Summary

Etiketfri ikke-lineær optik til undersøgelse af tubulinafhængige defekter i central myelin

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

I denne artikel præsenterer vi en protokol til påvisning af mikrotubulusbelastede oligodendrocytter i en model af tubulinopati gennem en simpel, innovativ anden harmonisk generations mikroskopi-tilgang.

Abstract

Den tilfredsstillende visualisering af cytoskeletale komponenter i hjernen er udfordrende. Den allestedsnærværende fordeling af netværkene af mikrotubuli, mikrofilamenter og mellemliggende filamenter i alle neurale væv sammen med variabiliteten i resultaterne af fluorescerende proteinfusionsstrategier og deres begrænsede anvendelighed til dynamiske undersøgelser af antistoffer og lægemidler som kromoforkøretøjer gør klassiske optiske tilgange ikke så effektive som for andre proteiner. Når tubulin skal undersøges, er den etiketfrie generering af anden harmonisk en meget passende mulighed på grund af molekylets ikke-centrosymmetriske organisation. Denne teknik, når den konjugeres til mikroskopi, kan kvalitativt beskrive den volumetriske fordeling af parallelle bundter af mikrotubuli i biologiske prøver med den yderligere fordel at arbejde med friske væv, der er ufikserede og upermeabiles. Dette arbejde beskriver, hvordan man afbilder tubulin med en kommerciel anden harmonisk generations mikroskopiopsætning for at fremhæve mikrotubuli i de tubulinberigede strukturer af oligodendrocytterne, som i hypomyelinering med atrofi af basalganglierne og cerebellum (H-ABC) tubulinopati, en nyligt beskrevet myelinforstyrrelse.

Introduction

Den optiske billeddannelse af cytoskeletale strukturer i væv og organpræparater er ikke en nem opgave. Cytoskeletale filamenter er allestedsnærværende, så hvis generisk farvning udføres, for eksempel mod alfa-tubulin eller beta-actin eller potentielt keratin i en epitelprøve, vil signalet sandsynligvis blive fordelt ret homogent over hele prøven. For at begrænse farvningen til en mere meningsfuld delmængde af cellulære komponenter kan man enten bruge transgene mus med målrettet ekspression1 eller planlægge at bruge isoformspecifikke antistoffer. Mens meget få af sidstnævnte er på markedet (og meget få findes overhovedet 2,3,4), kan en transgen dyremodel være tilgængelig. Det skal dog erhverves af laboratoriet og have det ordentligt til huse med alle de udgifter, der er involveret i processen. Visse antistoffer eller kemikalier, f.eks. fluoroforkonjugerede lægemidler som phalloidin eller paclitaxel, kan være helt eller delvist uforenelige med anvendelse i levende celler eller væv, hvilket begrænser deres anvendelighed til kun at omfatte undersøgelser af faste prøver.

I tilfælde af tubulin skal der tages hensyn til et yderligere aspekt, som er polymerens følsomhed over for fiksering. Konventionel kemisk fiksering med formaldehyd er kendt for ikke at være tilstrækkelig til optimalt at bevare integriteten af mikrotubuli5. Derudover bekræfter en nylig rapport, at formaldehydtværbinding inducerer subtile ændringer i mikrotubuliens ultrastruktur, svarende til hvad der sker med bindingen af nogle lægemidler eller fysiologiske molekyler såsom GTP6.

Den direkte visualisering af mikrotubuli i ufarvede, ikke-fikserede prøver er derfor ofte ønskelig. For at opnå dette er en teknisk løsning anden harmonisk generation (SHG) mikroskopi7, som er baseret på evnen af bundter af parallelle mikrotubuli til at fungere som harmonoforer og udsende frekvensfordoblet lys, når det belyses korrekt med en intens, pulserende infrarød laser. Selvom et stærkere og mere stabilt andet harmonisk signal kan genereres fra kollagen og myosin, som er de eneste to andre biologiske materialer, der vides at være i stand til frekvensfordobling, er signalet fra tubulin hidtil blevet brugt mest til at studere mitotiske spindelomlægninger 8,9,10 og aksonal mikrotubulusmorfologi11,12,13.

I dette arbejde introducerer vi en ny anvendelse af SHG-mikroskopi som et diagnostisk værktøj til at skelne centralnervesystem (CNS) væv, der er påvirket af tubulin beta 4 A (TUBB4A) tubulinopati fra deres raske modstykker14. Nogle af de mutationer, der forekommer i denne overvejende neurale isoform af tubulin, som dem, der forårsager hypomyelinering og atrofi af de basale ganglier og cerebellum (H-ABC), inducerer mikrotubulusoverfyldning i oligodendrocytterne15,16; De cytoskeletale ændringer er igen forbundet med nedstrøms effekter som dysmyelinisering, med dyb svækkelse af de motoriske og sensoriske veje16,17,18,19. Taiep-murinmodellen, der anvendes i dette arbejde, viser unormalt mikrotubulusindhold i oligodendrocytterne og rekapitulerer de fleste af de sensorisk-motoriske symptomer hos H-ABC-patienter17. Protokollen forklarer, hvordan man afbilder strukturer som corpus callosum og cerebellum, som normalt er stærkt myelinerede, og som er alvorligt påvirket hos humane patienter såvel som hos taiep rotte19, for at fremhæve forskellene i SH-signaler mellem sundt og mutant væv.

Protocol

Alle beskrevne procedurer blev udført i overensstemmelse med de love og koder, der er godkendt i den syvende titel i forordningen om den mexicanske regerings generelle sundhedslov vedrørende sundhedsforskning (NOM-062-ZOO-1999) og i overensstemmelse med anbefalingerne fra National Institutes of Health Guide for pleje og brug af forsøgsdyr og blev godkendt af det institutionelle udvalg for bioetik i forskning ved Universidad de Guanajuato og Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. <stron…

Representative Results

Billederne opnået med denne metode har et iboende lavt baggrundsniveau på grund af det meget begrænsede antal harmonoforer, der er til stede i biologiske væv, hvilket er en af de væsentlige fordele ved metoden. Når fibrene i corpus callosum er afbildet, kan fiberlignende korte strukturer og afrundede elementer konsekvent findes i taiephjernen (figur 3B), mens corpus callosum i kontrolhjernen viser et meget mere heterogent og isotropt signal i hele hjerneområdet (<strong class="…

Discussion

SHG-mikroskopi er en del af en gruppe af ikke-lineære optiske teknikker, som omfatter to-foton excitationsmikroskopi, tredje harmonisk generationsmikroskopi og sammenhængende anti-Stokes Raman-spredningsmikroskopi, der har bidraget til at udvide anvendelsesområdet for konventionel optisk mikroskopi til biovidenskab20.

Specifikt vedrører den største styrke og svaghed ved SHG-mikroskopi den samme tilstand: signalgeneratoren er ikke-centrosymmetrisk2…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) gennem følgende tilskud: infraestructura 226450 til VP-CIO, infraestructura 255277 til VP og FORDECYT-PRONACES/194171/2020 til V.H. Vi anerkender støtten fra Juvenal Hernández Guevara hos CIO i videofremstillingen.

Materials

405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter  Semrock FF01-405/10-25 32 mm diameter, with housing ring
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric Thorlabs BK5 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick 
Blades for vibratome any commercial; e.g. Wilkinson Sword  Classic stainless steel double edge razor blades
Cell culture dishes, 35 mm any commercial; e.g. Falcon 351008
Confocal microscope Zeiss LSM710NLO AxioObserver Z1 Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA 
Cooler any commercial Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C
Corn stach e.g. Maizena From the supermarket
Coverslips #1.5 any commercial Rectangular
Cyanoacrylate glue e.g. Loctite To glue the brain to the masking tape
Fine forceps fine science tools 11412-11 To manipulate tissue sections by handling from the meninges
Fine scissors fine science tools 14370-22 To cut the skin 
Fine scissors curved tip fine science tools 14061-09 To cut along the midline
Formaldehyde 37% Sigma-Aldrich 252549 To dilute 1:10 in PBS
Friedman Rongeur fine science tools 16000-14 To cut the bone
Gel packs any commercial Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler
Glass Pasteur pipette, modified any commercial To transfer the tissue section
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) Gibco 14025-076 Could be prepared from powders
Kelly hemostats fine science tools 13018-14 To separate the bone 
Masking tape any commercial To protect th surface of the specimen plate
NDD module, type C Zeiss 000000-1410-101 To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485
Offset bone nippers fine science tools 16101-10 To cut the bone
Phosphate buffered saline (PBS) Gibco 10010-031 Could be prepared from powders or tabs
Pulsed laser Coherent Chameleon Vision II 680–1080 nm tunable laser
Scalpel any commercial Straight blade with sharp point
Standard pattern forceps fine science tools 11000-18
Vannas spring scissors fine science tools 15018-10 To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate.
Vibratome any commercial; e.g. Leica VT1200

References

  1. Palmiter, R. D., et al. Cell lineage ablation in transgenic mice by cell-specific expression of a toxin gene. Cell. 50 (3), 435-443 (1987).
  2. Banerjee, A., et al. A monoclonal antibody against the type II isotype of beta-tubulin. Preparation of isotypically altered tubulin. The Journal of Biological Chemistry. 263 (6), 3029-3034 (1988).
  3. Banerjee, A., Roach, M. C., Trcka, P., Luduena, R. F. Preparation of a monoclonal antibody specific for the class IV isotype of beta-tubulin. Purification and assembly of alpha beta II, alpha beta III, and alpha beta IV tubulin dimers from bovine brain. The Journal of Biological Chemistry. 267 (8), 5625-5630 (1992).
  4. Banerjee, A., et al. Localization of βv tubulin in the cochlea and cultured cells with a novel monoclonal antibody. Cell Motility and the Cytoskeleton. 65 (6), 505-514 (2008).
  5. Cross, A. R., Williams, R. C. Kinky microtubules: Bending and breaking induced by fixation in vitro with glutaraldehyde and formaldehyde. Cell Motility and the Cytoskeleton. 20 (4), 272-278 (1991).
  6. Van Steenbergen, V., et al. Molecular understanding of label-free second harmonic imaging of microtubules. Nature Communications. 10 (1), 3530 (2019).
  7. Campagnola, P. J., Clark, H. A., Mohler, W. A., Lewis, A., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy of living cells. Journal of Biomedical Optics. 6 (3), 277 (2001).
  8. Campagnola, P. J., et al. Three-dimensional high-resolution second-harmonic generation imaging of endogenous structural proteins in biological tissues. Biophysical Journal. 82 (1), 493-508 (2002).
  9. Yu, C. -. H., et al. Measuring microtubule polarity in spindles with second-harmonic generation. Biophysical Journal. 106 (8), 1578-1587 (2014).
  10. Bancelin, S., et al. Probing microtubules polarity in mitotic spindles in situ using Interferometric Second Harmonic Generation Microscopy. Scientific Reports. 7, 6758 (2017).
  11. Dombeck, D. A., et al. Uniform polarity microtubule assemblies imaged in native brain tissue by second-harmonic generation microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (12), 7081-7086 (2003).
  12. Psilodimitrakopoulos, S., et al. Estimation of the effective orientation of the SHG source in primary cortical neurons. Optics Express. 17 (16), 14418 (2009).
  13. Sharoukhov, D., Bucinca-Cupallari, F., Lim, H. Microtubule imaging reveals cytoskeletal deficit predisposing the retinal ganglion cell axons to atrophy in DBA/2J. Investigative Opthalmology & Visual Science. 59 (13), 5292 (2018).
  14. Alata, M., Piazza, V., Eguibar, J. R., Cortes, C., Hernandez, V. H. H-ABC tubulinopathy revealed by label-free second harmonic generation microscopy. Scientific Reports. 12, 14417 (2022).
  15. Duncan, I. D., Lunn, K. F., Holmgren, B., Urba-Holmgren, R., Brignolo-Holmes, L. The taiep rat: A myelin mutant with an associated oligodendrocyte microtubular defect. Journal of Neurocytology. 21 (12), 870-884 (1992).
  16. Duncan, I. D., et al. A mutation in the Tubb4a gene leads to microtubule accumulation with hypomyelination and demyelination: Tubb4a Mutation. Annals of Neurology. 81 (5), 690-702 (2017).
  17. Garduno-Robles, A., et al. MRI features in a rat model of H-ABC tubulinopathy. Frontiers in Neuroscience. 14, 555 (2020).
  18. Lopez-Juarez, A., et al. Auditory impairment in H-ABC tubulinopathy. Journal of Comparative Neurology. 529 (5), 957-968 (2021).
  19. Alata, M., et al. Longitudinal evaluation of cerebellar signs of H-ABC tubulinopathy in a patient and in the taiep model. Frontiers in Neurology. 12, 702039 (2021).
  20. Parodi, V., et al. Nonlinear optical microscopy: From fundamentals to applications in live bioimaging. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 585363 (2020).
  21. Lefort, C. A review of biomedical multiphoton microscopy and its laser sources. Journal of Physics D: Applied Physics. 50 (42), 423001 (2017).
  22. Campagnola, P. J., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy for visualizing biomolecular arrays in cells, tissues and organisms. Nature Biotechnology. 21 (11), 1356-1360 (2003).
  23. vander Knaap, M. S., et al. New syndrome characterized by hypomyelination with atrophy of the basal ganglia and cerebellum. American Journal of Neuroradiology. 23 (9), 1466 (2002).
  24. Stoller, P., Kim, B. -. M., Rubenchik, A. M., Reiser, K. M., Da Silva, L. B. Polarization-dependent optical second-harmonic imaging of a rat-tail tendon. Journal of Biomedical Optics. 7 (2), 205 (2002).
  25. Brown, E. B., et al. In vivo measurement of gene expression, angiogenesis and physiological function in tumors using multiphoton laser scanning microscopy. Nature Medicine. 7 (7), 864-868 (2001).
  26. Chakraborti, S., Natarajan, K., Curiel, J., Janke, C., Liu, J. The emerging role of the tubulin code: From the tubulin molecule to neuronal function and disease. Cytoskeleton. 73 (10), 521-550 (2016).
check_url/63449?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Piazza, V., Alata, M., Hernandez, V. H., Eguibar, J. R., Cortes, C. Label-Free Non-Linear Optics for the Study of Tubulin-Dependent Defects in Central Myelin. J. Vis. Exp. (193), e63449, doi:10.3791/63449 (2023).

View Video