Summary

Regulação de células-tronco mesenquimais da fagocitose macrófago; Quantitação e Imagem

Published: July 16, 2021
doi:

Summary

Apresentado aqui é um protocolo para quantificar e produzir imagens dinâmicas de células-tronco mesenquimais (MSC) regulação mediada de fagocitose macrófago (MΦ) de partículas de levedura não opssonizada (zymosan) que são conjugadas a uma molécula fluorescente sensível ao pH.

Abstract

As células-tronco mesenquimais (MSC) têm sido tradicionalmente estudadas para suas propriedades regenerativas, mas, mais recentemente, suas características imunoregulatórias têm estado na vanguarda. Eles interagem e regulam a atividade das células imunes. O foco deste estudo é a regulação do MSC da atividade fagocítica do macrófago. A fagocitose macrófago (MΦ) é uma parte importante da resposta do sistema imunológico inato à infecção, e os mecanismos pelos quais a MSC modula essa resposta estão sob investigação ativa. Apresentado aqui é um método para estudar a fagocitose de MΦ de partículas de zimosã não opssonizadas conjugadas a uma molécula fluorescente sensível ao pH enquanto em co-cultura com MSC. À medida que a atividade fagocítica aumenta e as partículas de zimosã rotuladas são fechadas dentro do ambiente ácido do fagolico, a intensidade de fluorescência da molécula sensível ao pH aumenta. Com os comprimentos de onda de excitação e emissão adequados, a atividade fagocítica é medida usando um espectrofotômetro fluorescente e os dados cinéticos são apresentados como alterações em unidades fluorescentes relativas durante um período de 70 minutos. Para suportar esses dados quantitativos, a mudança na atividade fagocítica é visualizada por meio de imagens dinâmicas. Os resultados utilizando este método demonstram que, quando na co-cultura, o MSC melhora a fagocitose de zymosan não opssonizado tanto ingênua quanto ifn-γ tratada MΦ. Esses dados se somam ao conhecimento atual da regulação do MSC do sistema imunológico inato. Este método pode ser aplicado em investigações futuras para delinear totalmente os mecanismos celulares e moleculares subjacentes.

Introduction

Células-tronco mesenquimais (MSC) são células progenitoras que dão origem a células de tecido conjuntivo. O MSC está presente em tecidos mamíferos adultos e pode ser isolado da medulaóssea 1. Devido às suas propriedades imunomodulatórias, essas células são amplamente estudadas2. Estudos iniciais focados na regulação do MSC das células T3,4,5,6, mas mais recentemente, sua regulação das células macrófagos (MΦ), um dos principais componentes celulares da imunidade inata, tem recebido maior atenção7,8,9,10,11,12,13,14 . A importância da interação MSC-MΦ no tratamento da doença inflamatória é sublinhada pelo fato de que o esgotamento dos monócitos/macrófagos revoga os efeitos terapêuticos do MSC nos modelosanimais 8. Aqui, o foco é a interação de contato celular do MSC com MΦ. A MSC tem a capacidade de regular o fenótipo de MΦ promovendo a mudança de respostas inflamatórias para anti-inflamatórias, levando a atividades de reparação tecidual8,9,10,11, e muito tem sido feito para demonstrar esses mecanismos regulatórios. Em outras circunstâncias, o MSC pode suportar ou exacerbar uma resposta inflamatória orientada por MΦ12,13 e melhorar a atividade fagocítica MΦ14,15. No entanto, há uma falta crítica de dados existentes que identifica os mecanismos pelos quais e as condições sob as quais o MSC regula a atividade fagocítica MΦ.

MΦ tem famílias de receptores que reconhecem ou o opsonizados (anticorpo ou complemento revestido) ou patógenos não opssonizados que levam à fagocitose16. A ativação e atividade deste último é menos bem estudada17. Em um ambiente in vitro não inflamatório, o MSC aprimora a fagocitose de maçom de patógenos não opssonizados13. No entanto, o reconhecimento de patógenos não opssonizados por MΦ pode ser reduzido após a exposição a um ambiente inflamatório produzido por linfócitos durante uma resposta imune adaptativa. IFN-γ, liberada por células assassinas naturais e linfócitos efeitos, tem um efeito inibidor na fagocitose de MΦ de partículas não opssonizadas18. Um modelo de cocultura foi desenvolvido para estudar os mecanismos da regulação de contato direto do MSC da fagocitose MΦ. O objetivo do experimento aqui apresentado é determinar se o MSC regula a fagocitose de mφ de patógenos não opssonizados após mΦ ter sido exposto a IFN-γ (Figura 1).

Protocol

NOTA: Todas as técnicas de preparação média e cultura celular são realizadas sob condições assépticas usando um armário de biossegurança com fluxo laminar. Todas as etapas de incubação da cultura descritas são realizadas utilizando-se uma incubadora projetada para manter uma atmosfera de 37 °C, 5% de CO2e 95% de umidade. 1. Cultura celular Preparação do meio de crescimento Para MSC e LADMAC, adicione 50 mL de FBS e 5 mL de mistura antibiótico/antim…

Representative Results

Após calcular a média ± SEM para cada grupo em todos os pontos de tempo, os dados são apresentados em formato gráfico de linha com o eixo Y como a Intensidade Fluorescente Relativa e o eixo X como Tempo. O Arquivo Suplementar 1 fornece um exemplo de dados brutos de uma leitura cinética da placa de 96 poços em formato de planilha. Neste estudo, os resultados ideais apresentados na Figura 3A, e na Tabela 3 demonstram que 1) a…

Discussion

A análise da fagocitose utilizando biopartículas conjugadas a um corante sensível ao pH é uma ferramenta relativamente nova que tem se mostrado vantajosa sobre partículas tradicionais rotuladas fluorescentes12,19,20. Com partículas tradicionais rotuladas por fluorescentes, apenas a análise de ponto final é viável. A detecção é realizada com microscopia fluorescente e/ou espectrofluorometria após a lavagem ou sacieç…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pelo mecanismo NSF Major Research Instrument sob números de subvenções 1626093 e 1919583.

Materials

96 Well Black Polystyrene Microplate MilliporeSigma CLS3603-48EA
0.4% trypan blue solution MilliporeSigma T8154-20ML
15 mL and 50 mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes ThermoFisher 339653
4-well Chambered Coverglass w/ non-removable wells ThermoFisher 155382PK
Antibiotic-Antimycotic (100X) Gibco ThermoFisher 15240096
Axiobserver 7 Imaging System Zeiss
Bovine Serum Albumin (BSA) MilliporeSigma A8806-1G
Cell lifter MilliporeSigma CLS3008-100EA
Culture flasks, tissue culture treated, surface area 75 cm2, canted neck, with cap, filtered MilliporeSigma C7231-120EA
D1 ORL UVA [D1] ATCC CRL-12424 Mouse MSC Cell Line
DMEM, High Glucose ThermoFisher 11965092
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated ThermoFisher 16140071
Hemocytometer FisherScientific 02-671-51B
I-11.15 ATCC CRL-2470 Mouse MΦ Cell Line
LADMAC Cell Line ATCC CRL-2420 LADMAC cells secrete the growth factor colony stimulating factor 1 (CSF-1).
Live-Cell Imaging solution ThermoFisher A14291DJ
PBS, pH 7.4 ThermoFisher 10010031
pHrodo Green Zymosan Bioparticles Conjugate ThermoFisher P35365
Recombinant Murine IFN-γ Preprotech 315-05
Spectramax i3X Molecular Devices
Sterile Single Use Vacuum Filter Units, 250 mL, 0.2 µm ThermoFisher 568-0020
Sterile syringe filters, 0.2 micrometer ThermoFisher 723-2520
Tissue-culture treated culture dishes, 100 mm x 20 mm MilliporeSigma CLS430167-100EA
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red ThermoFisher 25300054

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Cite This Article
Evans, J. F., Ricigliano, A. E., Morante, A. V., Martinez, E., Vargas, D., Thyagaraj, J. Mesenchymal Stem Cell Regulation of Macrophage Phagocytosis; Quantitation and Imaging. J. Vis. Exp. (173), e62729, doi:10.3791/62729 (2021).

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