Summary

Het kwantificeren van fibrillar collageen organisatie met Curvelet transform-based tools

Published: November 11, 2020
doi:

Summary

Hier presenteren we een protocol om een curvelet transform-gebaseerde, open-source MATLAB-softwaretool te gebruiken voor het kwantificeren van fibrillaire collageenorganisatie in de extracellulaire matrix van zowel normale als zieke weefsels. Deze tool kan worden toegepast op afbeeldingen met collageenvezels of andere soorten lijnachtige structuren.

Abstract

Fibrillar collageens zijn prominente extracellulaire matrix (ECM) componenten, en hun topologie veranderingen zijn aangetoond te worden geassocieerd met de progressie van een breed scala van ziekten, waaronder borst-, eierstok-, nier- en alvleesklierkanker. Vrij beschikbare softwaretools voor vezelkwantificering zijn voornamelijk gericht op de berekening van vezeluitlijning of -oriëntatie, en ze zijn onderhevig aan beperkingen zoals de vereiste van handmatige stappen, onnauwkeurigheid in de detectie van de vezelrand op een lawaaierige achtergrond of gebrek aan gelokaliseerde functiekarakterisering. De collageenvezelkwantificeringstool die in dit protocol wordt beschreven, wordt gekenmerkt door het gebruik van een optimale afbeeldingsweergave op meerdere schaal die wordt ingeschakeld door curvelettransformatie (CT). Deze algoritmische benadering maakt het mogelijk om ruis uit fibrillaire collageenafbeeldingen te verwijderen en de vezelranden te verbeteren om locatie- en oriëntatie-informatie rechtstreeks van een vezel te bieden, in plaats van de indirecte pixel- of venstergewijze informatie te gebruiken die is verkregen uit andere tools. Dit op CT gebaseerde framework bevat twee afzonderlijke, maar gekoppelde pakketten met de naam “CT-FIRE” en “CurveAlign” die glasvezelorganisatie kunnen kwantificeren op een globale, region of interest (ROI) of individuele vezelbasis. Dit kwantificeringskader is al meer dan tien jaar ontwikkeld en is nu uitgegroeid tot een uitgebreid en gebruikersgedreven collageenkwantificeringsplatform. Met behulp van dit platform kan men tot ongeveer dertig vezelfuncties meten, waaronder individuele vezeleigenschappen zoals lengte, hoek, breedte en rechtheid, evenals bulkmetingen zoals dichtheid en uitlijning. Bovendien kan de gebruiker de vezelhoek meten ten opzichte van handmatig of automatisch gesegmenteerde grenzen. Dit platform biedt ook verschillende extra modules, waaronder modules voor ROI-analyse, automatische grenscreatie en nabewerking. Het gebruik van dit platform vereist geen voorafgaande ervaring met programmeren of beeldverwerking en het kan grote datasets verwerken, waaronder honderden of duizenden afbeeldingen, waardoor een efficiënte kwantificering van de collageenvezelorganisatie voor biologische of biomedische toepassingen mogelijk is.

Introduction

Fibrillar collageens zijn prominente, structurele ECM componenten. Hun organisatie verandert impact weefselfunctie en zijn waarschijnlijk geassocieerd met de progressie van vele ziekten variërend van osteogenese imperfecta1,hartdisfunctie2, en wondgenezing3 tot verschillende soorten kanker, waaronder borst4,5,6,eierstok7,8,nier9, en alvleesklierkanker10. Veel gevestigde beeldvormingsmodaliteiten kunnen worden gebruikt om fibrillar collageen te visualiseren, zoals microscopie van de tweede harmonische generatie11,vlekken of kleurstoffen in combinatie met heldere veld- of fluorescentiemicroscopie of gepolariseerde lichtmicroscopie12,vloeibare kristalgebaseerde polarisatiemicroscopie (LC-PolScope)13en elektronenmicroscopie14. Naarmate het belang van fibrillaire collageenorganisatie duidelijker is geworden en het gebruik van deze methoden is toegenomen, is de behoefte aan verbeterde collageenvezelanalysebenaderingen ook toegenomen.

Er zijn veel inspanningen geleverd om computationele methoden te ontwikkelen voor geautomatiseerde meting van fibrillar collageen. Vrij beschikbare softwaretools zijn voornamelijk gericht op de berekening van vezeluitlijning of oriëntatie door ofwel de eerste afgeleide of structuur tensor voor pixels15,16, of Fourier transformatie-gebaseerde spectrumanalyse voor beeldtegels17. Al deze tools zijn onderhevig aan beperkingen, zoals de vereiste van handmatige stappen, onnauwkeurigheid in de detectie van de vezelrand op een lawaaierige achtergrond of gebrek aan gelokaliseerde functiekarakterisering.

In vergelijking met andere vrij beschikbare open-source vrije softwaretools gebruiken de methoden die in dit protocol worden beschreven CT – een optimale, multiscale, directionele beeldweergavemethode – om ruis uit fibrillaire collageenafbeeldingen te verwijderen en vezelranden te verbeteren of bij te houden. Informatie over locatie en oriëntatie kan rechtstreeks vanuit een vezel worden verstrekt in plaats van door de indirecte pixel- of venstergewijze informatie te gebruiken om de statistieken van glasvezelorganisatie af te leiden. Dit op CT gebaseerde framework18,19,20,21 kan glasvezelorganisatie kwantificeren op een wereldwijde, ROI- of vezelbasis, voornamelijk via twee afzonderlijke, maar gekoppelde pakketten met de naam “CT-FIRE”18,21 en “CurveAlign”19,21. Wat de implementatie van de software betreft, kunnen in CT-FIRE CT-coëfficiënten op meerdere schalen worden gebruikt om een afbeelding te reconstrueren die randen verbetert en ruis vermindert. Vervolgens wordt een individueel vezelextractiealgoritme toegepast op de CT-gereconstrueerde afbeelding om vezels te volgen voor het vinden van hun representatieve middelpunten, het uitbreiden van vezeltakken vanaf de middelpunten en het koppelen van vezeltakken om een glasvezelnetwerk te vormen. In CurveAlign kunnen CT-coëfficiënten op een door de gebruiker opgegeven schaal worden gebruikt om de lokale vezeloriëntatie bij te houden, waarbij de oriëntatie en locaties van curvelets worden geëxtraheerd en gegroepeerd om de vezeloriëntatie op de overeenkomstige locaties te schatten. Dit resulterende kwantificeringskader is al meer dan tien jaar ontwikkeld en is sterk geëvolueerd in vele aspecten zoals functionaliteit, gebruikersinterface en modulariteit. Deze tool kan bijvoorbeeld de lokale vezeloriëntatie visualiseren en stelt de gebruiker in staat om tot dertig vezelfuncties te meten, waaronder individuele vezeleigenschappen zoals lengte, hoek, breedte en rechtheid, evenals bulkmetingen zoals dichtheid en uitlijning. Bovendien kan de gebruiker de vezelhoek meten ten opzichte van handmatig of automatisch gesegmenteerde grenzen, wat bijvoorbeeld een belangrijke rol speelt in de ontwikkeling van beeldgebaseerde biomarker in borstkanker22 en alvleesklierkankerstudies10. Dit platform biedt verschillende functiemodules, waaronder modules voor ROI-analyse, automatische grenscreatie en nabewerking. De ROI-module kan worden gebruikt om verschillende vormen van ROI te annoteren en de bijbehorende ROI-analyse uit te voeren. Als toepassingsvoorbeeld kan de automatische module voor het maken van grenzen worden gebruikt om hematoxyline en eosine (H&E) heldere veldafbeeldingen te registreren met SHG-afbeeldingen (Second Harmonic Generation) en het afbeeldingsmasker van tumorgrenzen te genereren uit de geregistreerde H&E-afbeeldingen. De module na verwerking kan helpen bij het vergemakkelijken van de verwerking en integratie van uitvoergegevensbestanden uit afzonderlijke afbeeldingen voor mogelijke statistische analyse.

Dit kwantificeringsplatform vereist geen voorafgaande ervaring met programmeren of beeldverwerking en kan grote datasets verwerken, waaronder honderden of duizenden afbeeldingen, waardoor een efficiënte kwantificering van de collageenorganisatie voor biologische of biomedische toepassingen mogelijk is. Het is op grote schaal gebruikt op verschillende onderzoeksgebieden door veel onderzoekers over de hele wereld, waaronder wijzelf. Er zijn vier hoofdpublicaties over CT-FIRE en CurveAlign18,19,20,21, waarvan de eerste drie 272 keer zijn geciteerd (vanaf 2020-05-04 volgens Google Scholar). Een overzicht van de publicaties die dit platform citeerden (CT-FIRE of CurveAlign) geeft aan dat er ongeveer 110 tijdschriftstukken zijn die het direct gebruikten voor hun analyse, waarin ongeveer 35 publicaties samenwerkten met onze groep, en de andere (~ 75) werden geschreven door andere groepen. Bijvoorbeeld: dit platform werd gebruikt voor de volgende studies: borstkanker22,23,24, alvleesklierkanker10,25, nierkanker9,26, wondgenezing3,27,28,29,30, eierstokkanker8,31,7, uterosacrale ligament32, hypofosfaterem dentine33, basaalcelcarcinoom34, hypoxisch sarcoom35, kraakbeenweefsel36, hartdisfunctie37, neuronen38, glioblastoom39, lymfatische contracties40, vezelige cacffolds41, maagkanker42, microtubuli43, en blaasfibrose44. Figuur 1 toont de kankerbeeldvormingstoepassing van CurveAlign om de tumor-geassocieerde collageenhandtekeningen van borstkanker19 uit het SHG-beeld te vinden. Figuur 2 beschrijft een typische schematische workflow van dit platform. Hoewel deze tools technisch zijn herzien18,19,21, en een regelmatig protocol20 voor uitlijningsanalyse met CurveAlign ook beschikbaar is, kan een visueel protocol dat alle essentiële functies demonstreert nuttig zijn. Een gevisualiseerd protocol, zoals hier gepresenteerd, zal het leerproces van het gebruik van dit platform vergemakkelijken en efficiënter omgaan met zorgen en vragen die gebruikers zouden kunnen hebben.

Protocol

OPMERKING: Dit protocol beschrijft het gebruik van CT-FIRE en CurveAlign voor collageenkwantificering. Deze twee instrumenten hebben complementaire, maar verschillende, hoofddoelen en zijn tot op zekere hoogte met elkaar verbonden. CT-FIRE kan worden gestart vanuit de CurveAlign-interface om de meeste bewerkingen uit te voeren, behalve voor geavanceerde nabewerking en ROI-analyse. Voor een volledige werking van CT-FIRE moet het afzonderlijk worden gestart. 1. Beeldverzameling en beeldeis <p …

Representative Results

Deze methoden zijn met succes toegepast in tal van studies. Enkele typische toepassingen zijn: 1) Conklin et al.22 gebruikten CurveAlign om tumor-geassocieerde collageenhandtekeningen te berekenen, en ontdekten dat collageenvezels vaker loodrecht op de kanaalperimeter werden uitgelijnd in ductaal carcinoom in situ (DCIS) laesies; 2) Drifka et al.10 gebruikten de CT-FIRE-modus in CurveAlign om de stromale collageenuitlijning voor pancreas ductaal adenocarcinoom en normale/ c…

Discussion

Dit protocol beschrijft het gebruik van CT-FIRE en CurveAlign voor fibrillaire collageenkwantificering en kan worden toegepast op elk beeld met collageenvezels of andere lijnachtige of vezelachtige langwerpige structuren die geschikt zijn voor analyse door CT-FIRE of CurveAlign. Elastine of elastische vezels kunnen bijvoorbeeld op dit platform op een vergelijkbare manier worden verwerkt. We hebben beide tools getest op rekenkundig gegenereerde synthetische vezels21. Afhankelijk van de toepassing m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We danken vele bijdragers en gebruikers aan CT-FIRE en CurveAlign door de jaren heen, waaronder Dr. Rob Nowak, Dr. Carolyn Pehlke, Dr. Jeremy Bredfeldt, Guneet Mehta, Andrew Leicht, Dr. Adib Keikhosravi, Dr. Matt Conklin, Dr. Jayne Squirrell, Dr. Paolo Provenzano, Dr. Brenda Ogle, Dr. Patricia Keely, Dr. Joseph Szulczewski, Dr. Suzanne Ponik en aanvullende technische bijdragen van Swati Anand en Curtis Rueden. Dit werk werd ondersteund door financiering van Semiconductor Research Corporation, Morgridge Institute for Research en NIH-subsidies R01CA199996, R01CA181385 en U54CA210190 aan K.W.E.

Materials

CT-FIRE Univerity of Wisconsin-Madison N/A open source software available from https://eliceirilab.org/software/ctfire/
CurveAlign University of Wisconsin-Madison N/A open source software available from https://eliceirilab.org/software/curvealign/

References

  1. Nadiarnykh, O., et al. Second harmonic generation imaging microscopy studies of osteogenesis imperfecta. Journal of Biomedical Optics. 12 (5), 051805 (2007).
  2. Kouris, N. A., et al. A nondenatured, noncrosslinked collagen matrix to deliver stem cells to the heart. Regenerative Medicine. 6 (5), 569-582 (2011).
  3. LeBert, D. C., et al. Matrix metalloproteinase 9 modulates collagen matrices and wound repair. Development. 142 (12), 2136-2146 (2015).
  4. Provenzano, P. P., et al. Collagen reorganization at the tumor-stromal interface facilitates local invasion. BMC Medicine. 4 (1), 38 (2006).
  5. Provenzano, P. P., et al. Collagen density promotes mammary tumor initiation and progression. BMC Medicine. 6 (1), 1 (2008).
  6. Conklin, M. W., et al. Aligned collagen is a prognostic signature for survival in human breast carcinoma. The American Journal of Pathology. 178 (3), 1221-1232 (2011).
  7. Alkmin, S., et al. Migration dynamics of ovarian epithelial cells on micro-fabricated image-based models of normal and malignant stroma. Acta Biomaterialia. 100, 92-104 (2019).
  8. Campbell, K. R., Campagnola, P. J. Assessing local stromal alterations in human ovarian cancer subtypes via second harmonic generation microscopy and analysis. Journal of Biomedical Optics. 22 (11), 116008 (2017).
  9. Best, S. L., et al. Collagen organization of renal cell carcinoma differs between low and high grade tumors. BMC Cancer. 19 (1), 490 (2019).
  10. Drifka, C. R., et al. Periductal stromal collagen topology of pancreatic ductal adenocarcinoma differs from that of normal and chronic pancreatitis. Modern Pathology. 28 (11), 1470-1480 (2015).
  11. Campagnola, P. J., et al. Three-dimensional high-resolution second-harmonic generation imaging of endogenous structural proteins in biological tissues. Biophysical Journal. 82 (1), 493-508 (2002).
  12. Arun Gopinathan, P., et al. Study of collagen birefringence in different grades of oral squamous cell carcinoma using picrosirius red and polarized light microscopy. Scientifica. 2015, 1-7 (2015).
  13. Keikhosravi, A., et al. Quantification of collagen organization in histopathology samples using liquid crystal based polarization microscopy. Biomedical Optics Express. 8 (9), 4243-4256 (2017).
  14. Quan, B. D., Sone, E. D. Cryo-TEM analysis of collagen fibrillar structure. Methods in Enzymology. 532, 189-205 (2013).
  15. Boudaoud, A., et al. FibrilTool, an ImageJ plug-in to quantify fibrillar structures in raw microscopy images. Nature Protocols. 9 (2), 457-463 (2014).
  16. Rezakhaniha, R., et al. Experimental investigation of collagen waviness and orientation in the arterial adventitia using confocal laser scanning microscopy. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 11 (3-4), 461-473 (2012).
  17. Kartasalo, K., et al. CytoSpectre: a tool for spectral analysis of oriented structures on cellular and subcellular levels. BMC Bioinformatics. 16 (1), 1 (2015).
  18. Bredfeldt, J. S., et al. Computational segmentation of collagen fibers from second-harmonic generation images of breast cancer. Journal of Biomedical Optics. 19 (1), 016007 (2014).
  19. Bredfeldt, J. S., et al. Automated quantification of aligned collagen for human breast carcinoma prognosis. Journal of Pathology Informatics. 5 (1), 28 (2014).
  20. Liu, Y., Keikhosravi, A., Mehta, G. S., Drifka, C. R., Eliceiri, K. W. Methods for quantifying fibrillar collagen alignment. Methods in Molecular Biology. 1627, 429-451 (2017).
  21. Liu, Y., et al. Fibrillar collagen quantification with curvelet transform based computational methods. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 198 (2020).
  22. Conklin, M. W., et al. Collagen alignment as a predictor of recurrence after ductal carcinoma in situ. Cancer Epidemiology and Prevention Biomarkers. 27 (2), 138-145 (2018).
  23. Jallow, F., et al. Dynamic interactions between the extracellular matrix and estrogen activity in progression of ER+ breast cancer. Oncogene. 38 (43), 6913-6925 (2019).
  24. Smirnova, T., et al. Serpin E2 promotes breast cancer metastasis by remodeling the tumor matrix and polarizing tumor associated macrophages. Oncotarget. 7 (50), 82289 (2016).
  25. Fanous, M., Keikhosravi, A., Kajdacsy-Balla, A., Eliceiri, K. W., Popescu, G. Quantitative phase imaging of stromal prognostic markers in pancreatic ductal adenocarcinoma. Biomedical Optics Express. 11 (3), 1354-1364 (2020).
  26. Jiménez-Torres, J. A., Virumbrales-Muñoz, M., Sung, K. E., Lee, M. H., Abel, E. J., Beebe, D. J. Patient-specific organotypic blood vessels as an in vitro model for anti-angiogenic drug response testing in renal cell carcinoma. EBioMedicine. 42, 408-419 (2019).
  27. Govindaraju, P., Todd, L., Shetye, S., Monslow, J., Puré, E. CD44-dependent inflammation, fibrogenesis, and collagenolysis regulates extracellular matrix remodeling and tensile strength during cutaneous wound healing. Matrix Biology. 75, 314-330 (2019).
  28. Henn, D., et al. Cryopreserved human skin allografts promote angiogenesis and dermal regeneration in a murine model. International Wound Journal. 17 (4), 925-936 (2020).
  29. Rico-Jimenez, J., et al. Non-invasive monitoring of pharmacodynamics during the skin wound healing process using multimodal optical microscopy. BMJ Open Diabetes Research and Care. 8 (1), 000974 (2020).
  30. Israel, J. S., et al. Quantification of collagen organization after nerve repair. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 5 (12), (2017).
  31. Rentchler, E. C., Gant, K. L., Drapkin, R., Patankar, M., Campagnola, P. J. Imaging collagen alterations in STICs and high grade ovarian cancers in the fallopian tubes by second harmonic generation microscopy. Cancers. 11 (11), 1805 (2019).
  32. Hu, C., et al. Imaging collagen properties in the uterosacral ligaments of women with pelvic organ prolapse using spatial light interference microscopy (SLIM). Frontiers in Physics. 7, 72 (2019).
  33. Guirado, E., et al. Disrupted protein expression and altered proteolytic events in hypophosphatemic dentin can be rescued by dentin matrix protein 1. Frontiers in Physiology. 11, 82 (2020).
  34. Kiss, N., et al. Quantitative analysis on ex vivo nonlinear microscopy images of basal cell carcinoma samples in comparison to healthy skin. Pathology & Oncology Research. 25 (3), 1015-1021 (2019).
  35. Lewis, D. M., et al. Collagen fiber architecture regulates hypoxic sarcoma cell migration. ACS Biomaterials Science & Engineering. 4 (2), 400-409 (2018).
  36. Moura, C. C., Bourdakos, K. N., Tare, R. S., Oreffo, R. O., Mahajan, S. Live-imaging of Bioengineered Cartilage Tissue using Multimodal Non-linear Molecular Imaging. Scientific Reports. 9 (1), 1-9 (2019).
  37. Murtada, S. I., et al. Paradoxical aortic stiffening and subsequent cardiac dysfunction in Hutchinson-Gilford progeria syndrome. Journal of The Royal Society Interface. 17 (166), 0066 (2020).
  38. Nichol, R. H., Catlett, T. S., Onesto, M. M., Hollender, D., Gómez, T. M. Environmental elasticity regulates cell-type specific RHOA signaling and neuritogenesis of human neurons. Stem Cell Reports. 13 (6), 1006-1021 (2019).
  39. Pointer, K. B., et al. Association of collagen architecture with glioblastoma patient survival. Journal of Neurosurgery. 126 (6), 1812-1821 (2016).
  40. Razavi, M. S., Leonard-Duke, J., Hardie, B., Dixon, J. B., Gleason, R. L. Axial stretch regulates rat tail collecting lymphatic vessel contractions. Scientific Reports. 10 (1), 1-11 (2020).
  41. Xue, Y., et al. Valve leaflet-inspired elastomeric scaffolds with tunable and anisotropic mechanical properties. Polymers for Advanced Technologies. 31 (1), 94-106 (2020).
  42. Zhou, Z. H., et al. Reorganized collagen in the tumor microenvironment of gastric cancer and its association with prognosis. Journal of Cancer. 8 (8), 1466 (2017).
  43. Zinn, A., et al. The small GTPase RhoG regulates microtubule-mediated focal adhesion disassembly. Scientific Reports. 9 (1), 1-15 (2019).
  44. Zwaans, B. M., et al. Radiation cystitis modeling: A comparative study of bladder fibrosis radio-sensitivity in C57BL/6, C3H, and BALB/c mice. Physiological Reports. 8 (4), (2020).
  45. Devine, E. E., Liu, Y., Keikhosravi, A., Eliceiri, K. W., Jiang, J. J. Quantitative second harmonic generation imaging of leporine, canine, and porcine vocal fold collagen. The Laryngoscope. 129 (11), 2549-2556 (2019).
  46. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  47. Zeitoune, A. A., et al. Epithelial ovarian cancer diagnosis of second-harmonic generation images: A semiautomatic collagen fibers quantification protocol. Cancer Informatics. 16, (2017).
  48. Wershof, E., et al. Matrix feedback enables diverse higher-order patterning of the extracellular matrix. PLoS Computational Biology. 15 (10), 1007251 (2019).
  49. Mostaço-Guidolin, L. B., et al. Fractal dimension and directional analysis of elastic and collagen fiber arrangement in unsectioned arterial tissues affected by atherosclerosis and aging. Journal of Applied Physiology. 126 (3), 638-646 (2019).
  50. Thain, D., Tannenbaum, T., Livny, M. Distributed computing in practice: the Condor experience. Concurrency and Computation: Practice and Experience. 17 (2-4), 323-356 (2005).
check_url/61931?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liu, Y., Eliceiri, K. W. Quantifying Fibrillar Collagen Organization with Curvelet Transform-Based Tools. J. Vis. Exp. (165), e61931, doi:10.3791/61931 (2020).

View Video