Summary

En Femtoliter dråbe array for massivt parallel proteinsyntese fra single DNA molekyler

Published: June 20, 2020
doi:

Summary

Det overordnede mål med protokollen er at forberede over en million bestilte, ensartet, stabil og biokompatibel femtoliter dråber på en 1 cm2 planar substrat, der kan bruges til celle-fri proteinsyntese.

Abstract

Fremskridt inden for geografisk opløsning og detektionsfølsomheden af videnskabelige instrumenter gør det muligt at anvende små reaktorer til biologisk og kemisk forskning. For at imødekomme efterspørgslen efter højtydende mikroreaktorer udviklede vi en femtoliterdråbesystem (FemDA) enhed og eksemplificerede dens anvendelse i massivt parallelle cellefri proteinsyntese (CFPS) reaktioner. Over en million ensartede dråber blev let genereret inden for en finger-størrelse område ved hjælp af en to-trins olie-forsegling protokol. Hver dråbe var forankret i en femtoliter mikrokammer bestående af en hydrofil bund og en hydrofob sidevæg. Den hybride hydrofile-i-hydrofobe struktur og de dedikerede tætningsolier og overfladeaktive stoffer er afgørende for stabilt at bevare femtoliter vandig opløsning i femtoliter rummet uden fordampning tab. Femtoliterkonfigurationen og den enkle struktur af FemDA-enheden tillod minimalt reagensforbrug. Den ensartede dimension af dråbereaktorer gjort store kvantitative og tid-kursus målinger overbevisende og pålidelig. FemDA-teknologien korreleret proteinudbyttet af CFPS reaktion med antallet af DNA-molekyler i hver dråbe. Vi strømlinede procedurerne om mikrofabrikation af enheden, dannelsen af femtoliterdråberne og erhvervelsen og analysen af de mikroskopiske billeddata. Den detaljerede protokol med de optimerede lave driftsomkostninger gør FemDA-teknologien tilgængelig for alle, der har standard renrumsfaciliteter og et konventionelt fluorescensmikroskop i deres eget sted.

Introduction

Forskere bruger reaktorer til at udføre bio/kemiske reaktioner. Der er gjort en betydelig indsats for at reducere reaktorens størrelse og øge forsøgskapaciteten for at sænke reagensforbruget og samtidig forbedre arbejdseffektiviteten. Begge aspekter har til formål at befri forskere fra en tung arbejdsbyrde, mindske omkostningerne og fremskynde forskning og udvikling. Vi har en klar historisk køreplan for udviklingen af reaktorteknologierne ud fra reaktionsmængder og gennemløb: enkeltbæger/kolbe/reagensglas, milliliterrør, mikroliterrør, mikroliterstrimler 8-rørstriber, mikroliter 96/384/1536-brøndplade og mikrofluidiske nanoliter/picoliter/femtoliterreaktorer1,,2,,3,,4,5,6,7. Svarende til nedskæringer funktionen størrelse transistorer på integrerede kredsløb chips i halvlederindustrien i de seneste årtier, er bio / kemiske mikroreaktorer går gennem volumenreduktion og systemintegration. Sådanne små værktøjer har haft en dybtgående indvirkning på celle-baseret eller celle-fri syntetisk biologi, biofremstilling, og høj-throughput prototyping og screening8,9,10,11,12. Dette dokument beskriver vores seneste indsats for at udvikle en unik dråbearray og demonstrerer dens anvendelse i CFPS13, en grundlæggende teknologi for syntetiske biologi- og molekylære screeningssamfund14. Især giver vi bevidst en optimeret og billig protokol for at gøre FemDA-enheden tilgængelig for alle. Den billige og let at håndtere protokol for miniaturiseret enhed ville bidrage til uddannelsesmæssige formål universiteter og bidrage til at sprede teknologien.

FemDA forbereder femtoliterdråber ved en ultrahøj tæthed på 106 pr. 1 cm2 på et plant glas substrat. Vi belagt en hydrofob polymer, CYTOP15,på glasset substrat og selektivt ætset (fjernet) CYTOP på foruddefinerede positioner til at generere en mikrokammer array på substratet. Således er den resulterende mikrokammer består af en hydrofob sidevæg (CYTOP) og en hydrofil bund (glas). Når sekventielt strømmende vand og olie over den mønstrede overflade, kan vandet blive fanget og forseglet i mikrokammer. Den hydrofile-i-hydrofobiske struktur er afgørende for at afvise vand uden for mikrokammeret, isolere individuelle mikroreaktorer og bevare en lille vandig opløsning inde i femtoliterrummet. Den unikke egenskab blev anvendt med succes til fremstilling af vand-i-olie dråber og lipid tolag mikrokommenter16,17. Sammenlignet med prototypenenhed 16,vi først optimeret mikrofabrikation proces til at realisere en fuldstændig fjernelse af CYTOP polymer samt en fuld eksponering af glasbunden. CYTOP er en speciel fluorpolymer med ekstremt lav overfladespænding (19 mN/m) lavere end for konventionelle mikroreaktormaterialer som glas, plast og silikone. Dens gode optiske, elektriske og kemiske ydeevne er allerede blevet udnyttet i overfladebehandling af mikrofluidic enheder18,19,,20,,21,,22,23,24. I FemDA-systemet skal oliens overfladespænding være lavere end den faste overflade25for at opnå god befugtning af olien på CYTOP-overfladen. Ellers er den flydende olie i kontakt med den faste overflade tendens til at blive sfærisk snarere end at sprede sig over overfladen. Desuden fandt vi, at nogle populære perfluorcarbonolier (f.eks. 3M FC-40)16 og hydrofluoretherolier (f.eks. 3M Novec-serien) kan opløse CYTOP som følge af CYTOP’s amorfe morfologi, som er fatal for kvantitativ måling og vil være tvivlsom med hensyn til krydskontaminering blandt dråber. Heldigvis identificerede vi en biokompatibel og miljøvenlig olie, der udviser lavere (< 19 mN/m) overfladespænding13. Vi fandt også et nyt overfladeaktivt stof, der kan opløses i den valgte olie og funktion i en lav koncentration (0,1%, mindst 10 gange lavere end tidligere rapporteret populære dem26,,27)13. Den resulterende vand / olie interface kan stabiliseres af det overfladeaktive stof. På grund af oliens høje fordampningshastighed, efter skylningen med olien, anvendte vi en anden biokompatibel og miljøvenlig olie til at erstatte den første til at forsegle mikrokammerene. Vi kalder den første olie (ASAHIKLIN AE-3000 med 0,1 wt % SURFLON S-386) “flush olie” og den anden olie (Fomblin Y25) den “forsegling olie,” hhv.

Den to-trins olie-forsegling strategi kan realisere en robust dannelse af femtoliter dråbe array inden for få minutter og uden sofistikeret instrumentering. På grund af fordampningsproblemet er det blevet anset for udfordrende at generere mikroreaktorer, der er mindre end picolitervolumener28. FemDA tog fat på dette problem ved systematisk at optimere de materialer og processer, der anvendes til fremstilling af mikroreaktorer/dråber. Flere bemærkelsesværdige træk ved de resulterende dråber omfatter høj ensartethed (eller monodispersity), stabilitet og biokompatibilitet på femtoliter skalaen. Variationskoefficienten (CV) for dråbevolumenet er kun 3% (uden vignettering korrektion for mikroskopiske billeder), det mindste CV blandt dråbeplatforme i verden, hvilket sikrer en meget parallel og kvantitativ måling. Femtoliterdråben er stabil i mindst 24 timer uden krydskontaminering blandt dråber ved stuetemperatur, hvilket er værdifuldt for en pålidelig tidsmåling. Med hensyn til biokompatibilitet lykkedes det os at syntetisere forskellige proteiner fra en enkelt kopi skabelon DNA i femtoliter dråbe, som tidligere var blevet anset for vanskeligt ellerineffektivt 29,30. Det ville være værd at belyse, hvorfor nogle proteiner, der kan syntetiseres i FemDA ikke kan syntetiseres i andre dråbesystemer. FemDA var ikke blot en teknisk fremgang, men indså også en hidtil uset kvantitativ måling, der kan korrelere proteinudbyttet (som afspejlet af dråbens fluorescensintensitet) til antallet af skabelon-DNA-molekyler i hver dråbe. Som følge heraf viste histogrammet for fluorescensintensiteten af dråber fra FemDA-baserede CFPS en diskret fordeling, der kan fint monteres ved en sum gaussisk fordelinger af lige top-til-peak intervaller. Desuden var sandsynligheden for forekomst af dråber, der indeholder forskellige antal DNA-molekyler, en perfekt pasform til en Poisson-fordeling31. Således kan de forskellige proteinudbytte i hver dråbe normaliseres baseret på den diskrete fordeling. Denne kritiske funktion giver os mulighed for at adskille enzymatiske aktivitet oplysninger fra den tilsyneladende intensitet, der ikke har været tilgængelig med andre mikroreaktor platforme endnu. Eksisterende mikrofluidiske celle- og dråbesorteringssystemer er dygtige til fuldautomatisk sortering og gode til at koncentrere prøverne , men kan nogle gange kun udsende et relativt bredt eller langthalet histogram i det analytiske aspekt32,33. Vores meget kvantitative og biokompatible FemDA-system sætter et nyt benchmark og en høj analytisk standard inden for mikroreaktorudvikling.

De olier og overfladeaktive stoffer, der kan anvendes til fremstilling af dråber, er stadig meget begrænsede34. Kombinationen af ASAHIKLIN AE-3000 og SURFLON S-386 etableret i FemDA er et nyt medlem af det voksende arsenal af den fysiokemiske grænseflade mellem den vandige fase og oliefase13. Den nye grænseflade i FemDA er fysisk stabil, kemisk inert, og biologisk kompatibel med den komplekse transskription, oversættelse, og post-translationelle modifikation maskiner til mange slags proteiner13. Det ville være temmelig attraktivt at finde et protein, der ikke kan syntetiseres i dråbeindstillingerne i stedet. Desuden er omkostningsbesparelserne for reagenser mere tydelig i femtoliterdråbesystemet end i nanolit- og picoliterreaktorsystemer35,36. Især vil der ofte være en stor død volumen, som hovedsagelig er forårsaget af slanger eller eksterne forsyninger, i mikrofluidic dråbe generation systemer, men ikke i vores FemDA. Array formatet er også begunstiget af gentagne og detaljerede mikroskopiske karakterisering (svarende til såkaldte høj-indhold analyse) for hver enkeltreaktor 37, snarere end kun et enkelt øjebliksbillede for en hurtig bevægelse objekt. Femtoliterskalaen gjorde det muligt at integrere over en million reaktorer på et område i fingerstørrelse, mens det samme antal nanolitreaktorer (hvis det findes) kræver et areal på kvadratmeter, hvilket utvivlsomt ville være upraktisk at fremstille eller anvende et sådant system.

Protocol

1. Mikrofabrikation af femtoliter mikrokammerarrayets substrat BEMÆRK: Udfør følgende mikrofabrikationseksperiment i et renrum. Brug handsker og et renrumsdragt, før du går ind i renrummet. Rengøring dække glas substrat Indstil dækslet glas på et dæksel glas farvning rack. Syr dækglasset i 8 M natriumhydroxid (NaOH) i 15 minutter ved stuetemperatur (RT).FORSIGTIG: NaOH i høje koncentrationer er meget farligt for hud og øjne. Håndter den forsigtigt uden stæn…

Representative Results

Mikrofabrikationsprocessen består af substratrengøring, overfladefunktionalisering, CYTOP-belægning, fotolitografi, tøræt ætsning, fotoresistens stripning og slutrengøring. Det er vigtigt, at den fremlagte protokol tillod fuldstændig fjernelse af den hydrofobe CYTOP polymer inde i mikrokammeret Figur 3A),der producerer en meget parallel hydrofil-i-hydrofob struktur på et standarddækselglas substrat. Ved hjælp af olieforseglingsprotokollen blev den ensartede dimension af de resulte…

Discussion

Den meget kvantitative måling baseret på de meget ensartede, stabile og biokompatible dråber i FemDA gjorde det muligt for diskret distribution, det unikke ved vores undersøgelse adskiller sig fra andre. Vi optimerede og detaljeret mikrofabrikations- og dråbedannelsesprocesserne i dette dokument. Der er flere kritiske trin i den etablerede protokol.

For det første bestemmer den ensartede belægning af meget tyktflydende CYTOP polymer på det rektangulære tynde glassubstrat i høj grad k…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af JSPS KAKENHI tilskud nummer JP18K14260 og budgettet for Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology. Vi takker Shigeru Deguchi (JAMSTEC) og Tetsuro Ikuta (JAMSTEC) for at levere karakteriseringsfaciliteterne. Vi takker Ken Takai (JAMSTEC) for kommerciel softwaresupport. Den mikrofabrikation blev gennemført på Takeda Sentanchi Supercleanroom, University of Tokyo, støttet af “Nanotechnology Platform Program” af Ministeriet for Uddannelse, Kultur, Sport, Videnskab og Teknologi (MEXT), Japan, Grant Number JPMXP09F19UT0087.

Materials

(3-aminopropyl)triethoxysilane Sigma-Aldrich 440140
1 mL syringe Terumo SS-01T
2-propanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
3D laser scanning confocal microscope Lasertec OPTELICS HYBRID Other similar microscopes (e.g., Keyence VK-X1000, Olympus LEXT OLS5000) are also applicable.
50 mL syringe Terumo SS-50LZ
6,8-difluoro-4-methylumbelliferyl phosphate Thermo Fisher Scientific D6567 Prepare a 5 mM stock solution in dimethyl sulfoxide
Acetone Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.8%.
Air blower Hozan Z-263
Aluminum block BIO-BIK AB-24M-02
Aluminum microtube stand BIO-BIK AB-136C
ASAHIKLIN AE-3000 AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
BEMCOT PS-2 wiper Ozu 028208
Biopsy punch with plunger Kai BPP-10F
Cover glass Matsunami Glass No. 1 (24 mm × 32 mm, 0.13~0.17 mm thickness) Size-customized.
Cover glass staining rack Nakayama 803-131-11
CRECIA TechnoWipe clean wiper Nippon Paper Crecia C100-M
Cutting mat GE Healthcare WB100020
CYTOP AGC CTL-816AP
Deaeration mixer Thinky AR-100
Desktop cutter Roland STIKA SV-8
Developer AZ Electronic Materials AZ 300 MIF AZ Electronic Materials was now acquired by Merck.
Other alkaline developers may be also applicable but should require optimization of development conditions (time, temperature, etc.)
Double-coated adhesive Kapton film tape Teraoka Seisakusho 7602 #25
Ethanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.5%.
Fiji Version: ImageJ 1.51n
Flat-cable cutter Tokyo-IDEAL MT-0100
Fomblin oil Solvay Y25, or Y25/6 Free test sample may be available upon inquiry to Solvay. Fomblin Y25/6 is an alternative if Y25 is not readily available.
Hot plate AS ONE TH-900
Injection needle Terumo NN-2270C 22G × 70 mm
Inverted fluorescence microscope Nikon Eclipse Ti-E Epifluorescence specification, CCD or sCMOS camera, motorized stage, autofocus system, and high NA objective lens are required.
KaleidaGraph Synergy Version: 4.5
Mask aligner SUSS MA-6 Other mask aligners are also applicable as long as the vacuum contact mode is avaliable.
MICROMAN pipette GILSON E M250E Capillary piston tip: CP250
Microsoft Excel Microsoft Version: 16.16.15
Mini vacuum chamber AS ONE MVP-100MV
Nuclease-free water NIPPON GENE 316-90101
Parafilm Amcor PM-996
PCR tube NIPPON Genetics FG-021D/SP
Petri dish AS ONE GD90-15 Diameter 90 mm, height 15 mm.
Photoresist AZ Electronic Materials AZ P4903 AZ Electronic Materials was now acquired by Merck. AZ P4620 is an alternative.
Plate reader BioTek POWERSCAN HT
Polyethelene gloves AS ONE 6-896-02 Trade name: Saniment.
PURExpress in vitro protein synthesis kit New England Biolabs E6800S or E6800L For cell-free protein synthesis reaction.
Reactive-ion etching system Samco RIE-10NR Other RIE systems are also applicable but should require optimization of RIE conditions (gas flow rate, chamber pressure, RF power, etching time, etc.)
RNase inhibitor New England Biolabs M0314S
Scotch tape 3M 810-1-18D
Sodium hydroxide solution FUJIFILM Wako Pure Chemical 194-09575 8 M concentration; danger.
Spin coater Oshigane SC-308
SURFLON S-386 surfactant AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
SYLGARD 184 silicone elastomer Dow Sylgard184 Chemical composition: polydimethylsiloxane. The default mixing ratio is base : curing agent = 10 : 1 (m/m).
Tweezers Ideal-tek 2WF.SA.1
2A
Ultrasonic cleaner AS ONE ASU-2M
Vacuum chuck Oshigane (Customized) Material: delrin; rectangular sample stage with multiple holes (48 holes, each with 1 mm diameter); the size is customzied to fit the size of the cover glass (24 mm × 32 mm).

References

  1. Chiu, D. T., Lorenz, R. M., Jeffries, G. D. M. Droplets for ultrasmall-volume analysis. Analytical Chemistry. 81 (13), 5111-5118 (2009).
  2. Squires, T. M., Quake, S. R. Microfluidics: fluid physics at the nanoliter scale. Reviews of Modern Physics. 77 (3), 977-1026 (2005).
  3. Guo, M. T., Rotem, A., Heyman, J. A., Weitz, D. A. Droplet microfluidics for high-throughput biological assays. Lab on a Chip. 12 (12), 2146-2155 (2012).
  4. Zhu, P. A., Wang, L. Q. Passive and active droplet generation with microfluidics: a review. Lab on a Chip. 17 (1), 34-75 (2017).
  5. Griffiths, A. D., Tawfik, D. S. Miniaturising the laboratory in emulsion droplets. Trends in Biotechnology. 24 (9), 395-402 (2006).
  6. Tran, T. M., Lan, F., Thompson, C. S., Abate, A. R. From tubes to drops: droplet-based microfluidics for ultrahigh-throughput biology. Journal of Physics D: Applied Physics. 46 (11), 114004 (2013).
  7. Zhang, Y., Jiang, X., Fan, C. Microfluidic tools for DNA analysis. DNA Nanotechnology. , 113-153 (2013).
  8. Dubuc, E., et al. Cell-free microcompartmentalised transcription-translation for the prototyping of synthetic communication networks. Current Opinion in Biotechnology. 58, 72-80 (2019).
  9. Damiati, S., Mhanna, R., Kodzius, R., Ehmoser, E. K. Cell-free approaches in synthetic biology utilizing microfluidics. Genes. 9 (3), (2018).
  10. Lee, K. H., Kim, D. M. Applications of cell-free protein synthesis in synthetic biology: Interfacing bio-machinery with synthetic environments. Biotechnology Journal. 8 (11), 1292-1300 (2013).
  11. Supramaniam, P., Ces, O., Salehi-Reyhani, A. Microfluidics for artificial life: techniques for bottom-up synthetic biology. Micromachines. 10 (5), (2019).
  12. Bowman, E. K., Alper, H. S. Microdroplet-assisted screening of biomolecule production for metabolic engineering applications. Trends in Biotechnology. , (2019).
  13. Zhang, Y., et al. Accurate high-throughput screening based on digital protein synthesis in a massively parallel femtoliter droplet array. Science Advances. 5 (8), 8185 (2019).
  14. Silverman, A. D., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free gene expression: an expanded repertoire of applications. Nature Reviews Genetics. , (2019).
  15. Sakane, Y., Suzuki, Y., Kasagi, N. The development of a high-performance perfluorinated polymer electret and its application to micro power generation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (10), 104011 (2008).
  16. Sakakihara, S., Araki, S., Iino, R., Noji, H. A single-molecule enzymatic assay in a directly accessible femtoliter droplet array. Lab on a Chip. 10 (24), 3355-3362 (2010).
  17. Watanabe, R., et al. Arrayed lipid bilayer chambers allow single-molecule analysis of membrane transporter activity. Nature Communications. 5, 4519 (2014).
  18. Chiu, C., Lisicka-Skrzek, E., Tait, R. N., Berini, P. Fabrication of surface plasmon waveguides and devices in Cytop with integrated microfluidic channels. Journal of Vacuum Science & Technology B. 28 (4), 729-735 (2010).
  19. Krupin, O., Asiri, H., Wang, C., Tait, R. N., Berini, P. Biosensing using straight long-range surface plasmon waveguides. Optics Express. 21 (1), 698-709 (2013).
  20. Hanada, Y., Ogawa, T., Koike, K., Sugioka, K. Making the invisible visible: a microfluidic chip using a low refractive index polymer. Lab on a Chip. 16 (13), 2481-2486 (2016).
  21. Berry, S., Kedzierski, J., Abedian, B. Low voltage electrowetting using thin fluoroploymer films. Journal of Colloid and Interface Science. 303 (2), 517-524 (2006).
  22. Lin, Y. Y., et al. Low voltage electrowetting-on-dielectric platform using multi-layer insulators. Sensors and Actuators B-Chemical. 150 (1), 465-470 (2010).
  23. Kimura, H., Yamamoto, T., Sakai, H., Sakai, Y., Fujii, T. An integrated microfluidic system for long-term perfusion culture and on-line monitoring of intestinal tissue models. Lab on a Chip. 8 (5), 741-746 (2008).
  24. Yang, T. J., Choo, J., Stavrakis, S., de Mello, A. Fluoropolymer-coated PDMS microfluidic devices for application in organic synthesis. Chemistry-a European Journal. 24 (46), 12078-12083 (2018).
  25. de Gennes, P. G. Wetting: statics and dynamics. Reviews of Modern Physics. 57 (3), 827-863 (1985).
  26. Holtze, C., et al. Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions. Lab on a Chip. 8 (10), 1632-1639 (2008).
  27. Wagner, O., et al. Biocompatible fluorinated polyglycerols for droplet microfluidics as an alternative to PEG-based copolymer surfactants. Lab on a Chip. 16 (1), 65-69 (2016).
  28. Mashaghi, S., Abbaspourrad, A., Weitz, D. A., van Oijen, A. M. Droplet microfluidics: a tool for biology, chemistry and nanotechnology. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 82, 118-125 (2016).
  29. Mazutis, L., et al. Droplet-based microfluidic systems for high-throughput single DNA molecule isothermal amplification and analysis. Analytical Chemistry. 81 (12), 4813-4821 (2009).
  30. Galinis, R., et al. DNA nanoparticles for improved protein synthesis in vitro. Angewandte Chemie-International Edition. 55 (9), 3120-3123 (2016).
  31. Zhang, Y., Noji, H. Digital bioassays: theory, applications, and perspectives. Analytical Chemistry. 89 (1), 92-101 (2017).
  32. Mazutis, L., et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols. 8 (5), 870-891 (2013).
  33. Courtois, F., et al. An integrated device for monitoring time-dependent in vitro expression from single genes in picolitre droplets. ChemBioChem. 9 (3), 439-446 (2008).
  34. Baret, J. C. Surfactants in droplet-based microfluidics. Lab on a Chip. 12 (3), 422-433 (2012).
  35. Agresti, J. J., et al. Ultrahigh-throughput screening in drop-based microfluidics for directed evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (9), 4004-4009 (2010).
  36. Fallah-Araghi, A., Baret, J. C., Ryckelynck, M., Griffiths, A. D. A completely in vitro ultrahigh-throughput droplet-based microfluidic screening system for protein engineering and directed evolution. Lab on a Chip. 12 (5), 882-891 (2012).
  37. Duncombe, T. A., Dittrich, P. S. Droplet barcoding: tracking mobile micro-reactors for high-throughput biology. Current Opinion in Biotechnology. 60, 205-212 (2019).
  38. Qin, D., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography for micro- and nanoscale patterning. Nature Protocols. 5 (3), 491-502 (2010).
  39. Mukhopadhyay, R. When PDMS isn’t the best. Analytical Chemistry. 79 (9), 3248-3253 (2007).
  40. Shaner, N. C., et al. A bright monomeric green fluorescent protein derived from Branchiostoma lanceolatum. Nature Methods. 10 (5), 407-409 (2013).
  41. Bradshaw, R. A., et al. Amino acid sequence of Escherichia coli alkaline phosphatase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 78 (6), 3473-3477 (1981).
  42. Shimizu, Y., et al. Cell-free translation reconstituted with purified components. Nature Biotechnology. 19 (8), 751-755 (2001).
  43. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  44. Mantilla, C. B., Prakash, Y. S., Sieck, G. C., Conn, P. M. Volume measurements in confocal microscopy. Techniques in Confocal Microscopy. , 143-162 (2010).
  45. Noji, H. Single-molecule counting of biomolecules with femtoliter dropret chamber array. The 17th International Conference on Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems (TRANSDUCERS & EUROSENSORS XXVII. , 630-632 (2013).
  46. Zhang, Y., et al. Matrix-localization for fast analysis of arrayed microfluidic immunoassays. Analytical Methods. 4 (10), 3466-3470 (2012).
  47. Zhang, Y., et al. Two dimensional barcode-inspired automatic analysis for arrayed microfluidic immunoassays. Biomicrofluidics. 7 (3), 034110 (2013).
  48. Gonzalez, R. C., Woods, R. E. . Digital image processing. , (2018).
  49. Cohen, L., Walt, D. R. Single-molecule arrays for protein and nucleic acid analysis. Annual Review of Analytical Chemistry. 10 (1), 345-363 (2017).
check_url/60945?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, Y., Kurosawa, K., Nishiura, D., Tei, M., Tsudome, M. A Femtoliter Droplet Array for Massively Parallel Protein Synthesis from Single DNA Molecules. J. Vis. Exp. (160), e60945, doi:10.3791/60945 (2020).

View Video