Summary

कोशिकाओं को आणविक यौगिकों के उन्नत वितरण के लिए एक Acoustofluidic डिवाइस का असेंबली और संचालन

Published: January 21, 2021
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल अल्ट्रासाउंड कंट्रास्ट एजेंटों द्वारा प्रेरित सोनोपोरेशन के माध्यम से कोशिकाओं को तेजी से आणविक वितरण के लिए कम लागत वाले एसीटोफ्लुइडिक डिवाइस की असेंबली और संचालन का वर्णन करता है।

Abstract

जैव अणुओं की कुशल इंट्रासेलुलर डिलीवरी जैव चिकित्सा अनुसंधान और सेल आधारित चिकित्सीय अनुप्रयोगों की एक विस्तृत श्रृंखला के लिए आवश्यक है। अल्ट्रासाउंड-मध्यस्थता सोनोपोरेशन बायोमॉलिक्यूल्स के तेजी से इंट्रासेलुलर डिलीवरी के लिए एक उभरती हुई तकनीक है। सोनोपोरेशन तब होता है जब गैस से भरे माइक्रोबबल्स का कैविटेशन पास के कोशिका झिल्ली में क्षणिक छिद्र बनाता है, जो आसपास के तरल पदार्थ से जैव अणुओं के तेजी से तेज करने में सक्षम बनाता है। निलंबन में कोशिकाओं के इन विट्रो सोनोपोरेशन के लिए वर्तमान तकनीक धीमी थ्रूपुट, प्रत्येक कोशिका के लिए अल्ट्रासाउंड जोखिम स्थितियों में परिवर्तनशीलता, और उच्च लागत से सीमित हैं। इन सीमाओं को संबोधित करने के लिए, एक कम लागत वाला एसीटोफ्लुइडिक डिवाइस विकसित किया गया है जो पीडीएमएस-आधारित तरल उपकरण में अल्ट्रासाउंड ट्रांसड्यूसर को एकीकृत करता है ताकि कोशिकाओं के लगातार सोनोरेशन को प्रेरित किया जा सके क्योंकि वे अल्ट्रासाउंड कंट्रास्ट एजेंटों के संयोजन में चैनलों के माध्यम से प्रवाहित होते हैं। डिवाइस पीडीएमएस आधारित तरल चिप का उत्पादन करने के लिए मानक फोटोलिथोग्राफी तकनीकों का उपयोग करके निर्मित है। एक अल्ट्रासाउंड पीजो डिस्क ट्रांसड्यूसर डिवाइस से जुड़ा होता है और माइक्रोकंट्रोलर द्वारा संचालित होता है। असेंबली को अतिरिक्त सुरक्षा के लिए 3 डी-मुद्रित मामले के अंदर एकीकृत किया जा सकता है। कोशिकाओं और माइक्रोबबल्स को सिरिंज पंप या पीवीसी ट्यूबिंग से जुड़े पेरिस्टाल्टिक पंप का उपयोग करके डिवाइस के माध्यम से धक्का दिया जाता है। मानव टी कोशिकाओं और फेफड़ों के कैंसर की कोशिकाओं को जैव अणुओं की बढ़ी हुई डिलीवरी इस एसीटोफ्लुइडिक सिस्टम के साथ प्रदर्शित की जाती है। थोक उपचार दृष्टिकोणों की तुलना में, यह एसी्टोफ्लुइडिक सिस्टम थ्रूपुट बढ़ाता है और परिवर्तनशीलता को कम करता है, जो जैव चिकित्सा अनुसंधान अनुप्रयोगों और सेल आधारित चिकित्सीय के विनिर्माण के लिए सेल प्रसंस्करण विधियों में सुधार कर सकता है।

Introduction

कोशिकाओं को आणविक वितरण को बढ़ाने के लिए वायरल और गैर-वायरल प्लेटफार्मों का उपयोग किया गया है। वायरल डिलीवरी (ट्रांसडक्शन) एक आम तकनीक है जो कोशिका-आधारित उपचारों में उपयोग की जाती है जिसमें जीनोमिक संशोधन की आवश्यकता होती है। वायरल डिलीवरी के साथ सीमाओं में संभावित सम्मिलनीय म्यूटेनेसिस, सीमित ट्रांसजेनिक क्षमता, और संक्रमण की अवांछित बहुलता1,2शामिल हैं। इसलिए, गैर वायरल आणविक वितरण तकनीक जैव चिकित्सा और अनुसंधान अनुप्रयोगों की एक विस्तृत श्रृंखला के लिए विकास में हैं। सामान्य तकनीकों में यांत्रिक, विद्युत, हाइड्रोडायनामिक, या कोशिकाओं में जैव अणुओं के तेज को बढ़ाने के लिए लेजर-आधारित ऊर्जा का उपयोग शामिल है 3। इलेक्ट्रोपॉलपेशन एक आमतौर पर उपयोग किया जाने वाला गैर- वायरल आणविक वितरण मंच है जिसमें आणविक यौगिकों 4 ,5 ,6,7,8,9केइंट्रासेलुलर डिलीवरी के लिए प्लाज्मा झिल्ली में क्षणिक छिद्र को प्रेरित करने की क्षमता है। हालांकि, प्लाज्मा झिल्ली का क्षणिक छिद्र एक स्टोचस्टिक प्रक्रिया है और इलेक्ट्रोपॉशन के माध्यम से आणविक तेज आम तौर पर क्षणिक झिल्ली छिद्रों में निष्क्रिय प्रसार पर निर्भर करता है4,7,8.

एक वैकल्पिक विधि अल्ट्रासाउंड कंट्रास्ट एजेंटों (यानी गैस से भरे माइक्रोबबल्स) के कैविटेशन के माध्यम से बढ़ी हुई इंट्रासेलुलर आणविक वितरण के लिए अल्ट्रासाउंड का उपयोग है। माइक्रोबबल कैविटेशन आसपास के मीडिया में माइक्रोस्ट्रीमिंग प्रभाव पैदा करता है जो पास के प्लाज्मा झिल्ली (“सोनोपोरेशन”) के क्षणिक छिद्र का कारण बन सकता है, जिससेनिष्क्रिय या सक्रिय परिवहन तंत्र10, 11,12के माध्यम से जैव अणुओं के तेजी से अंतरकोशिकीय तेज होने की अनुमति मिल सकती है। सोनोपोरेशन कोशिकाओं को तेजी से आणविक वितरण के लिए एक प्रभावी तकनीक है, लेकिन इस दृष्टिकोण में अक्सर महंगे उपकरण और थोक उपचार विधियों की आवश्यकता होती है जो कम थ्रूपुट और अल्ट्रासाउंड एक्सपोजर स्थितियों में उच्च परिवर्तनशीलता से सीमित हैं13। इन सीमाओं को संबोधित करने के लिए, एसीओस्टोफ्लुइडिक उपकरण, जो निलंबन में कोशिकाओं के लगातार सोनोपोरेशन को सक्षम करते हैं, वर्तमान में विकास में हैं।

Acoustofluidics एक विस्तार क्षेत्र है जो विभिन्न प्रकार के अनुप्रयोगों के लिए अल्ट्रासाउंड और माइक्रोफ्लुइडिक प्रौद्योगिकियों को एकीकृत करता है। इस दृष्टिकोण का उपयोग पहले कण पृथक्करण के लिए किया जाता रहा है ताकितरलचैनलों 14 , 15, 16,17के भीतर खड़ी ध्वनिक तरंगों को प्रेरित करने के लिए निरंतर अल्ट्रासाउंड ऊर्जा लागू की जा सके । कणों को विभिन्न गुणों जैसे कणों के आकार, घनत्व और मध्यम16के सापेक्ष संपीड़न के आधार पर डिवाइस के विभिन्न हिस्सों की ओर क्रमबद्ध किया जाता है। 18अनुसंधान अनुप्रयोगों और सेल चिकित्सा के निर्माण के लिए विभिन्न प्रकार के सेल प्रकारों में तेजी से आणविक वितरण को सक्षम करने के लिए एसीटोफ्लुइडिक प्रौद्योगिकियों का भी विकास हो रहा है । हाल ही में, हमने पीडीएमएस-आधारित एसीस्टोफ्लुइडिक डिवाइस19का उपयोग करके एरिथ्रोसाइट्स को बढ़ी हुई आणविक वितरण का प्रदर्शन किया। एसीओस्टोफ्लुइडिक प्लेटफॉर्म में, सेल और माइक्रोबबल गतिशीलता को शारीरिक बातचीत के लिए प्रेरित करने के लिए हेरफेर किया जा सकता है जो बायोमॉलिक्यूल्स के उन्नत वितरण को सक्षम करता है। कोशिकाओं और माइक्रोबबल्स के बीच की दूरी को अनुकूलित करके इंट्रासेलुलर आणविक वितरण की दक्षता और स्थिरता को संभावित रूप से बढ़ाया जा सकता है।

एसीटोफ्लुइडिक-मध्यस्थता सोनोपोरेशन के लिए एक महत्वपूर्ण आवेदन में प्राथमिक मानव टी कोशिकाओं में जैव अणुओं का परिवहन शामिल है। दत्तक टी सेल हस्तांतरण पर आधारित इम्यूनोथेरपी, जैसे चिमरिक एंटीजन रिसेप्टर टी सेल (कार टी) थेरेपी, कैंसर और एचआईवी20जैसे वायरस सहित विभिन्न बीमारियों के उपचार के लिए तेजी से उभर रहे हैं । कार टी थेरेपी बाल चिकित्सा तीव्र लिंफोब्लास्टिक ल्यूकेमिया (सभी) रोगियों में विशेष रूप से प्रभावी रहा है, 70-90%21की पूरी छूट दर के साथ । हालांकि, इन उपचारों के लिए टी सेल विनिर्माण आम तौर पर वायरल ट्रांसडक्शन पर निर्भर करता है जो संभावित सम्मिलनीय म्यूटेनेसिस, लंबे प्रसंस्करण समय और प्रोटीन या छोटे अणुओं जैसे गैर-आनुवंशिक जैव अणुओं को वितरित करने की चुनौतियों से सीमित है1। Acoustofluidic-मध्यस्थता आणविक वितरण विधियों संभावित इन सीमाओं को दूर करने और टी सेल चिकित्सा के निर्माण में सुधार कर सकते हैं ।

एसी्टोस्टिविक-मध्यस्थता सोनोपोरेशन के लिए एक अन्य महत्वपूर्ण आवेदन में परिरक्षक यौगिकों की इंट्रासेलर डिलीवरी शामिल है, जैसे ट्रेहालोस, जो ठंड और डिसिकेशन के दौरान कोशिकाओं की रक्षा करते हैं। ट्रेहलोज प्रकृति के कुछ जीवों द्वारा उत्पन्न होता है और वे अपनी सेलुलर झिल्ली की रक्षा करके ठंड और आनंद को सहन करने में मदद करता है22,23. हालांकि, ट्रेहलोस स्तनधारी कोशिकाओं द्वारा उत्पादित नहीं होता है और स्तनधारी कोशिका झिल्ली के लिए अभेद्य है। इसलिए, आंतरिक सेलुलर झिल्ली की रक्षा के लिए आवश्यक पर्याप्त इंट्रासेलुलर ट्रेहलोस स्तर प्राप्त करने के लिए सोनोपोरेशन जैसी प्रभावी आणविक वितरण तकनीकें आवश्यक हैं। यह दृष्टिकोण वर्तमान में विभिन्न सेल प्रकारों के शुष्क संरक्षण के लिए विकास में है।

यह प्रोटोकॉल एक माइक्रोकंट्रोलर द्वारा संचालित अपेक्षाकृत कम लागत वाली एसीओटोफ्लुइडिक प्रणाली के असेंबली और संचालन का विस्तृत विवरण प्रदान करता है। अल्ट्रासाउंड कंट्रास्ट एजेंटों का उपयोग तरल चैनलों के भीतर सोनोपोरेशन को प्रेरित करने और टी कोशिकाओं और कैंसर कोशिकाओं सहित विभिन्न सेल प्रकारों में तेजी से आणविक वितरण को सक्षम करने के लिए किया जाता है। इस एसीटोफ्लुइडिक सिस्टम का उपयोग विभिन्न प्रकार के शोध अनुप्रयोगों के लिए किया जा सकता है और बेहतर सेल थेरेपी विनिर्माण प्रक्रियाओं के लिए सोनोपोरेशन विधियों का मूल्यांकन करने के लिए प्रोटोटाइप प्रणाली के रूप में भी उपयोगी हो सकता है।

Protocol

लुइसविले विश्वविद्यालय में संस्थागत समीक्षा बोर्ड द्वारा अनुमोदित प्रोटोकॉल के बाद स्वस्थ दाताओं से पूरे रक्तदान एकत्र किए गए थे । 1. एसीटोफ्लुइडिक डिवाइस का निर्माण 500 माइक्रोन …

Representative Results

3डी-प्रिंटेड केस के अंदर इकट्ठे हुए एसीओस्टोफ्लुइडिक सिस्टम की एक छवि चित्र 1में दिखाई गई है। यह प्रोटोकॉल एक एसी्टोस्टोफ्लुइडिक सिस्टम का उत्पादन करता है जिसका उपयोग अल्ट्रासाउंड कंट्रा…

Discussion

यह प्रोटोकॉल एक कम लागत वाली एसीकोफ्लुइडिक प्रणाली के असेंबली और संचालन का वर्णन करता है जो अनुसंधान अनुप्रयोगों के लिए जैव अणुओं के इंट्रासेलुलर डिलीवरी को बढ़ाता है। इस प्रणाली को कोडांतरण और संचा…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को नेशनल साइंस फाउंडेशन (#1827521, #1827521, #1450370) और नेशनल इंस्टीट्यूट ऑफ हेल्थ (U01HL127518) से फंडिंग करके भाग में समर्थन दिया गया था । यूनिवर्सिटी ऑफ लुइसविले माइक्रो/नैनो टेक्नोलॉजी सेंटर द्वारा फोटोलिथोग्राफी सेवाएं प्रदान की गईं ।

Materials

Fabrication of Acoustofluidic Device
DOW SYLGARD 184 SILICONE ENCAPSULANT CLEAR 0.5 KG KIT Ellsworth Adhesives 4019862 (SKU) https://www.ellsworth.com/products/by-market/consumer-products/encapsulants/silicone/dow-sylgard-184-silicone-encapsulant-clear-0.5-kg-kit/
Harris Uni-Core (2.5 mm) Electron Microscopy Sciences 69039-25
Microfluidic Reservoir for 15 mL Falcon Tube – S (2/4 port) Darwin Microfluidics LVF-KPT-S-2 (SKU) https://darwin-microfluidics.com/products/15-ml-falcon-tube-microfluidic-reservoir-s-2-4-port
Microscope Slide VWR 16004-430 https://us.vwr.com/store/product/4646174/vwr-vistavisiontm-microscope-slides-plain-and-frosted-premium
trichlorosilane Gelest 105732-02-3 (Cas. No.) Chlorosilane is very hazaradous and flammable. Exposure causes severe burns and eye damage. 
Tygon PVC soft plastic tubing (1/16" ID, 1/8" OD) McMaster-Carr 5233K51 (Part #) https://www.mcmaster.com/pvc-tubing/soft-tubing-for-air-and-water/
Assembly of Acoustofluidic System
Arduino Uno Arduino 7630049200050 (Barcode) https://store.arduino.cc/usa/arduino-uno-rev3
Preparation of Ultrasound Contrast Agents
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-ethylphosphocholine (DSEPC) Avanti Lipids 890703P-25mg (SKU) https://avantilipids.com/product/890703
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DSPC) Avanti Lipids 850365P-25mg (SKU) https://avantilipids.com/product/850365
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoglycerol (DSPG) Avanti Lipids 840465P-25mg (SKU) https://avantilipids.com/product/840465
APF-140HP (decafluorobutate gas) FlouroMed 355-25-9 (Cas No.) http://www.fluoromed.com/products/perfluorodecalin/
DB-338 Amalgamators  COXO https://www.coxotec.com/coxo/db-338-amalgamators/
polyoxyethylene 40 stearate  Sigma-Aldrich P3440-250G (SKU) https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3440?lang=en&region=US&gclid=
Cj0KCQjwy8f6BRC7ARIsAPIXOjjj
Jh_151mYVEUyLZRavt4re9YQMLS
vID64X-1KbO3LUKGjVUwb
PDAaAqvOEALw_wcB
Q125 Sonicator Qsonica Q125-110 (Ref.) https://www.sonicator.com/products/q125-sonicator?_pos=1&_sid=406df3776&_ss=r
Preparation of Primarty T Cells
autoMACs running buffer Miltenyi Biotec 130-091-221 (Order No.) https://www.miltenyibiotec.com/US-en/products/automacs-running-buffer-macs-separation-buffer.html#gref
Pan T Cell Isolation Kit, human (Pan T-Cell Biotin Antibody Cocktail & Pan T-Cell MicroBead Cocktail)  Miltenyi Biotec 130-096-535 (Order No.) https://www.miltenyibiotec.com/US-en/products/pan-t-cell-isolation-kit-human.html#130-096-535
magnetic cell sorter (autoMACS Pro Separator) Miltenyi Biotec 130-092-545 (Order No.) https://www.miltenyibiotec.com/US-en/products/automacs-pro-separator-starter-kit.html#130-092-545
Preparation of A549 Lung Cancer Cells
Trehalose Assay Kit  Megazyme K-TREH (Cat. No.) https://www.megazyme.com/trehalose-assay-kit
Trypan blue (0.4% in aqueous solution Ready-to-Use, sterile) VWR 97063-702 (Cat. No.) https://us.vwr.com/store/product/7437427/trypan-blue-0-4-in-aqueous-solution-ready-to-use-sterile

References

  1. Gardlik, R., et al. Vectors and delivery systems in gene therapy. Medical Science Monitor. 11 (4), 110-121 (2005).
  2. Wahlers, A., et al. Influence of multiplicity of infection and protein stability on retroviral vector-mediated gene expression in hematopoietic cells. Gene Therapy. 8 (6), 477-486 (2001).
  3. Nayerossadat, N., Maedeh, T., Ali, P. A. Viral and nonviral delivery systems for gene delivery. Advanced Biomedical Research. 1, 27 (2012).
  4. Chen, C., Smye, S. W., Robinson, M. P., Evans, J. A. Membrane electroporation theories: a review. Medical & Biological Engineering & Computing. 44 (1-2), 5-14 (2006).
  5. Gehl, J. Electroporation: theory and methods, perspectives for drug delivery, gene therapy and research. Acta Physiologica Scandinavica. 177 (4), 437-447 (2003).
  6. Lin, Y. C., Li, M., Wu, C. C. Simulation and experimental demonstration of the electric field assisted electroporation microchip for in vitro gene delivery enhancement. Lab on a Chip. 4 (2), 104-108 (2004).
  7. Sugar, I. P., Neumann, E. Stochastic model for electric field-induced membrane pores. Electroporation. Biophysical Chemistry. 19 (3), 211-225 (1984).
  8. Weaver, J. C. Electroporation: a general phenomenon for manipulating cells and tissues. Journal of Cellular Biochemistry. 51 (4), 426-435 (1993).
  9. Hashimoto, M., Takemoto, T. Electroporation enables the efficient mRNA delivery into the mouse zygotes and facilitates CRISPR/Cas9-based genome editing. Scientific Reports. 5, 11315 (2015).
  10. Klibanov, A. L. Microbubble contrast agents: targeted ultrasound imaging and ultrasound-assisted drug-delivery applications. Investigative Radiology. 41 (3), 354-362 (2006).
  11. Klibanov, A. L., Shevchenko, T. I., Raju, B. I., Seip, R., Chin, C. T. Ultrasound-triggered release of materials entrapped in microbubble-liposome constructs: a tool for targeted drug delivery. Journal of Controlled Release. 148 (1), 13-17 (2010).
  12. Fan, Z., Kumon, R. E., Deng, C. X. Mechanisms of microbubble-facilitated sonoporation for drug and gene delivery. Therapeutic Delivery. 5 (4), 467-486 (2014).
  13. Secomski, W., et al. In vitro ultrasound experiments: Standing wave and multiple reflections influence on the outcome. Ultrasonics. 77, 203-213 (2017).
  14. Gedge, M., Hill, M. Acoustofluidics 17: theory and applications of surface acoustic wave devices for particle manipulation. Lab on a Chip. 12 (17), 2998-3007 (2012).
  15. Shi, J., et al. Acoustic tweezers: patterning cells and microparticles using standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 9 (20), 2890-2895 (2009).
  16. Shi, J., Huang, H., Stratton, Z., Huang, Y., Huang, T. J. Continuous particle separation in a microfluidic channel via standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 9 (23), 3354-3359 (2009).
  17. Shields, C. W. t., Cruz, D. F., Ohiri, K. A., Yellen, B. B., Lopez, G. P. Fabrication and operation of acoustofluidic devices supporting bulk acoustic standing waves for sheathless focusing of particles. Journal of Visualized Experiments. (109), e53861 (2016).
  18. Belling, J. N., et al. Acoustofluidic sonoporation for gene delivery to human hematopoietic stem and progenitor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 117 (20), 10976-10982 (2020).
  19. Centner, C. S., et al. Ultrasound-induced molecular delivery to erythrocytes using a microfluidic system. Biomicrofluidics. 14 (2), 024114 (2020).
  20. Qi, J., Ding, C., Jiang, X., Gao, Y. Advances in developing CAR T-cell therapy for HIV cure. Frontiers in Immunology. 11, 361 (2020).
  21. Annesley, C. E., Summers, C., Ceppi, F., Gardner, R. A. The evolution and future of CAR T cells for B-Cell Acute lymphoblastic leukemia. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 103 (4), 591-598 (2018).
  22. Hand, S. C., Menze, M. A. Molecular approaches for improving desiccation tolerance: insights from the brine shrimp Artemia franciscana. Planta. 242 (2), 379-388 (2015).
  23. Zhang, M., et al. Freeze-drying of mammalian cells using trehalose: preservation of DNA integrity. Scientific Reports. 7 (1), 6198 (2017).
  24. Grievink, H. W., Luisman, T., Kluft, C., Moerland, M., Malone, K. E. Comparison of three isolation techniques for human peripheral blood mononuclear cells: Cell recovery and viability, population composition, and cell functionality. Biopreserv Biobank. 14 (5), 410-415 (2016).
  25. Jaatinen, T., Laine, J. Isolation of mononuclear cells from human cord blood by Ficoll-Paque density gradient. Current Protocol in Stem Cell Biology. , (2007).
  26. Ulmer, A. J., Scholz, W., Ernst, M., Brandt, E., Flad, H. D. Isolation and subfractionation of human peripheral blood mononuclear cells (PBMC) by density gradient centrifugation on Percoll. Immunobiology. 166 (3), 238-250 (1984).
  27. Halldorsson, S., Lucumi, E., Gomez-Sjoberg, R., Fleming, R. M. T. Advantages and challenges of microfluidic cell culture in polydimethylsiloxane devices. Biosensors and Bioelectronics. 63, 218-231 (2015).
  28. Helfield, B., Chen, X., Watkins, S. C., Villanueva, F. S. Biophysical insight into mechanisms of sonoporation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (36), 9983-9988 (2016).
  29. Hu, Y., Wan, J. M., Yu, A. C. Membrane perforation and recovery dynamics in microbubble-mediated sonoporation. Ultrasound in Medicine and Biology. 39 (12), 2393-2405 (2013).
  30. Kopechek, J. A., et al. Ultrasound targeted microbubble destruction-mediated delivery of a transcription factor decoy inhibits STAT3 signaling and tumor growth. Theranostics. 5 (12), 1378-1387 (2015).
  31. Bhutto, D. F., et al. Effect of molecular weight on sonoporation-mediated uptake in human cells. Ultrasound in Medical Biology. 44 (12), 2662-2672 (2018).
  32. Forbes, M. M., Steinberg, R. L., O’Brien, W. D. Frequency-dependent evaluation of the role of definity in producing sonoporation of Chinese hamster ovary cells. Journal of Ultrasound in Medicine. 30 (1), 61-69 (2011).
  33. Helfield, B., Chen, X., Watkins, S. C., Villanueva, F. S. Biophysical insight into mechanisms of sonoporation. Proceedings of National Academy of Science U. S. A. 113 (36), 9983-9988 (2016).
  34. Miller, D. L., Bao, S., Morris, J. E. Sonoporation of cultured cells in the rotating tube exposure system. Ultrasound in Medical Biology. 25 (1), 143-149 (1999).

Play Video

Cite This Article
Centner, C. S., Murphy, E. M., Stamp, B. F., Priddy, M. C., Moore, J. T., Bates, P. J., Menze, M. A., Yaddanapudi, K., Kopechek, J. A. Assembly and Operation of an Acoustofluidic Device for Enhanced Delivery of Molecular Compounds to Cells. J. Vis. Exp. (167), e62035, doi:10.3791/62035 (2021).

View Video