Summary

ניתוח יעיל ותרבות של תאי אפיתל פיגמנט רשתית העכבר הראשי

Published: February 10, 2021
doi:

Summary

פרוטוקול זה, אשר דווח במקור על ידי פרננדז-Godino ואח ‘. בשנת 20161, מתאר שיטה לבודד ביעילות ותרבות העכבר RPE תאים, אשר יוצרים מונולייר RPE פונקציונלי מקוטב בתוך שבוע על לוחות Transwell. ההליך לוקח בערך 3 שעות.

Abstract

הפרעות עיניים משפיעות על מיליוני אנשים ברחבי העולם, אבל הזמינות המוגבלת של רקמות אנושיות מעכבת את המחקר שלהם. מודלים עכבר הם כלים רבי עוצמה כדי להבין את הפתופיזיולוגיה של מחלות עיניים בגלל הדמיון שלהם עם אנטומיה אנושית ופיזיולוגיה. שינויים באפיתל פיגמנט הרשתית (RPE), כולל שינויים במורפולוגיה ובתפקוד, הם תכונות נפוצות המשותפות להפרעות עיניים רבות. עם זאת, בידוד ותרבות מוצלחים של תאי RPE של העכבר הראשי הוא מאתגר מאוד. מאמר זה הוא גרסה אורקולית מעודכנת של הפרוטוקול שפורסם בעבר על ידי פרננדז-Godino ואח ‘. בשנת 2016 כדי לבודד ביעילות ותרבות תאי RPE העכבר הראשי. שיטה זו היא מאוד לשחזור ותוצאות תרבויות חזקות של מונוליירים RPE מקוטב מאוד פיגמנטים שניתן לשמור במשך מספר שבועות על Transwells. מודל זה פותח אפיקים חדשים לחקר המנגנונים המולקולריים והתאית שבבסיס מחלות עיניים. יתר על כן, הוא מספק פלטפורמה לבדיקת גישות טיפוליות שניתן להשתמש בהן לטיפול במחלות עיניים חשובות עם צרכים רפואיים בלתי פוסקים, כולל הפרעות רשתית תורשתיות וניוונות מקולריים.

Introduction

פרוטוקול זה, אשר דווח במקור על ידי פרננדז-Godino ואח ‘. בשנת 20161, מתאר שיטה לבודד ביעילות ותרבות עכבר רשתית פיגמנט תאים (RPE), אשר יוצרים מונולאייר RPE פונקציונלי מקוטב בתוך שבוע על צלחות Transwell. RPE הוא מונולייר הממוקם בעין בין הרשתית העצבית לקרום של ברוך. שכבה אחת זו מורכבת מתאי אפיתל מקוטבים ופיגמנטיים מאוד אליהם מצטרפים צמתים הדוקים, המציגים צורה משושה הדומה חלת דבש2. למרות הפשטות ההיסטולוגית לכאורה, RPE מבצע מגוון רחב של פונקציות קריטיות הרשתית ואת מחזור הראייה הרגיל2,3,4. הפונקציות העיקריות של המונולאייר RPE כוללות ספיגת אור, הזנה וחידוש של פוטורצפטורים, הסרת מוצרי קצה מטבוליים, שליטה על הומאוסטזיס יון בחלל subretinal ותחזוקה של מחסום רשתית הדם2,3. RPE יש גם תפקיד חשוב אפנון מקומי של המערכת החיסונית בעין5,6,7,8,9,10,11. ניוון ו/או תפקוד לקוי של RPE הם תכונות נפוצות המשותפות להפרעות עיניים רבות כגון רטיניטיס פיגמנטוזה, לאבר אמורוזיס מולד, לבקנות, רטינופתיה סוכרתית, ניוון מקולרי12,13,14,15. למרבה הצער, הזמינות של רקמות אנושיות מוגבלת. בהתחשב בהומולוגיה הגנטית השמורה ביותר שלהם עם בני אדם, מודלים של עכברים מייצגים כלי מתאים ושימושי לחקר הפרעות עיניים16,17,18,19. יתר על כן, השימוש בתאי RPE ראשוניים תרבותיים מספק יתרונות כגון מניפולציה גנטית ובדיקות סמים שיכולים להאיץ את הפיתוח של טיפולים חדשים עבור הפרעות אלה מאיים ראייה9,11.

שיטות קיימות הזמינות עבור בידוד RPE העכבר ותרבות חסרים לשכפל ולא לשחזר את תכונות RPE ב vivo עם אמינות מספיק. תאים נוטים לאבד פיגמנטציה, צורה משושה והתנגדות חשמלית transepithelial (TER) בתוך כמה ימים בתרבות13,20. מאז הקמת אלה תרביות תא RPE העיקרי מעכברים הוא תהליך מאתגר, פרוטוקול זה אופטימיזציה נוצרה בהתבסס על פרוטוקולים אחרים כדי לבודד תאי RPE מחולשה ועיניים אנושיות21,22,23 כדי לנתח את עיני העכבר, לאסוף את RPE ותרבות תאי RPE העכבר במבחנה.

Protocol

ההנחיות של הצהרת ARVO לשימוש בבעלי חיים במחקר עיניים וחזון בוצעו. הערה: שיטה זו הוכחה כמוצלחת עם עכברים מרקעים גנטיים שונים, כולל C57BL/6J, B10. D2-Hco H2d H2-T18c/ oSnJ, ועכברים לבקנים, בגילאים שונים. עדיף להשתמש בעכברים בני 8 עד 12 שבועות כדי להשיג תאי RPE. תאי RPE מעכברים מבוגרים…

Representative Results

פרוטוקול זה שימש לבידוד ותרבות תאי RPE מעכברים מהונדסיםגנטית 1. לא נצפו הבדלים בין זני עכבר או מין. התוצאות עזרו להבין כמה היבטים חשובים של המנגנון שבבסיס מחלות עיניים כגון ניוון מקולרי הקשור לגיל, שהוא הגורם השכיח ביותר לאובדן ראייה בקרב קשישים9. תאי RPE מבודדים בעק?…

Discussion

בעוד מספר שיטות עבור העכבר RPE בידוד ותרבות התאים פותחו לפני1,13,20,22,26,27, השיטה של פרננדז-גודינו השתמשה לראשונה מוסיף ממברנה המאפשר צמיחה יעילה של תאי RPE בתרבות במשך שבועות1</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מכון גנומיקה עינית במסצ’וסטס עין ואוזן.

Materials

10 ml BD Luer-Lok tip syringe, disposable BD Biosciences 309604
15 ml centrifuge tube VWR International 21008-103
50 ml centrifuge tube VWR International 21008-951
Alpha Minimum Essential Medium Sigma-Aldrich M4526-500ML
Angled micro forceps WPI 501727
Bench-top centrifuge any
CO2 incubator Thermo HERA VIOS 160I CO2 SST TC 120V
Dissecting microscope Any
Dulbecco’s Phospate Buffered Saline no Calcium, no Magnesium Gibco 14190144
Dumont #5 45° Medical Biology tweezers, 0.05 x 0.01 mm tip, 11 cm length WPI 14101
Ethanol Sigma-Aldrich E7023-500ML
Falcon Easy-Grip Clear Polystyrene Cell Culture Dish, 35mm BD Biosciences 353001
Fetal Bovine Serum Hyclone SH30071.03 Heat inactivated.
Hank’s Balanced Salt Solution plus Calcium and Magnesium, no Phenol Red Life Technologies 14175095
Hank’s Balanced Salt Solution plus Calcium and Magnesium, no Phenol Red B6 Life Technologies 14025092
HEPES 1M Gibco 15630106
Hyaluronidase Sigma-Aldrich H-3506 1G
Hydrocortisone Sigma-Aldrich H-0396
Laminar flow hood Thermo CLASS II A2 4 115V PACKAGECLA
Laminin 1mg/ml Sigma-Aldrich L2020-1 MG Dilute in PBS at 37C to 1mg/ml
McPherson-Vannas Micro Scissors 8 cm long WPI 503216
Non-essential amino acids 100X Gibco 11140050
N1 Supplement 100X Sigma-Aldrich N6530-5ML
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-148
Sterile Bard-Parker Carbon steel surgical blade size 11 Fisher-Scientific 08-914B
Taurine Sigma-Aldrich T-0625
Tissue culture treated 12-well plates Fisher-Scientific 08-772-29
Tissue culture treated 6-well plates Fisher-Scientific 14-832-11
Transwell supports 6.5 mm Sigma-Aldrich CLS3470-48EA
Triiodo-thyronin Sigma-Aldrich T-5516
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Gibco 25200056
Tweezer, Dumont #5 Medical Biology 11 cm, curved, stainless steel 0.02 x 0.06 mm Mod tips WPI 500232
Vannas Scissors 8cm long, stainless steel WPI 501790
Whatman Puradisc 25mm Syringe Filters 0.45μm pore size Fisher-Scientific 6780-2504

References

  1. Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. Isolation, culture and characterization of primary mouse RPE cells. Nature Protocols. 11 (7), 1206-1218 (2016).
  2. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiological Reviews. 85 (3), 845-881 (2005).
  3. Konari, K., et al. Development of the blood-retinal barrier in vitro: Formation of tight junctions as revealed by occludin and ZO-1 correlates with the barrier function of chick retinal pigment epithelial cells. Experimental Eye Research. 61 (1), 99-108 (1995).
  4. Kay, P., Yang, Y. C., Paraoan, L. Directional protein secretion by the retinal pigment epithelium: Roles in retinal health and the development of age-related macular degeneration. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 17 (7), 833-843 (2013).
  5. Johnson, L. V., Leitner, W. P., Staples, M. K., Anderson, D. H. Complement activation and inflammatory processes in drusen formation and age related macular degeneration. Experimental Eye Research. 73 (6), 887-896 (2001).
  6. Hageman, G. S., et al. An integrated hypothesis that considers drusen as biomarkers of immune-mediated processes at the RPE-Bruch’s membrane interface in aging and age-related macular degeneration. Progress in Retinal and Eye Research. 20 (6), 705-732 (2001).
  7. Lommatzsch, A., et al. Are low inflammatory reactions involved in exudative age-related macular degeneration. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 246 (6), 803-810 (2008).
  8. Bandyopadhyay, M., Rohrer, B. Matrix metalloproteinase activity creates pro-angiogenic environment in primary human retinal pigment epithelial cells exposed to complement. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (4), 1953-1961 (2012).
  9. Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. A local complement response by RPE causes early-stage macular degeneration. Human Molecular Genetics. 24 (19), 5555-5569 (2015).
  10. Fernandez-Godino, R., Bujakowska, K. M., Pierce, E. A. Changes in extracellular matrix cause RPE cells to make basal deposits and activate the alternative complement pathway. Human Molecular Genetics. 27 (1), 147-159 (2018).
  11. Fernandez-Godino, R., Pierce, E. A. C3a triggers formation of sub-retinal pigment epithelium deposits via the ubiquitin proteasome pathway. Scientific Reports. 8 (1), 1-14 (2018).
  12. Farkas, M. H., et al. Mutations in Pre-mRNA processing factors 3, 8, and 31 cause dysfunction of the retinal pigment epithelium. American Journal of Pathology. 184 (10), 2641-2652 (2014).
  13. Geisen, P., Mccolm, J. R., King, B. M., Hartnett, E. Characterization of Barrier Properties and Inducible VEGF Expression of Several Types of Retinal Pigment Epithelium in Medium-Term Culture. Current Eye Research. 31, 739 (2006).
  14. Schütze, C., et al. Retinal pigment epithelium findings in patients with albinism using wide-field polarization-sensitive optical coherence tomography. Retina. 34 (11), 2208-2217 (2014).
  15. Samuels, I. S., Bell, B. A., Pereira, A., Saxon, J., Peachey, N. S. Early retinal pigment epithelium dysfunction is concomitant with hyperglycemia in mouse models of type 1 and type 2 diabetes. Journal of Neurophysiology. 113 (4), 1085-1099 (2015).
  16. Garland, D. L., et al. Mouse genetics and proteomic analyses demonstrate a critical role for complement in a model of DHRD/ML, an inherited macular degeneration. Human Molecular Genetics. 23 (1), 52-68 (2014).
  17. Fu, L., et al. The R345W mutation in EFEMP1 is pathogenic and causes AMD-like deposits in mice. Human Molecular Genetics. 16 (20), 2411-2422 (2007).
  18. Greenwald, S. H., et al. Mouse Models of NMNAT1-Leber Congenital Amaurosis (LCA9) Recapitulate Key Features of the Human Disease. American Journal of Pathology. 186 (7), 1925-1938 (2016).
  19. Gupta, P. R., et al. Ift172 conditional knock-out mice exhibit rapid retinal degeneration and protein trafficking defects. Human Molecular Genetics. 27 (11), 2012-2024 (2018).
  20. Gibbs, D., Williams, D. S. Isolation and culture of primary mouse retinal pigmented epithelial cells. Advances in Experimental Medicine and Biology. 533, 347-352 (2003).
  21. Bonilha, V. L., Finnemann, S. C., Rodriguez-Boulan, E. Ezrin promotes morphogenesis of apical microvilli and basal infoldings in retinal pigment epithelium. Journal of Cell Biology. 147 (7), 1533-1547 (1999).
  22. Nandrot, E. F., et al. Loss of synchronized retinal phagocytosis and age-related blindness in mice lacking αvβ5 integrin. Journal of Experimental Medicine. 200 (12), 1539-1545 (2004).
  23. Maminishkis, A., et al. Confluent monolayers of cultured human fetal retinal pigment epithelium exhibit morphology and physiology of native tissue. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 47 (8), 3612-3624 (2006).
  24. Maminishkis, A., Miller, S. S. Experimental models for study of retinal pigment epithelial physiology and pathophysiology. Journal of Visualized Experiments. (45), (2010).
  25. Brydon, E. M., et al. AAV-Mediated Gene Augmentation Therapy Restores Critical Functions in Mutant PRPF31+/− iPSC-Derived RPE Cells. Molecular Therapy – Methods and Clinical Development. 15, 392-402 (2019).
  26. Shang, P., Stepicheva, N. A., Hose, S., Zigler, J. S., Sinha, D. Primary cell cultures from the mouse retinal pigment epithelium. Journal of Visualized Experiments. 2018 (133), (2018).
  27. Bonilha, V. Age and disease-related structural changes in the retinal pigment epithelium. Clinical Ophthalmology. 2 (2), 413 (2008).

Play Video

Cite This Article
Chinchilla, B., Getachew, H., Fernandez-Godino, R. Efficient Dissection and Culture of Primary Mouse Retinal Pigment Epithelial Cells. J. Vis. Exp. (168), e62228, doi:10.3791/62228 (2021).

View Video