Summary

Transplante intramial de hidrogéis injetáveis de carregamento de MSC após infarto do miocárdio em um modelo murino

Published: September 20, 2020
doi:

Summary

A terapia baseada em células-tronco emergiu como uma estratégia eficiente para reparar tecidos cardíacos feridos após o infarto do miocárdio. Fornecemos uma aplicação in vivo ideal para transplante de células-tronco usando hidrogéis de gelatina que são capazes de ser enzimaticamente intercessos.

Abstract

Um dos principais problemas enfrentados pelas atuais terapias de células-tronco cardíacas para prevenir a insuficiência cardíaca pós-infarto é a baixa retenção e as taxas de sobrevivência das células transplantadas dentro do miocárdio ferido, limitando sua eficácia terapêutica. Recentemente, o uso de biomateriais de andaimes ganhou atenção para melhorar e maximizar a terapia com células-tronco. O objetivo deste protocolo é introduzir uma técnica simples e simples para transplantar células-tronco mesenquimais derivadas da medula óssea (MSCs) utilizando hidrogéis de ácido propínico hidroxifenil injetável (GH); os hidrogéis são favoráveis como uma plataforma de entrega de células para aplicações de engenharia de tecidos cardíacos devido à sua capacidade de estar intercingo in situ e alta biocompatibilidade. Apresentamos um método simples para fabricar hidrogéis GH de carregamento de MSC (MSC/hidrogéis) e avaliar sua sobrevivência e proliferação na cultura in vitro tridimensional (3D). Além disso, demonstramos uma técnica para transplante intramialárdio de MSC/hidrogéis em camundongos, descrevendo um procedimento cirúrgico para induzir o infarto do miocárdio (MI) através da ligadura da artéria coronária descendente anterior (LAD) e posterior transplante de MSC/hidrogéis.

Introduction

A terapia com células-tronco cardíacas emergiu como uma abordagem potencial para reparação e regeneração do miocárdio1,2. Apesar dos resultados positivos recentes em modelos animais e ensaios clínicos, a aplicação de terapia baseada em células-tronco para reparação do miocárdio é limitada devido à baixa retenção e má sobrevivência das células injetadas nos tecidos cardíacos infartados3,4. Como resultado, o uso de engenharia de tecidos baseados em células, incluindo biomateriais injetáveis5, patches cardíacos6e folhas de células7, tem sido intensamente estudado para melhorar a retenção e integração celular dentro do miocárdio hospedeiro.

Entre as várias abordagens potenciais para a reparação de tecidos cardíacos bioengenharia, hidrânis injetáveis combinados com tipos de células apropriadas, como células-tronco mesenquimais (MSCs), células-tronco embrionárias (ESCs) e células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs), são uma opção atraente para efetivamente entregar células nas regiões miocárdias8,9. A gelatina, um polímero natural bem conhecido, pode ser usada como uma matriz injetável devido à sua grande biocompatibilidade, biodegradabilidade considerável e imunogenicidade reduzida quando comparada com uma ampla gama de biomaterias usados em aplicações biomédicas. Embora as plataformas injetáveis à base de gelatina tenham grande potencial, sua aplicabilidade in vivo permanece limitada com base em sua baixa rigidez mecânica e fácil degradabilidade no ambiente fisiológico.

Para superar essas limitações, foi proposto um design novo e simples de hidrogéis à base de gelatina, compostos por ácido propiônico hidroxifenil. Os conjugados de ácido propiônico gelatino-hidroxifenil (GH) podem ser interligados in situ na presença de uma enzima, peroxidase de rabanete (HRP) e, posteriormente, encapsular várias drogas, biomoléculas ou células dentro do hidrogel, sugerindo grande potencial nas aplicações de engenharia de tecidos10,11,12,13,14. Além disso, recentemente investigamos os efeitos terapêuticos dos hidrogéis GH contendo MSCs encapsulados e demonstramos seu uso em reparo e regeneração cardíaca bem-sucedido após a MI em um modelo murino15. Neste protocolo, descrevemos uma técnica simples para o encapsulamento e a proliferação tridimensional in vitro (3D) de MSCs dentro de hidrogéis GH. Também introduzimos um procedimento cirúrgico projetado para gerar um modelo mi murina através da ligadura da artéria coronária e transplante intramocárdio de hidrogéis GH que carregam MSC no coração infartado.

Protocol

Todos os procedimentos de pesquisa animal foram fornecidos de acordo com a Lei de Bem-Estar dos Animais de Laboratório, o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório e as Diretrizes e Políticas para Experimentos de Roedores fornecidas pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) na Faculdade de Medicina da Universidade Católica da Coreia. 1. Preparação de MSCs e hidrogéis de gelatina injetáveis MSCs de cultura em um prato de cultura de 100 mm a 37 ?…

Representative Results

Para efetivamente fornecer MSCs ao miocárdio infartado, foram utilizados neste protocolo o carregamento de MSC em hidrogéis transfronteiriços descritos na Figura 1. Antes do transplante in vivo, a proliferação e sobrevivência de MSCs em hidrogéis GH foram confirmadas por um ensaio de coloração de células mortas/in vitro 3D (ao vivo: verde; morto: vermelho). Como mostrado na Figura 2,imagens representativas exibiram proliferação suficiente de MSCs, mo…

Discussion

Os hidrogéis GH injetáveis têm grande potencial para aplicações in vivo devido à sua capacidade de incorporar homogêneo agentes terapêuticos in situ. Além disso, suas propriedades físicas e bioquímicas podem ser facilmente manipuladas com base em requisitos dependentes de doenças. Nesse sentido, hidrogéis injetáveis têm sido propostos para abordar as principais limitações na atual terapia de células-tronco cardíacas dificultadas pela má sobrevida e retenção celular (ou seja, < 10% dentro de 24h apó…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa é apoiada pelo Programa de Pesquisa em Ciência Básica através da Fundação Nacional de Pesquisa da Coreia (NRF) financiada pelo Ministério da Educação (NRF-2018R1D1A1A02049346)

Materials

4 % paraformaldehyde (PFA) Intron IBS-BP031-2
5-0 silk suture AILEE SK534
8-0 polypropylene suture ETHICON M8732H
8-well chamber slide Nunc LAB-TEK 154534
Angiocath Plus (22GA) catheter BD Angiocath Plus REF382423
Antibiotic-antimyocotic Gibco 15240-062
Centrifuge GYROGEN 1582MGR
Confocal microscope Zeiss LSM 510
Cover slipe MARIENFELD 101242
Deluxe High Temperature Cautery kit Bovie QTY1
DMEM Gibco 11995-065
DPBS Gibco 14040-133
Dual-syringe
EOSIN SIGMA-ALDRICH HT110116
Ethanol EMSURE K49350783 739
FBS Gibco 16000-044
Fechtner conjunctiva forceps titanium WORLD PRECISISON INSTRUMENTS WP1820
Fluorescein isothiocyanate isomer I (FITC) SIGMA-ALDRICH F7250
Forcep HEBU HB0458
Hair removal cream Ildong Pharmaceutical
Heating pad Stoelting 50300 Homeothermic Blanket System
50301 Replacement Heating Pad for 50300 (10 X 12.5cm)
Hematoxylin SIGMA-ALDRICH HHS80
Horseradish peroxide (HRP; 250-330 U/mg) SIGMA-ALDRICH P8375
Hydrogen peroxide (H2O2; 30 wt % in H2O) SIGMA-ALDRICH 216763
Iodine Green Pharmaceutical
LIVE/DEAD cell staining kit Thermo Fisher R37601
Mechanical ventilator Harvard Apparatus
Micro centrifuge HANIL Micro 12
Micro needle holder KASCO 37-1452
Micro scissor HEBU HB7381
Microscope OLYMPUS SZ61
MT staining kit SIGMA-ALDRICH HT1079-1SET Weigert’s iron hematoxylin solution
HT15-1KT Trichrome Stain (Masson) Kit
Paraffin LK LABKOREA H06-660-107
PBS buffer Gibco 10010-023
PHK26 staining kit SIGMA-ALDRICH MINI26
Slide scanner Leica SCN400
Surgical scissor HEBU HB7454
Surgical tape 3M micopore 1530-1
Tissue cassette Scilab Korea Cas3003
Transducer gel SUNGHEUNG SH102
Trout-Barraquer needle holder curved KASCO 50-3710c
Ultrasound system Philips Affiniti 50
Xylene JUNSEI 25175-0430

References

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Cite This Article
Kim, C. W., Kim, C. J., Park, E., Lee, E., Seong, E., Chang, K. Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model. J. Vis. Exp. (163), e61752, doi:10.3791/61752 (2020).

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