Summary

इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल अध्ययन के लिए वयस्क, किशोर, लार्वा और भ्रूण ज़ेब्राफिश से कार्डियक और संवहनी चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं का अलगाव

Published: February 09, 2022
doi:

Summary

वर्तमान प्रोटोकॉल वयस्क, किशोर, लार्वा, और भ्रूण ज़ेब्राफिश (डेनियो रेरियो) से व्यवहार्य हृदय और संवहनी चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं के तीव्र अलगाव का वर्णन करता है, जो इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल अध्ययन के लिए उपयुक्त है।

Abstract

जेब्राफिश का उपयोग लंबे समय से कार्डियोवैस्कुलर अनुसंधान में एक मॉडल कशेरुक जीव के रूप में किया जाता है। जेब्राफिश कार्डियोवैस्कुलर ऊतकों से व्यक्तिगत कोशिकाओं को अलग करने की तकनीकी कठिनाइयां उनके इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल गुणों का अध्ययन करने में सीमित रही हैं। जेब्राफिश दिलों के विच्छेदन और वेंट्रिकुलर कार्डियक मायोसाइट्स के अलगाव के लिए पिछले तरीकों का वर्णन किया गया है। हालांकि, इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल लक्षण वर्णन के लिए ज़ेब्राफिश एट्रियल और संवहनी मायोसाइट्स का अलगाव विस्तृत नहीं था। यह काम नए और संशोधित एंजाइमेटिक प्रोटोकॉल का वर्णन करता है जो नियमित रूप से पैच-क्लैंप प्रयोगों के लिए उपयुक्त बल्बनुमा धमनी से पृथक किशोर और वयस्क जेब्राफिश वेंट्रिकुलर और एट्रियल कार्डियोमायोसाइट्स, साथ ही संवहनी चिकनी मांसपेशी (वीएसएम) कोशिकाओं को प्रदान करते हैं। विकास के भ्रूण और लार्वा चरणों में पृथक ज़ेब्राफिश कार्डियोवैस्कुलर ऊतकों पर इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल अध्ययन का कोई साहित्यिक प्रमाण नहीं मिला है। आंशिक पृथक्करण तकनीक जो लार्वा और भ्रूण के दिल से व्यक्तिगत कोशिकाओं पर पैच-क्लैंप प्रयोगों की अनुमति देती है, का प्रदर्शन किया जाता है।

Introduction

ज़ेब्राफिश छोटी टेलीओस्ट मछली हैं जिन्हें लंबे समय से एक मॉडल कशेरुक जीव1 के रूप में उपयोग किया जाता है और हाल ही में जीन और ड्रग्स 2,3 की उच्च थ्रूपुट स्क्रीनिंग के लिए एक व्यवहार्य कशेरुक प्रणाली के रूप में प्रमुखता से आया है। हालांकि, जेब्राफिश ऊतकों का शारीरिक विश्लेषण अच्छी तरह से विकसित नहीं हुआ है। कार्डियोवैस्कुलर सिस्टम में, जेब्राफिश दिल4 के विच्छेदन और वेंट्रिकुलर कार्डियक मायोसाइट्स 5,6,7 के अलगाव के लिए तरीकों का वर्णन किया गया है। एट्रियल मायोसाइट्स के प्रभावी अलगाव के कुछ विस्तृत विवरण हैं और पैच-क्लैंप अध्ययन के लिए संवहनी चिकनी मांसपेशियों (वीएसएम) की तैयारी की कोई रिपोर्ट नहीं है।

वर्तमान कार्य जेब्राफिश कार्डियक और संवहनी मायोसाइट्स के अलगाव के लिए पद्धति का वर्णन करता है, जो इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल और कार्यात्मक अध्ययनों के लिए व्यवहार्य है। इस दृष्टिकोण में जेब्राफिश वेंट्रिकुलर मायोसाइट अलगाव 5,6 के लिए पहले से रिपोर्ट किए गए प्रोटोकॉलके संशोधन शामिल हैं और स्तनधारी वीएसएम सेल अलगाव8 से तरीकों को अनुकूलित करता है, जिससे बल्बनुमा धमनी (बीए) से ज़ेब्राफिश संवहनी चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं के अलगाव की अनुमति मिलती है। प्रोटोकॉल के परिणामस्वरूप जेब्राफिश से पृथक आलिंद, वेंट्रिकुलर और वीएसएम कोशिकाओं की कुशल पैदावार होती है जिसे 8 घंटे9 तक पैच-क्लैंप अध्ययन में मज़बूती से उपयोग किया जा सकता है।

उनके लगभग पारदर्शी लार्वा के बावजूद जो माता-पिता के जीव के बाहर पूरी तरह से विकसित होते हैं, कार्डियोवैस्कुलर विकास का अध्ययन करने में उनकी वादा की गई ऑन्टोजेनेटिक क्षमता की खोज कम उम्र में ऊतकों को निकालने और विश्लेषण करने में चुनौतियों से सीमित हो गई है। वर्तमान लेख एक अनुकूलित, प्रकाशित निष्कर्षण विधि 10 का उपयोग करके 3 दिनों के बाद निषेचन (डीपीएफ) के रूप में पृथक ज़ेब्राफिश दिलों पर पैच-क्लैंपप्रयोगों का प्रदर्शन करके इस सीमा को संबोधित करता है।

Protocol

वाशिंगटन विश्वविद्यालय संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति (आईएसीयूसी) के दिशानिर्देशों का पालन करते हुए प्रयोगों के लिए सभी जेब्राफिश (जंगली प्रकार के तनाव एबी, नर और मादा दोनों) को उठाया, बनाए रखा गया …

Representative Results

उपरोक्त प्रोटोकॉल मज़बूती से और नियमित रूप से पैच-क्लैंप अध्ययन के लिए उत्तरदायी लगातार गुणवत्ता के पर्याप्त हृदय और संवहनी मायोसाइट्स प्रदान करते हैं जैसा कि हाल ही में जंगली प्रकार और उत्परिवर्ती …

Discussion

ज़ेब्राफिश वेंट्रिकुलर मायोसाइट्स 5,6 को अलग करने के लिए पिछले तरीके, जिसका उद्देश्य संस्कृति या इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल अध्ययनों के लिए मायोसाइट्स उत्पन्न करना है, ने कम उपज की क…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस कार्य को एनआईएच द्वारा सीजीएन को एचएल 140024 और सीएमसी को एचएल 150277 अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था। चित्रा 1 और चित्रा 2 BioRender.com के साथ बनाए गए थे।

Materials

1.5 mL Centrifuge Tubes Eppendorf 22364111
10 mL Syringe Fisher Scientific 14-955-459
19 Guage Needle BD 305187
2,3-Butanedione Monoxime (BDM) Sigma-Aldrich B0753
5 mL Centrifuge Tubes Sigma-Aldrich EP0030119479 For embryonic heart isolation
Axopatch 200B amplifier and Digidata 1200 digitizer Molecular Devices Used for action potential recordings
Benchtop Mini Centrifuge Southern Labware MLX-106
Blebbistatin Sigma-Aldrich 203390
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A9418
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C4901
Cell-Strainer Sieve Cole-Parmer EW-06336-71 100 μm sieve for embryonic heart isolation
Collagenase Type H Sigma-Aldrich C8051
Collagenase Type II Worthington LS004176
Collagenase Type IV Worthington LS004188
Curved Forceps Fisher Scientific 16-100-110
DTT Sigma-Aldrich D0632
EGTA Sigma-Aldrich 324626
Elastase Worthington LS003118
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma-Aldrich F2442
Fine Forceps Dumont Style #5 Ceramic-coated forceps for adult and juvenile CV tissue isolation (Need two)
Glucose Sigma-Aldrich G8270
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Insulin Sigma-Aldrich I2643
K2ATP Sigma-Aldrich A8937
Large Petri Dish Sigma-Aldrich P5981 For dissociation
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M8266
Micro-Hematocrit Capillary Tubes Kimble Chase 41A2502 Soda lime glass for patch pipettes
Papain Worthington LS003118
Pasteur Pipettes Fisher Scientific 13-678-6A
Petri Dish Sigma-Aldrich P5606 100 mm x 20 mm, for embryonic heart isolation
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich 806552
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P3911
Scissors Fine Science Tools 14090-09 For adult and juvenile zebrafish decapitation
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S9888
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich S8045
Super Fine Forceps Dumont Style #SF For isolating larval CV tissues (Need two)
Taurine Sigma-Aldrich T0625
Thermoshaker ThermoFisher Scientific 13687711
Tricaine Methanesulfonate (MS222) For anaesthetizing zebrafish larvae
Trypsin Inhibitor Sigma-Aldrich T6522

References

  1. Vascotto, S. G., Beckham, Y., Kelly, G. M. The zebrafish’s swim to fame as an experimental model in biology. Biochemistry and Cell Biology. 75 (5), 479-485 (1997).
  2. Love, D. R., Pichler, F. B., Dodd, A., Copp, B. R., Greenwood, D. R. Technology for high-throughput screens: The present and future using zebrafish. Current Opinion in Biotechnology. 15 (6), 564-571 (2004).
  3. Keßler, M., Rottbauer, W., Just, S. Recent progress in the use of zebrafish for novel cardiac drug discovery. Expert Opinion on Drug Discovery. 10 (11), 1231-1241 (2015).
  4. Singleman, C., Holtzman, N. G. Heart dissection in larval, juvenile and adult zebrafish, Danio rerio. Journal of Visualized Experiments. (55), e3165 (2011).
  5. Brette, F., et al. Characterization of isolated ventricular myocytes from adult zebrafish (Danio rerio). Biochemical and Biophysical Research Communications. 374 (1), 143-146 (2008).
  6. Sander, V., Sune, G., Jopling, C., Morera, C., Izpisua Belmonte, J. C. Isolation and in vitro culture of primary cardiomyocytes from adult zebrafish hearts. Nature protocol. 8, 800-809 (2013).
  7. Nemtsas, P., Wettwer, E., Christ, T., Weidinger, G., Ravens, U. Adult zebrafish heart as a model for human heart? An electrophysiological study. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 48 (1), 161-171 (2010).
  8. Huang, Y., et al. Cardiovascular consequences of KATP overactivity in Cantu syndrome. JCI insight. 3 (15), 137799 (2018).
  9. Singareddy, S. S., et al. ATP-sensitive potassium channels in zebrafish cardiac and vascular smooth muscle. The Journal of Physiology. , (2021).
  10. Burns, C. G., MacRae, C. A. Purification of hearts from zebrafish embryos. BioTechniques. 40 (3), 274-282 (2006).
  11. Seiler, C., Abrams, J., Pack, M. Characterization of zebrafish intestinal smooth muscle development using a novel sm22α-b promoter. Developmental Dynamics. 239, 2806-2812 (2010).
  12. Yang, X. Y., et al. Whole amount in situ hybridization and transgene via microinjection in zebrafish. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 36 (3), 243-247 (2003).
  13. Kompella, S. N., Brette, F., Hancox, J. C., Shiels, H. A. Phenanthrene impacts zebrafish cardiomyocyte excitability by inhibiting IKr and shortening action potential duration. The Journal of General Physiology. 153 (2), 202012733 (2021).
  14. Jou, C. J., Spitzer, K. W., Tristani-Firouzi, M. Blebbistatin effectively uncouples the excitation-contraction process in zebrafish embryonic heart. Cellular Physiology and Biochemistry. 25 (4-5), 419-424 (2010).
check_url/63225?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Singareddy, S. S., McClenaghan, C., Roessler, H. I., Tryon, R., Nichols, C. G. Isolation of Cardiac and Vascular Smooth Muscle Cells from Adult, Juvenile, Larval and Embryonic Zebrafish for Electrophysiological Studies. J. Vis. Exp. (180), e63225, doi:10.3791/63225 (2022).

View Video