Summary

Isolering af brune adipocytter fra murin interscapulært brunt fedtvæv til gen- og proteinekspressionsanalyse

Published: March 12, 2021
doi:

Summary

Denne undersøgelse beskriver en ny metode til isolering af murinbrune adipocytter til gen- og proteinekspressionsanalyse.

Abstract

Brunt fedtvæv (BAT) er ansvarlig for ikke-rystende termogenese hos pattedyr, og brune adipocytter (BA’er) er de funktionelle enheder af BAT. BA’er indeholder både multilokulære lipiddråber og rigelige mitokondrier, og de udtrykker afkobling af protein 1 (UCP1). BA’er er kategoriseret i to undertyper baseret på deres oprindelse: embryoafledte klassiske BA’er (cBA’er) og hvide adipocytter afledte BA’er. På grund af deres relativt lave densitet kan BA’er ikke isoleres fra BAT med traditionel centrifugeringsmetode. I denne undersøgelse blev der udviklet en ny metode til at isolere BA’er fra mus til gen- og proteinekspressionsanalyse. I denne protokol blev interscapular BAT fra voksne mus fordøjet med Collagenase og Dispase-opløsning, og de dissocierede BA’er blev beriget med 6% iodixanolopløsning. Isolerede BA’er blev derefter lyset med Trizol-reagens til samtidig isolering af RNA, DNA og protein. Efter RNA-isolering blev den organiske fase af lysatet anvendt til proteinekstraktion. Vores data viste, at 6% iodixanolopløsning effektivt berigede BA’er uden at forstyrre opfølgende gen- og proteinekspressionsundersøgelser. Trombocytafledt vækstfaktor (PDGF) er en vækstfaktor, der regulerer vækst og spredning af mesenkymale celler. Sammenlignet med det brune fedtvæv havde isolerede BA’er signifikant højere ekspression af Pdgfa. Sammenfattende giver denne nye metode en platform til at studere biologien af brune adipocytter på et enkelt celletypeniveau.

Introduction

Både mus og mennesker har to typer fedtvæv: hvidt fedtvæv (WAT) og brunt fedtvæv (BAT)1. WAT lagrer energi i form af triglycerider i hvide adipocytter, og de brune adipocytter (BA’er) af BAT spreder kemisk energi som varme2. Baseret på deres udviklingsmæssige oprindelse kategoriseres BA’er yderligere i klassiske BA’er (cBA’er), der dannes under embryoudvikling og hvide adipocytter afledte BA’er (beige / britceller, omdannet fra hvide adipocytter under stressforhold)3. BA’er er multilokulære og udtrykker det termogeniske proteinafkoblingsprotein 1 (UCP1)4. Interscapular BAT (iBAT) depot er et af de primære cBAs depoter i små pattedyr5, mens beige celler er spredt inden for WAT6.

På grund af deres karakter af at sprede energi har BA’er fået meget opmærksomhed som et terapeutisk mål for reduktion af fedme7. For at udnytte BA’er med det formål at behandle fedme er det vigtigt at forstå de molekylære mekanismer, der styrer BAs funktion, overlevelse og rekruttering. Fedtvæv, herunder BAT og WAT, er heterogene. Bortset fra adipocytter indeholder fedtvæv mange andre celletyper, såsom endotelceller, mesenkymale stamceller og makrofager8. Selvom genetiske værktøjer til specifikt at nedbryde kandidatgener i mus BA’er er tilgængelige, såsom UCP1::Cre linje9, er teknikker til rensning af BA’er fra BAT eller WAT begrænsede, hvilket gør det svært at studere BA’er på enkeltcelletypeniveau. Uden at opnå rene BA’er vil forholdet mellem BA’er og ikke-BA’er desuden ikke være klart afgrænset. For eksempel er blodpladeafledt vækstfaktorreceptor alfa (PDGFRα) blevet brugt som markør for udifferentierede mesenkymale celler, og det udtrykkes i endotel- og interstitielle celler i BAT. I koldstresset BAT giver PDGFRα-positive stamceller anledning til nye BA’er10. PDGFRα aktiveres af dets ligand PDGF, en vækstfaktor, der regulerer vækst og spredning af mesenkymale celler11; Det er imidlertid uklart, om BA’er påvirker adfærden af PDGFRα-positive stamceller ved at udskille PDGF.

For nylig er der offentliggjort en BAs-isolationsprotokol, som er baseret på fluorescensaktiveret cellesortering (FACS)12. I denne protokol blev 3% bovin serumalbumin (BSA) opløsning anvendt til at adskille BA’er fra ikke-BA’er, og de berigede BA’er blev yderligere renset af FACS. Anvendelsen af denne protokol er begrænset af kravet om FACS-proces, som er afhængig af både udstyr og FACS-driftserfaringer. I denne undersøgelse blev der udviklet en ny protokol til isolering af BA’er fra BAT. De BA’er, der er isoleret af denne protokol, kan anvendes direkte til gen- og proteinekspressionsundersøgelser. Desuden tyder data fra denne undersøgelse på, at BA’er er en vigtig PDGF-ressource.

Protocol

Alle mus blev opretholdt under patogenfrie forhold, og alle procedurer blev godkendt af Masonic Medical Research Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). UCP1::Cre9 og Rosa 26tdTomato mus linjer13 blev rapporteret tidligere. Alle mus blev holdt ved stuetemperatur med en 12 timers lys / mørk cyklus. 1. Forberedelse af opløsninger og brunt fedtvæv (BAT) Fordøjelsesopløsning og separationsopløsning fremstilles …

Representative Results

Forberedelse af interacapular BAT til isolering af brune adipocytterDen brune adipocytter (BA’er) isolationsproces er afbildet i figur 1A. Hele processen, fra fremstilling af BAT og fordøjelses- / separationsopløsninger til opnåelse af isolerede BA’er, vil tage omkring 4 timer. Hos voksne mus findes der rigelig BAT i det interscapulære område. Denne interscapular BAT (iBAT) er dækket af muskellag og WAT (figur 1B</st…

Discussion

I denne undersøgelse blev der udviklet en ny metode til isolering af BA’er til gen- og proteinekspressionsanalyse.

I en offentliggjort BAs-isolationsprotokol blev 3% BSA-opløsning brugt til at berige BA’er12. Ikke desto mindre kunne de berigede BA’er, der blev opnået ved denne offentliggjorte protokol, ikke anvendes direkte til proteinekspressionsanalyse. Dette skyldes, at den koncentrerede BSA, der findes i BAs-opløsningen, interfererer med opfølgende proteinekstr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Z. Lin blev støttet af National Institutes of Health HL138454-01 og Masonic Medical Research Institute midler.

Materials

Antibodies
Antigen Company Catalog
PPARγ LSBio Ls-C368478
PDGFRa Santa Cruz sc-398206
UCP1 R&D system IC6158P
Chemical and solutions
Collagenase, Type II Thermo Fisher Scientific 17101015
1-Bromo-3-chloropropane Sigma-Aldrich B62404
Bovine Serum Albumin (BSA)  Goldbio A-421-10
Calcium chloride Bio Basic CT1330
Chloroform IBI Scientific IB05040
Dispase II, protease Sigma-Aldrich D5693
EDTA Bio Basic EB0107
Ethanol IBI Scientific IB15724
LiQuant Universal Green qPCR Master Mix LifeSct LS01131905Y
Magnesium Chloride Hexahydrate Boston BioProducts P-855
OneScrip Plus cDNA Synthesis SuperMix ABM G454
OptiPrep (Iodixanol) Cosmo Bio USA AXS-1114542
PBS (10x) Caisson Labs PBL07
PBS (1x) Caisson Labs PBL06
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 23227
Potassium Chloride Boston BioProducts P-1435
SimplyBlue safe Stain Invitrogen LC6060
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma-Aldrich 75746
Trizol reagent Life technoologies 15596018
Primers
Gene name (Species)  Forward Reverse
Pdgfra (Mouse) CTCAGCTGTCTCCTCACAgG CAACGCATCTCAGAGAAAAGG
Pdgfa (Mouse) TGTGCCCATTCGCAGGAAGAG TTGGCCACCTTGACACTGCG
36B4(Mouse) TGCTGAACATCTCCCCCTTCTC TCTCCACAGACAATGCCAGGAC
Ucp1 ACTGCCACACCTCCAGTCATT CTTTGCCTCACTCAGGATTGG
Equipment
Name Company Application
Keyence BZ-X700 Keyence Imaging brown adipocytes
Magnetic stirrer VWR Dissociate BAT
QuantStudio 6 Flex Real-Time PCR System Applied Biosystem Quantitative PCR
The Odyssey Fc Imaging system LI-COR Western blot immaging

References

  1. Zwick, R. K., Guerrero-Juarez, C. F., Horsley, V., Plikus, M. V. Anatomical, physiological, and functional diversity of adipose tissue. Cell Metabolism. 27, 68-83 (2018).
  2. Symonds, M. E. Brown adipose tissue growth and development. Scientifica. 2013, 305763 (2013).
  3. Giralt, M., Villarroya, F. White, brown, beige/brite: Different adipose cells for different functions. Endocrinology. 154, 2992-3000 (2013).
  4. Cannon, B., Nedergaard, J. Brown adipose tissue: function and physiological significance. Physiological Reviews. 84, 277-359 (2004).
  5. Cinti, S. The adipose organ. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. 73, 9-15 (2005).
  6. Wu, J., et al. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and human. Cell. 150, 366-376 (2012).
  7. Cypess, A. M., Kahn, C. R. Brown fat as a therapy for obesity and diabetes. Current Opinion in Endocrinology, Diabetes and Obesity. 17, 143-149 (2010).
  8. Schoettl, T., Fischer, I. P., Ussar, S. Heterogeneity of adipose tissue in development and metabolic function. Journal of Experimental Biology. 221, (2018).
  9. Kong, X., et al. IRF4 is a key thermogenic transcriptional partner of PGC-1α. Cell. 158, 69-83 (2014).
  10. Lee, Y. H., Petkova, A. P., Konkar, A. A., Granneman, J. G. Cellular origins of cold-induced brown adipocytes in adult mice. The FASEB Journal. 29, 286-299 (2015).
  11. Kim, W. -. S., Park, H. -. S., Sung, J. -. H. The pivotal role of PDGF and its receptor isoforms in adipose-derived stem cells. Histology and Histopathology. 30 (7), 793-799 (2015).
  12. Hagberg, C. E. Flow cytometry of mouse and human adipocytes for the analysis of browning and cellular heterogeneity. Cell Report. 24, 2746-2756 (2018).
  13. Madisen, L., et al. A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain. Nature Neuroscience. 13, 133-140 (2010).
  14. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical biochemistry. 150, 76-85 (1985).
  15. Chey, S., Claus, C., Liebert, U. G. Improved method for simultaneous isolation of proteins and nucleic acids. Analytical Biochemistry. 411, 164-166 (2011).
  16. Ford, T., Graham, J., Rickwood, D. Iodixanol: A nonionic iso-osmotic centrifugation medium for the formation of self-generated gradients. Analytical Biochemistry. 220, 360-366 (1994).
  17. Kovacovicova, K., Vinciguerra, M. Isolation of senescent cells by iodixanol (OptiPrep) density gradient-based separation. Cell Proliferation. 52, 12674 (2019).
  18. Lock, M., et al. versatile manufacturing of recombinant adeno-associated viral vectors at scale. Human Gene Therapy. 21, 1259-1271 (2010).
  19. Marin, R. D., Crespo-Garcia, S., Wilson, A. M., Sapieha, P. RELi protocol: Optimization for protein extraction from white, brown, and beige adipose tissues. MethodsX. 6, 918-928 (2019).
  20. Sonna, L. A., Fujita, J., Gaffin, S. L., Lilly, C. M. Invited Review: effects of heat and cold stress on mammalian gene expression. Journal of Applied Physiology. 92, 1725-1742 (2002).
  21. Gensch, N., Borchardt, T., Schneider, A., Riethmacher, D., Braun, T. Different autonomous myogenic cell populations revealed by ablation of Myf5-expressing cells during mouse embryogenesis. Development. 135, 1597-1604 (2008).
check_url/62332?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Negron, S. G., Xu, B., Lin, Z. Isolating Brown Adipocytes from Murine Interscapular Brown Adipose Tissue for Gene and Protein Expression Analysis. J. Vis. Exp. (169), e62332, doi:10.3791/62332 (2021).

View Video