imaging of tissues with special reference to connective tissue. Progress in Histochemistry and Cytochemistry. 51 (2), 9-23 (2016).
  11. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying Tissue Clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  12. Becker, K., Jährling, N., Saghafi, S., Weiler, R., Dodt, H. U. Chemical Clearing and Dehydration of GFP Expressing Mouse Brains. PLoS One. 7 (3), e33916 (2012).
  13. Ertürk, A., et al. Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO. Nature Protocols. 7 (11), 1983-1995 (2012).
  14. Kuwajima, T., et al. ClearT: a detergent- and solvent-free clearing method for neuronal and non-neuronal tissue. Development. 140 (6), 1364-1368 (2013).

Play Video

Cite This Article
Ramirez, A., Astrof, S. Visualization and Analysis of Pharyngeal Arch Arteries using Whole-mount Immunohistochemistry and 3D Reconstruction. J. Vis. Exp. (157), e60797, doi:10.3791/60797 (2020).

View Video