Summary

Beeldvorming en analyse van olierode O-gekleurde hele aortalaesies in een aneurysma hyperlipidemie muismodel

Published: May 02, 2022
doi:

Summary

Dit protocol biedt een stapsgewijze procedure om atherosclerotische belasting bij muizen te analyseren. Onderzoekers kunnen dit protocol gebruiken om de overvloed, locatie en grootte van atherosclerotische laesies bij verschillende dieren te vergelijken.

Abstract

Apolipoproteïne E (Apoe) – of low density lipoprotein receptor (Ldlr) – deficiënte hyperlipidemische muizen zijn de twee meest gebruikte modellen voor atherosclerose onderzoek. Ze worden gebruikt om de impact van verschillende genetische factoren en verschillende celtypen op de vorming van atherosclerotische laesies te bestuderen en om de ontwikkeling van nieuwe therapieën te testen. Isolatie, excisie van de hele aorta en kwantificering van olierode O-gekleurde atherosclerotische laesies zijn basale morfometrische methoden die worden gebruikt om atherosclerotische belasting te evalueren. Het doel van dit protocol is om een geoptimaliseerde, stapsgewijze chirurgische methode te beschrijven om atherosclerotische laesies in muisabortas te ontleden, perfuseren-fixeren, isoleren, kleuren, in beeld te brengen en te analyseren met aorta’s van muizen met Oil Red O. Omdat atherosclerotische laesies zich overal in de hele aortaboom kunnen vormen, heeft deze hele aorta Oil Red O-kleuringsmethode het voordeel dat lipide-beladen plaques in de hele aorta en alle takken in een enkele muis worden geëvalueerd. Naast Oil Red O-kleuring kunnen verse geïsoleerde hele aorta’s worden gebruikt voor verschillende in vitro en in vivo experimenten en celisolaties.

Introduction

Coronaire hartziekte, een belangrijke doodsoorzaak in de VS, wordt meestal veroorzaakt door atherosclerose, een proces dat leidt tot de opbouw van plaque in arteriële wanden1. Hyperlipidemie-gevoelige Apoe- en Ldlr-deficiënte muizen staan centraal in onderzoek naar atherosclerose en de complicaties ervan en de ontwikkeling van therapieën2,3,4,5. Kwantificering van atherosclerotische laesies van een en face aorta is een belangrijke eindpuntanalyse voor het evalueren van de impact van genetische manipulatie in verschillende celtypen. Het helpt ook om nieuwe therapieën te bestuderen die zijn ontworpen om de initiatie, progressie en regressie van atherosclerotische ziekten te beïnvloeden. Atherosclerotische laesies kunnen zich overal in de aorta en zijn takken vormen (d.w.z. brachiocephalische, carotis- en subclaviaslagaders in de borst, evenals renale, gemeenschappelijke iliacale en femorale slagaders onder het diafragma)6. Een uitgebreide evaluatie van atheroscleroselast en geschikte therapie vereist een beoordeling van de ziektelast op verschillende locaties, een uitdaging die vaak over het hoofd wordt gezien.

Dit protocol beschrijft hoe een uitgebreide analyse van atherosclerotische laesies kan worden uitgevoerd, te beginnen met een ongeopende hele aorta en overgaand tot en face-voorbereiding, in een enkele muis. Ongeopende hele aorta Oil Red O-kleuring maakt een snelle, kwalitatieve beoordeling van met lipiden beladen plaques in de gehele aorta en zijn takken mogelijk, terwijl en face-voorbereiding een kwantitatieve beoordeling biedt van de verdeling van atherosclerotische laesies in de aorta van de muis.

De techniek maakt gebruik van 8 weken oude muizen met een gladde spiercel-specifieke TGFβR2-deletie op de Apoe-/- hyperlipidemische achtergrond (MYH11-CreERT2; Tgfbr2f/f;mT/mGf/f; Apoe-/-; hierna TGFβR2iSMC-Apoe-muizen genoemd) en nestgenoot Apoe-/- controles (MYH11-CreERT2;mT/mGf/f; Apoe-/-; hierna Apoe-/- muizen genoemd). De dieren worden 16 weken lang gehouden op een cholesterolrijk vetrijk dieet (HCHFD) als studiemateriaal7. Aan het einde van het onderzoek worden de ongeopende hele aorta’s gekleurd en afgebeeld (inclusief alle belangrijke takken) met Oil Red O voor kwalitatieve beoordeling van met lipiden beladen plaques. De aorta’s worden opengesneden via en face preparation en alle atherosclerotische laesies worden in beeld gebracht en gekwantificeerd. Dit protocol kan worden gebruikt om de ontwikkeling van atherosclerotische laesies in Apoe-/- of Ldlr-/- hyperlipidemie muizenmodellen te bestuderen en uitgebreid naar algemene aorta-gerelateerde vasculaire biologietoepassingen.

Protocol

mT/mG (voorraad nr. 007676) en Apoe-/- (voorraad nr. 002052) muizen werden gekocht van het Jackson Laboratory. Myh11-CreERT2 muizen waren een geschenk van Stefan Offermanns (verkrijgbaar bij het Jackson Laboratory als voorraad nr. 019079). Tgfbr2fl/fl muizen werden verkregen van Harold L. Moses (Vanderbilt University). Alle dierprocedures werden uitgevoerd met behulp van protocollen die zijn goedgekeurd door de Yale University Institutional Animal Care and Use Committee. <p c…

Representative Results

In dit protocol werden atherosclerotische laesies in TGFβR2iSMC-Apoe-muizen geanalyseerd na 4 maanden op een HCHF-dieet7. Naast uitgebreide atherosclerose ontwikkelden deze muizen zowel thoracale als abdominale aorta-aneurysma’s, zoals eerder gemeld. Vergeleken met Apoe-/- muizen vertoonden de aortawanden van TGFβR2iSMC-Apoe-muizen ernstige atherosclerose, waardoor het moeilijk was om de laesies te ontleden (figuur 2C, D, E).<s…

Discussion

Apolipoproteïne E (Apoe) en low density lipoprotein receptor (Ldlr) deficiënte muizen zijn nuttig voor het bestuderen van de ontwikkeling en behandeling van atherosclerose. Onderzoekers kunnen de impact van genetica en therapeutische manipulaties op atherosclerose-gerelateerde ziekten initiatie, progressie en regressie evalueren met behulp van Oil Red O-kleuring van de hele aorta9. Aorta Oil Red O-kleuring en laesiekwantificering is het gouden standaardeindpunt voor atheroscler…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door een Joint Biology Consortium Microgrant verstrekt onder NIH-subsidie P30AR070253 (P.-Y.C.), en HL135582 (MS). We zijn R. Webber en L. Coon dankbaar voor het onderhoud van de muizen die in deze studie zijn gebruikt.

Materials

1.5 mL Eppendorf tube DENVILLE C2170
10 mL syringe BD 302995
16% Formaldehyde Polysciences 18814-10
70% ethanol VWR RC2546.70-5 To clean the dissection tools
Black dissection wax CR Scientific C3541
Corn oil Sigma C8267 Solvent for Tamoxifen
DNeasy Blood & Tissue kit QIAGEN 69506 To isolate DNA from mouse ear
Dulbecco’s Phosphate-buffered saline (1X DPBS), pH 7.4 Gibco 14190-144
Fine scissors Fine Science Tools 14059-11 To cut the mouse skin and open the ribcage
Fisherbrand Economy Plain Glass Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-A3
High cholesterol high fat diet Research Diets D12108 To induce atherosclerosis
Imaging software National Institutes of Health Image J Aortic lesion quantification
Isopropanol VWR JT9079-5
Kimwipes Fisher Scientific 06-666A To clean the glass microscope slides
McPherson-Vannas Micro Dissecting Spring Scissors ROBOZ RS-5602 To separate the heart and the aorta and to cut open the aorta and aorta branches
Microscope control software Olympus DP Controller For aorta imaging
Minutien pins Fine Science Tools 26002-10
Needle-25G BD 305124
NonWoven Sponge McKesson 94442000
Oil Red O Sigma O-0625 To stain the atherosclerosis lesions
Pall Acrodisc Sterile Syringe Filters with Super Membrane VWR 28143-312 To filter working Oil Red O solution
Spring Scissors Fine Science Tools 15021-15 To dissect and clean the aorta
Statistical software GraphPad Prism 8 Statical analysis
Stereomicroscope Nikon SMZ1000 For aorta dissection
Stereomicroscope Olympus SZX16 For aorta imaging
Tamoxifen Sigma T5648 To induce Cre-loxP recombination
Tissue-Tek O.C.T Compound, Sakura Finetek VWR 25608-930
Tweezer Style 4 Electron Microscopy Sciences 0302-4-PO To cut the mouse skin and open the ribcage
Tweezer Style 5 Electron Microscopy Sciences 0302-5-PO To dissect and clean the aorta

References

  1. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407, 233-241 (2000).
  2. Emini Veseli, B., et al. Animal models of atherosclerosis. European Journal of Pharmacology. 816, 3-13 (2017).
  3. Plump, A. S., et al. Severe hypercholesterolemia and atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice created by homologous recombination in ES cells. Cell. 71, 343-353 (1992).
  4. Zhang, S. H., Reddick, R. L., Piedrahita, J. A., Maeda, N. Spontaneous hypercholesterolemia and arterial lesions in mice lacking apolipoprotein E. Science. 258, 468-471 (1992).
  5. Ishibashi, S., et al. Hypercholesterolemia in low density lipoprotein receptor knockout mice and its reversal by adenovirus-mediated gene delivery. Journal of Clinical Investigation. 92, 883-893 (1993).
  6. Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree. Arteriosclerosis Thrombosis. 14, 133-140 (1994).
  7. Chen, P. Y., et al. Smooth muscle cell reprogramming in aortic aneurysms. Cell Stem Cell. 26, 542-557 (2020).
  8. Andres-Manzano, M. J., Andres, V., Dorado, B. Oil Red O and Hematoxylin and Eosin Staining for Quantification of Atherosclerosis Burden in Mouse Aorta and Aortic Root. Methods in Molecular Biology. 1339, 85-99 (2015).
  9. Chen, P. Y., et al. Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis. Nature Metabolism. 1, 912-926 (2019).
  10. Mehlem, A., Hagberg, C. E., Muhl, L., Eriksson, U., Falkevall, A. Imaging of neutral lipids by oil red O for analyzing the metabolic status in health and disease. Nature Protocols. 8, 1149-1154 (2013).
  11. Ferruzzi, J., Madziva, D., Caulk, A. W., Tellides, G., Humphrey, J. D. Compromised mechanical homeostasis in arterial aging and associated cardiovascular consequences. Biomechanics and Modeling Mechanobiology. 17, 1281-1295 (2018).

Play Video

Cite This Article
Chen, P., Qin, L., Simons, M. Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model. J. Vis. Exp. (183), e61277, doi:10.3791/61277 (2022).

View Video