I denne artikel præsenterer vi en protokol til påvisning af mikrotubulusbelastede oligodendrocytter i en model af tubulinopati gennem en simpel, innovativ anden harmonisk generations mikroskopi-tilgang.
Den tilfredsstillende visualisering af cytoskeletale komponenter i hjernen er udfordrende. Den allestedsnærværende fordeling af netværkene af mikrotubuli, mikrofilamenter og mellemliggende filamenter i alle neurale væv sammen med variabiliteten i resultaterne af fluorescerende proteinfusionsstrategier og deres begrænsede anvendelighed til dynamiske undersøgelser af antistoffer og lægemidler som kromoforkøretøjer gør klassiske optiske tilgange ikke så effektive som for andre proteiner. Når tubulin skal undersøges, er den etiketfrie generering af anden harmonisk en meget passende mulighed på grund af molekylets ikke-centrosymmetriske organisation. Denne teknik, når den konjugeres til mikroskopi, kan kvalitativt beskrive den volumetriske fordeling af parallelle bundter af mikrotubuli i biologiske prøver med den yderligere fordel at arbejde med friske væv, der er ufikserede og upermeabiles. Dette arbejde beskriver, hvordan man afbilder tubulin med en kommerciel anden harmonisk generations mikroskopiopsætning for at fremhæve mikrotubuli i de tubulinberigede strukturer af oligodendrocytterne, som i hypomyelinering med atrofi af basalganglierne og cerebellum (H-ABC) tubulinopati, en nyligt beskrevet myelinforstyrrelse.
Den optiske billeddannelse af cytoskeletale strukturer i væv og organpræparater er ikke en nem opgave. Cytoskeletale filamenter er allestedsnærværende, så hvis generisk farvning udføres, for eksempel mod alfa-tubulin eller beta-actin eller potentielt keratin i en epitelprøve, vil signalet sandsynligvis blive fordelt ret homogent over hele prøven. For at begrænse farvningen til en mere meningsfuld delmængde af cellulære komponenter kan man enten bruge transgene mus med målrettet ekspression1 eller planlægge at bruge isoformspecifikke antistoffer. Mens meget få af sidstnævnte er på markedet (og meget få findes overhovedet 2,3,4), kan en transgen dyremodel være tilgængelig. Det skal dog erhverves af laboratoriet og have det ordentligt til huse med alle de udgifter, der er involveret i processen. Visse antistoffer eller kemikalier, f.eks. fluoroforkonjugerede lægemidler som phalloidin eller paclitaxel, kan være helt eller delvist uforenelige med anvendelse i levende celler eller væv, hvilket begrænser deres anvendelighed til kun at omfatte undersøgelser af faste prøver.
I tilfælde af tubulin skal der tages hensyn til et yderligere aspekt, som er polymerens følsomhed over for fiksering. Konventionel kemisk fiksering med formaldehyd er kendt for ikke at være tilstrækkelig til optimalt at bevare integriteten af mikrotubuli5. Derudover bekræfter en nylig rapport, at formaldehydtværbinding inducerer subtile ændringer i mikrotubuliens ultrastruktur, svarende til hvad der sker med bindingen af nogle lægemidler eller fysiologiske molekyler såsom GTP6.
Den direkte visualisering af mikrotubuli i ufarvede, ikke-fikserede prøver er derfor ofte ønskelig. For at opnå dette er en teknisk løsning anden harmonisk generation (SHG) mikroskopi7, som er baseret på evnen af bundter af parallelle mikrotubuli til at fungere som harmonoforer og udsende frekvensfordoblet lys, når det belyses korrekt med en intens, pulserende infrarød laser. Selvom et stærkere og mere stabilt andet harmonisk signal kan genereres fra kollagen og myosin, som er de eneste to andre biologiske materialer, der vides at være i stand til frekvensfordobling, er signalet fra tubulin hidtil blevet brugt mest til at studere mitotiske spindelomlægninger 8,9,10 og aksonal mikrotubulusmorfologi11,12,13.
I dette arbejde introducerer vi en ny anvendelse af SHG-mikroskopi som et diagnostisk værktøj til at skelne centralnervesystem (CNS) væv, der er påvirket af tubulin beta 4 A (TUBB4A) tubulinopati fra deres raske modstykker14. Nogle af de mutationer, der forekommer i denne overvejende neurale isoform af tubulin, som dem, der forårsager hypomyelinering og atrofi af de basale ganglier og cerebellum (H-ABC), inducerer mikrotubulusoverfyldning i oligodendrocytterne15,16; De cytoskeletale ændringer er igen forbundet med nedstrøms effekter som dysmyelinisering, med dyb svækkelse af de motoriske og sensoriske veje16,17,18,19. Taiep-murinmodellen, der anvendes i dette arbejde, viser unormalt mikrotubulusindhold i oligodendrocytterne og rekapitulerer de fleste af de sensorisk-motoriske symptomer hos H-ABC-patienter17. Protokollen forklarer, hvordan man afbilder strukturer som corpus callosum og cerebellum, som normalt er stærkt myelinerede, og som er alvorligt påvirket hos humane patienter såvel som hos taiep rotte19, for at fremhæve forskellene i SH-signaler mellem sundt og mutant væv.
SHG-mikroskopi er en del af en gruppe af ikke-lineære optiske teknikker, som omfatter to-foton excitationsmikroskopi, tredje harmonisk generationsmikroskopi og sammenhængende anti-Stokes Raman-spredningsmikroskopi, der har bidraget til at udvide anvendelsesområdet for konventionel optisk mikroskopi til biovidenskab20.
Specifikt vedrører den største styrke og svaghed ved SHG-mikroskopi den samme tilstand: signalgeneratoren er ikke-centrosymmetrisk2…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev støttet af Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) gennem følgende tilskud: infraestructura 226450 til VP-CIO, infraestructura 255277 til VP og FORDECYT-PRONACES/194171/2020 til V.H. Vi anerkender støtten fra Juvenal Hernández Guevara hos CIO i videofremstillingen.
405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter | Semrock | FF01-405/10-25 | 32 mm diameter, with housing ring |
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric | Thorlabs | BK5 | 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick |
Blades for vibratome | any commercial; e.g. Wilkinson Sword | Classic stainless steel double edge razor blades | |
Cell culture dishes, 35 mm | any commercial; e.g. Falcon | 351008 | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM710NLO AxioObserver Z1 | Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA |
Cooler | any commercial | Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C | |
Corn stach | e.g. Maizena | From the supermarket | |
Coverslips #1.5 | any commercial | Rectangular | |
Cyanoacrylate glue | e.g. Loctite | To glue the brain to the masking tape | |
Fine forceps | fine science tools | 11412-11 | To manipulate tissue sections by handling from the meninges |
Fine scissors | fine science tools | 14370-22 | To cut the skin |
Fine scissors curved tip | fine science tools | 14061-09 | To cut along the midline |
Formaldehyde 37% | Sigma-Aldrich | 252549 | To dilute 1:10 in PBS |
Friedman Rongeur | fine science tools | 16000-14 | To cut the bone |
Gel packs | any commercial | Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler | |
Glass Pasteur pipette, modified | any commercial | To transfer the tissue section | |
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) | Gibco | 14025-076 | Could be prepared from powders |
Kelly hemostats | fine science tools | 13018-14 | To separate the bone |
Masking tape | any commercial | To protect th surface of the specimen plate | |
NDD module, type C | Zeiss | 000000-1410-101 | To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485 |
Offset bone nippers | fine science tools | 16101-10 | To cut the bone |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 10010-031 | Could be prepared from powders or tabs |
Pulsed laser | Coherent | Chameleon Vision II | 680–1080 nm tunable laser |
Scalpel | any commercial | Straight blade with sharp point | |
Standard pattern forceps | fine science tools | 11000-18 | |
Vannas spring scissors | fine science tools | 15018-10 | To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate. |
Vibratome | any commercial; e.g. Leica | VT1200 |