Summary

高分解能融解解析を用いた CALR 遺伝子の遺伝的変異体検出

Published: August 26, 2020
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Summary

高分解能溶融解析(HRM)は、遺伝的変異体検出のための敏感で迅速なソリューションです。それは、ヘテロ二重鎖が融解曲線の形状を変化させる結果となるシーケンスの違いに依存する。HRMとアガロースゲル電気泳動を組み合わせて、インデルなどの異なる種類の遺伝的変異体を同定することができる。

Abstract

高分解能溶融解析(HRM)は、遺伝子型入力や遺伝子変異スキャンのための強力な方法です。ほとんどのHRMアプリケーションは、配列の違いを検出する飽和DNA色素と、融解曲線の形状を変化させるヘテロ二重鎖に依存しています。優れた装置分解能および特殊なデータ解析ソフトウェアは、変異体または遺伝子型を識別する小さな融解曲線の違いを識別するために必要とされます。さまざまな頻度を有する異なる種類の遺伝的変異体は、特定の疾患を有する患者、特に癌、およびフィラデルフィア染色体-陰性骨髄増殖性新生物の患者における CALR 遺伝子に特異的な遺伝子で観察することができる。関心のある遺伝子における単一ヌクレオチドの変化、挿入および/または欠失(インデル)は、HRM分析によって検出され得る。異なる種類の遺伝的変異体の同定は、主にqPCR HRMアッセイで使用されるコントロールに基づいています。しかし、製品の長さが長くなるにつれて、野生型とヘテロ接合曲線の差が小さくなり、遺伝的変異体の種類を特定することがより困難になります。したがって、インデルが目的の遺伝子に期待される一般的な遺伝的変異体である場合、アガロースゲル電気泳動などの追加の方法をHRM結果の解明に使用することができる。場合によっては、決定的な結果を、標準のサンガーシーケンシングによって再チェック/再診断する必要があります。本回顧研究では、MPNを有する JAK2 V617F陰性患者にこの方法を適用した。

Introduction

カレチクリン遺伝子の体細胞遺伝学的変異体(CALR)は、2013年に骨髄増殖性新生物(MPN)の患者(必須血小板血症および原発性骨髄線維症1,2)で認識された。それ以来、CALR遺伝子の50以上の遺伝的変異体が発見され、+1(−1+2)フレームシフト3を誘導している。2つの最も頻繁なCALR遺伝的変異体は、タイプ1突然変異とも呼ばれる52bp欠失(NM_004343.3(CALR):c.1099_1150del52 p.(leu367Thrfs*46))、および5bp挿入(NM_004343.3(CALR):c.1154_1155insTTGTC、p.(Lys385Asnfs*47))、タイプ2突然変異とも呼ばれる。これら2つの遺伝的変異体は、全CALR遺伝的変異体の80%を表す。他のものは、野生型CALR4に近いαらせんの保存に基づくアルゴリズムを使用して、タイプ1-likeまたはタイプ2に分類されています。ここでは、CALR遺伝子変異体検出のための高感度かつ迅速な方法の1つ、高分解能融解解析法(HRM)を紹介する。この方法は、CALR突然変異5の大部分を表す1型および2型遺伝的変異体の迅速な検出を可能にする。HRMは、因子Vライデン6の変異を検出するためのツールとして1997年にリアルタイム»ポリメラーゼ連鎖反応«(qPCR)と組み合わせて導入されました。黄金の標準技術を表すサンガーシーケンシングと比較して、HRMはより敏感で、より特異的でない方法5です。HRM法は、多くのサンプルを迅速に分析し、費用便益5を実現する優れたスクリーニング方法である。蛍光色素の存在下で行う簡単なPCR法であり、特定のスキルを必要としません。もう一つの利点は、手順自体がHRM手順7の後に電気泳動またはサンガーシーケンシングのためにサンプルを再利用することを可能にする分析されたサンプルを損傷または破壊しないことである。唯一の欠点は、結果を解釈することが困難な場合もあるということです。さらに、HRMは、非タイプ1またはタイプ2突然変異8を有する患者において正確な突然変異を検出しない。これらの患者では、サンガーシーケンシングを行う必要があります(図1)。

HRMは、飽和DNA蛍光色素の存在下で特異的DNA領域の増幅に基づいており、これは二本鎖DNA(dsDNA)に組み込まれる。蛍光色素は、dsDNAに組み込まれると発光します。徐々に温度が上昇した後、dsDNAは一本鎖DNAに分解し、蛍光強度の急激な低下として融解曲線上で検出することができる。融解曲線の形状は、変異を検出するために使用されるDNA配列に依存する。試料の融解曲線は既知の突然変異または野生型CALRの融解曲線と比較される。明確な融解曲線は、タイプ 1 またはタイプ 29以外の異なる突然変異を表します。

HRMによる CALR 遺伝子における体細胞遺伝学的変異体検出のためのアルゴリズムとしては、アガロースゲル電気泳動およびシーケンシング法(図1)が使用され、10以前に発表された遡及研究で検証された。

Protocol

この研究は、スロベニア共和国の医療倫理委員会によって承認されました。すべての手順はヘルシンキ宣言に従っていました。 1. 蛍光ベースの定量リアルタイム PCR (qPCR) および HRM による qPCR 後分析 材料表に記載されているプライマーを無菌、RNaseおよびDNaseフリーH2Oで100 μMに再懸濁します(材料表を参照)。10 μMの作業濃度プライ…

Representative Results

循環15と35の間の閾値を超える蛍光の指数関数的増加と、すべての複製されたサンプルおよびコントロールにおける定量サイクルの非常に狭い値(Cq)を有する目的のDNA領域の増幅に成功した(図2)は、HRM分析による遺伝的変異体の確実な同定のための前提条件である。これは、qPCR HRM実験で蛍光染色と同量のDNAを正確に測定することによって達成される(ステップ1.2参照)。 <st…

Discussion

DNAの高解像度融解は、遺伝子型入力および遺伝的変異体走査14のための簡単なソリューションである。それは、融解曲線の形状を変化させるヘテロ二重鎖をもたらすシーケンスの違いに依存する。多様な頻度を有する異なる種類の遺伝的変異体は、癌1、2、15、16、10の特定のグループに特異的な遺伝子で観?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、大学医療センターリュブリャナの内科、血液学部門、専門血液学研究所の学術専門家と従業員全員に感謝したいと考えています。

Materials

E-Gel EX 4% Agarose Invitrogen, Thermo Fischer Scientific G401004
Fuorometer 3.0 QUBIT Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q33216
Invitrogen E-Gel iBase and E-Gel Safe Imager Combo Kit Invitrogen, Thermo Fischer Scientific G6465EU
MeltDoctor HRM MasterMix 2X Applied Biosystem, Thermo Fischer Scientific 4415440 Components: AmpliTaqGold 360 DNA Polymerase, MeltDoctor trade HRM dye, dNTP blend including dUTP, Magnesium salts and other buffer components, precisely formulated to obtain optimal HRM results
MicroAmp Fast 96-well Reaction Plate (0.1 mL) Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4346907
MicroAmp Optical adhesive film Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4311971
NuGenius Syngene NG-1045 Gel documentation systems
Primer CALRex9 Forward Eurofins Genomics Sequence: 5'GGCAAGGCCCTGAGGTGT'3 (High-Purity, Salt-Free)
Primer CALRex9 Reverse Eurofins Genomics Sequence: 5'GGCCTCAGTCCAGCCCTG'3 (High-Purity, Salt-Free)
QIAamp DNA Mini Kit QIAGEN 51306 DNA isolation kit with the buffer for DNA dilution.
Qubit Assay Tubes Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q32856
QUBIT dsDNA HS assay Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q32854
Trackit 100bp DNA Ladder Invitrogen, Thermo Fischer Scientific 10488058 Ladder consists of 13 individual fragments with the reference bands at 2000, 1500, and 600 bp.
ViiA7 Real-Time PCR System Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4453534
Water nuclease free VWR, Life Science 436912C RNase, DNase and Protease free water

References

  1. Nangalia, J., et al. Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated JAK2. New England Journal of Medicine. 369, 2391-2405 (2013).
  2. Klampfl, T., et al. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. New England Journal of Medicine. 369, 2379-2390 (2013).
  3. Vainchenker, W., Kralovics, R. Genetic basis and molecular pathophysiology of classical myeloproliferative neoplasms. Blood. 129, 667-679 (2017).
  4. Pietra, D., et al. Differential clinical effects of different mutation subtypes in CALR-mutant myeloproliferative neoplasms. Leukemia. 30, 431-438 (2016).
  5. Lim, K. H., et al. Rapid and sensitive detection of CALR exon 9 mutations using high-resolution melting analysis. Clinica Chimica Acta. 440, 133-139 (2015).
  6. Lay, M. J., Wittwer, C. T. Real-time fluorescence genotyping of factor V leiden during rapid-cycle PCR. Clinical Chemistry. 43, 2262-2267 (1997).
  7. Vossen, R. H. A. M., Aten, E., Roos, A., Den Dunnen, J. T. High-resolution melting analysis (HRMA) – More than just sequence variant screening. Human Mutation. 30, 860-866 (2009).
  8. Barbui, T., Thiele, J., Vannucchi, A. M., Tefferi, A. Rationale for revision and proposed changes of the WHO diagnostic criteria for polycythemia vera, essential thrombocythemia and primary myelofibrosis. Blood Cancer Journal. 5, 337-338 (2015).
  9. Reed, G. H., Wittwer, C. T. Sensitivity and specificity of single-nucleotide polymorphism scanning by high-resolution melting analysis. Clinical Chemistry. 50, 1748-1754 (2004).
  10. Belcic Mikic, T., Pajic, T., Sever, M. CALR mutations in a cohort of JAK2 V617F negative patients with suspected myeloproliferative neoplasms. Scientific Reports. 9, 19838 (2019).
  11. Invitrogen, Thermo Fischer Scientific. . QubitTM dsDNA HS Assay Kits. Manual (MAN0002326, MP32851, Revision: B.0). , (2015).
  12. Applied Biosystems, Thermo Fisher Scientific. . High Resolution Melt Module for ViiA TM 7 Software v1. Getting Started Guide. Part Number 4443531 Rev. B. , (2011).
  13. Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific. . High-Resolution Melt Analysis for Mutation Scanning Prior to Sequencing. Application Note. , (2010).
  14. Reed, G. H., Kent, J. O., Wittwer, C. T. High-resolution DNA melting analysis for simple and efficient molecular diagnostics. Pharmacogenomics. 8, 597-608 (2007).
  15. Gonzalez-Bosquet, J., et al. Detection of somatic mutations by high-resolution DNA melting (HRM) analysis in multiple cancers. PLoS One. 6, 14522 (2011).
  16. Van Der Stoep, N., et al. Diagnostic guidelines for high-resolution melting curve (HRM) analysis: An interlaboratory validation of BRCA1 mutation scanning using the 96-well LightScanner. Human Mutation. 30, 899-909 (2009).
  17. Singdong, R., et al. Characterization and Prognosis Significance of JAK2 (V617F), MPL, and CALR Mutations in Philadelphia-Negative Myeloproliferative Neoplasms. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention. 17, 4647-4653 (2016).
  18. Erali, M., Wittwer, C. T. High resolution melting analysis for gene scanning. Methods. 50, 250-261 (2010).
  19. Bilbao-Sieyro, C., et al. High Resolution Melting Analysis: A Rapid and Accurate Method to Detect CALR Mutations. PLoS One. 9, 103511 (2014).
  20. Słomka, M., Sobalska-Kwapis, M., Wachulec, M., Bartosz, G., Strapagiel, D. High resolution melting (HRM) for high-throughput genotyping-limitations and caveats in practical case studies. International Journal of Molecular Sciences. 18, 2316 (2017).
  21. Li, X., et al. Comparison of three common DNA concentration measurement methods. Analytical Biochemistry. 451, 18-24 (2014).
  22. Voytas, D. Agarose Gel Electrophoresis. Current Protocols in Immunology. 2, (1992).
  23. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments. Journal of Visualized Experiments. , e3923 (2012).
  24. Helling, R. B., Goodman, H. M., Boyer, H. W. Analysis of Endonuclease R·EcoRI Fragments of DNA from Lambdoid Bacteriophages and Other Viruses by Agarose-Gel Electrophoresis. Journal of Virology. , 1235-1244 (1974).
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Pajič, T., Belčič Mikič, T., Podgornik, H., Klun, J., Šućurović, S., Zver, S., Sever, M. Genetic Variant Detection in the CALR gene using High Resolution Melting Analysis. J. Vis. Exp. (162), e61642, doi:10.3791/61642 (2020).

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