Summary

Imágenes y análisis de lesiones de aorta entera teñidas de O de color rojo aceite en un modelo de ratón con hiperlipidemia por aneurisma

Published: May 02, 2022
doi:

Summary

Este protocolo proporciona un procedimiento paso a paso para analizar la carga aterosclerótica en ratones. Los investigadores pueden usar este protocolo para comparar la abundancia, la ubicación y el tamaño de las lesiones ateroscleróticas en diferentes animales.

Abstract

Los ratones hiperlipidémicos deficientes en apolipoproteína E (Apoe) o receptores de lipoproteínas de baja densidad (Ldlr) son los dos modelos más utilizados para la investigación de la aterosclerosis. Se utilizan para estudiar el impacto de varios factores genéticos y diferentes tipos de células en la formación de lesiones ateroscleróticas y también para probar el desarrollo de nuevas terapias. El aislamiento, la escisión de toda la aorta y la cuantificación de las lesiones ateroscleróticas teñidas de O rojo aceite son métodos morfométricos básicos utilizados para evaluar la carga aterosclerótica. El objetivo de este protocolo es describir un método quirúrgico optimizado y paso a paso para diseccionar, perfusar-fijar, aislar, teñir, visualizar y analizar lesiones ateroscleróticas en aortas de ratón con Oil Red O. Debido a que las lesiones ateroscleróticas pueden formarse en cualquier parte de todo el árbol aórtico, este método de tinción de aceite de aorta roja O tiene la ventaja de evaluar las placas cargadas de lípidos en toda la aorta y todas las ramas en un solo ratón. Además de la tinción Oil Red O, se pueden utilizar aortas enteras frescas aisladas para una variedad de experimentos in vitro e in vivo y aislamientos celulares.

Introduction

La enfermedad de las arterias coronarias, una de las principales causas de mortalidad en los Estados Unidos, generalmente es causada por la aterosclerosis, un proceso que conduce a la acumulación de placa dentro de las paredes arteriales1. Los ratones con deficiencia de Apoe y Ldlr propensos a la hiperlipidemia son fundamentales para las investigaciones de la aterosclerosis y sus complicaciones y el desarrollo de terapias2,3,4,5. La cuantificación de las lesiones ateroscleróticas de una aorta en la cara es un análisis de punto final importante para evaluar el impacto de la manipulación genética en diferentes tipos de células. También ayuda a estudiar nuevas terapias diseñadas para afectar el inicio, la progresión y la regresión de la enfermedad aterosclerótica. Las lesiones ateroscleróticas pueden formarse en cualquier parte de la aorta y sus ramas (es decir, arterias braquiocefálicas, carótidas y subclavias en el tórax, así como arterias renales, ilíacas comunes y femorales debajo del diafragma)6. Una evaluación integral de la carga de aterosclerosis y la terapia adecuada requieren una evaluación de la carga de enfermedad en diferentes lugares, un desafío que a menudo se pasa por alto.

Este protocolo describe cómo realizar un análisis exhaustivo de las lesiones ateroscleróticas, comenzando con una aorta entera sin abrir y procediendo a la preparación de la cara, en un solo ratón. La tinción de aceite de aorta entera sin abrir Red O permite una evaluación rápida y cualitativa de las placas cargadas de lípidos en toda la aorta y sus ramas, mientras que la preparación facial proporciona una evaluación cuantitativa de la distribución de la lesión aterosclerótica en la aorta de ratón.

La técnica utiliza ratones de 8 semanas de edad con una deleción TGFβR2 específica de células musculares lisas en el fondo hiperlipidémico Apoe-/- (MYH11-CreERT2; Tgfbr2f/f;mT/mGf/f; Apoe-/-; en lo sucesivo denominados ratones TGFβR2iSMC-Apoe) y controles Apoe-/- de camada (MYH11-CreERT2;mT/mGf/f; Apoe-/-; en lo sucesivo denominados ratones Apoe-/-). Los animales se mantienen durante 16 semanas en una dieta alta en colesterol y alta en grasas (HCHFD) como materiales de estudio7. Al finalizar el estudio, las aortas enteras no abiertas se tiñen y se toman imágenes (incluidas todas las ramas principales) con Oil Red O para la evaluación cualitativa de las placas cargadas de lípidos. Las aortas se abren a través de la preparación facial, y todas las lesiones ateroscleróticas se visualizan y cuantifican. Este protocolo se puede utilizar para estudiar el desarrollo de lesiones ateroscleróticas en modelos de ratones con hiperlipidemia Apoe-/– o Ldlr-/- y extenderse a aplicaciones generales de biología vascular relacionada con la aorta.

Protocol

Los ratones mT/mG (stock no. 007676) y Apoe-/- (stock no. 002052) fueron comprados en el Laboratorio Jackson. Los ratones Myh11-CreERT2 fueron un regalo de Stefan Offermanns (disponible en el Laboratorio Jackson como stock no. 019079). Los ratones Tgfbr2fl/fl se obtuvieron de Harold L. Moses (Universidad de Vanderbilt). Todos los procedimientos con animales se realizaron utilizando protocolos aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de…

Representative Results

En este protocolo, se analizaron lesiones ateroscleróticas en ratones TGFβR2iSMC-Apoe después de 4 meses con una dieta HCHF7. Además de la aterosclerosis extensa, estos ratones desarrollaron aneurismas aórticos torácicos y abdominales, como se informó anteriormente. En comparación con los ratones Apoe-/-, las paredes aórticas de los ratones TGFβR2iSMC-Apoe mostraron aterosclerosis severa, lo que dificulta la disección de las lesiones (Figura 2C…

Discussion

Los ratones deficientes en apolipoproteína E (Apoe) y receptor de lipoproteínas de baja densidad (Ldlr) son útiles para estudiar el desarrollo y el tratamiento de la aterosclerosis. Los investigadores pueden evaluar el impacto de las manipulaciones genéticas y terapéuticas en la iniciación, progresión y regresión de enfermedades relacionadas con la aterosclerosis utilizando la tinción Oil Red O de toda la aorta9. La tinción y cuantificación de lesiones con aceite de ao…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado, en parte, por una microsubvención del Consorcio Conjunto de Biología proporcionada bajo la subvención P30AR070253 de los NIH (P.-Y.C.) y HL135582 (MS). Estamos agradecidos a R. Webber y L. Coon por mantener los ratones utilizados en este estudio.

Materials

1.5 mL Eppendorf tube DENVILLE C2170
10 mL syringe BD 302995
16% Formaldehyde Polysciences 18814-10
70% ethanol VWR RC2546.70-5 To clean the dissection tools
Black dissection wax CR Scientific C3541
Corn oil Sigma C8267 Solvent for Tamoxifen
DNeasy Blood & Tissue kit QIAGEN 69506 To isolate DNA from mouse ear
Dulbecco’s Phosphate-buffered saline (1X DPBS), pH 7.4 Gibco 14190-144
Fine scissors Fine Science Tools 14059-11 To cut the mouse skin and open the ribcage
Fisherbrand Economy Plain Glass Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-A3
High cholesterol high fat diet Research Diets D12108 To induce atherosclerosis
Imaging software National Institutes of Health Image J Aortic lesion quantification
Isopropanol VWR JT9079-5
Kimwipes Fisher Scientific 06-666A To clean the glass microscope slides
McPherson-Vannas Micro Dissecting Spring Scissors ROBOZ RS-5602 To separate the heart and the aorta and to cut open the aorta and aorta branches
Microscope control software Olympus DP Controller For aorta imaging
Minutien pins Fine Science Tools 26002-10
Needle-25G BD 305124
NonWoven Sponge McKesson 94442000
Oil Red O Sigma O-0625 To stain the atherosclerosis lesions
Pall Acrodisc Sterile Syringe Filters with Super Membrane VWR 28143-312 To filter working Oil Red O solution
Spring Scissors Fine Science Tools 15021-15 To dissect and clean the aorta
Statistical software GraphPad Prism 8 Statical analysis
Stereomicroscope Nikon SMZ1000 For aorta dissection
Stereomicroscope Olympus SZX16 For aorta imaging
Tamoxifen Sigma T5648 To induce Cre-loxP recombination
Tissue-Tek O.C.T Compound, Sakura Finetek VWR 25608-930
Tweezer Style 4 Electron Microscopy Sciences 0302-4-PO To cut the mouse skin and open the ribcage
Tweezer Style 5 Electron Microscopy Sciences 0302-5-PO To dissect and clean the aorta

References

  1. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407, 233-241 (2000).
  2. Emini Veseli, B., et al. Animal models of atherosclerosis. European Journal of Pharmacology. 816, 3-13 (2017).
  3. Plump, A. S., et al. Severe hypercholesterolemia and atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice created by homologous recombination in ES cells. Cell. 71, 343-353 (1992).
  4. Zhang, S. H., Reddick, R. L., Piedrahita, J. A., Maeda, N. Spontaneous hypercholesterolemia and arterial lesions in mice lacking apolipoprotein E. Science. 258, 468-471 (1992).
  5. Ishibashi, S., et al. Hypercholesterolemia in low density lipoprotein receptor knockout mice and its reversal by adenovirus-mediated gene delivery. Journal of Clinical Investigation. 92, 883-893 (1993).
  6. Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree. Arteriosclerosis Thrombosis. 14, 133-140 (1994).
  7. Chen, P. Y., et al. Smooth muscle cell reprogramming in aortic aneurysms. Cell Stem Cell. 26, 542-557 (2020).
  8. Andres-Manzano, M. J., Andres, V., Dorado, B. Oil Red O and Hematoxylin and Eosin Staining for Quantification of Atherosclerosis Burden in Mouse Aorta and Aortic Root. Methods in Molecular Biology. 1339, 85-99 (2015).
  9. Chen, P. Y., et al. Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis. Nature Metabolism. 1, 912-926 (2019).
  10. Mehlem, A., Hagberg, C. E., Muhl, L., Eriksson, U., Falkevall, A. Imaging of neutral lipids by oil red O for analyzing the metabolic status in health and disease. Nature Protocols. 8, 1149-1154 (2013).
  11. Ferruzzi, J., Madziva, D., Caulk, A. W., Tellides, G., Humphrey, J. D. Compromised mechanical homeostasis in arterial aging and associated cardiovascular consequences. Biomechanics and Modeling Mechanobiology. 17, 1281-1295 (2018).
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Cite This Article
Chen, P., Qin, L., Simons, M. Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model. J. Vis. Exp. (183), e61277, doi:10.3791/61277 (2022).

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