Summary

İnsan Nöromüsküler Kavşağının Optogenetik Modelinin Mühendisliği ve Karakterizasyonu

Published: April 14, 2022
doi:

Summary

İnsan mühendisliği iskelet kası dokusu ve optogenetik motonöronlar kullanarak nöromüsküler kavşak fonksiyonunu karakterize etmek için tekrarlanabilir, otomatik ve tarafsız bir görüntüleme sistemi tanımladık. Bu sistem, zaman içinde nöromüsküler bağlantının fonksiyonel olarak ölçülmesine izin verir ve nörotoksinlerin ve myastenia gravis hasta serumunun neden olduğu azalmış nöromüsküler fonksiyonu tespit eder.

Abstract

Myastenia gravis (MG) gibi birçok nöromüsküler hastalık, hayvanlar ve insanlar arasındaki fizyolojik farklılıklar nedeniyle hayvan modellerinde karakterize edilmesi zor olan nöromüsküler kavşağın (NMJ) işlev bozukluğu ile ilişkilidir. Doku mühendisliği, NMJ patolojilerini teşhis etmek ve araştırmak ve potansiyel terapötikleri test etmek için kullanılabilecek fonksiyonel insan NMJ’lerinin in vitro modellerini sağlama fırsatları sunar. Optogenetik proteinleri indüklenmiş pluripotent kök hücrelere (iPSC’ler) dahil ederek, ışığın belirli dalga boylarıyla uyarılabilen nöronlar ürettik. NMJ sağlıklı ve işlevsel ise, motonörondan gelen nörokimyasal bir sinyal kas kasılmasıyla sonuçlanır. Optogenetik ve mikrofabrikasyonun doku mühendisliği ile entegrasyonu sayesinde, video analizi kullanarak NMJ fonksiyonunu karakterize etmek için tarafsız ve otomatik bir metodoloji oluşturduk. NMJ oluşumu, eşzamanlı video kaydı ile optik stimülasyon ve doku kontraktilitesinin video analizi için standartlaştırılmış bir protokol geliştirilmiştir. İskelet kası kasılmalarını indüklemek için optogenetik motonöronların ışıkla uyarılması, insan NMJ fizyolojisini özetler ve zaman içinde ve çeşitli girdilere yanıt olarak NMJ’nin tekrarlanan fonksiyonel ölçümlerine izin verir. Bu platformun zaman içinde nöromüsküler bağlantıda fonksiyonel iyileşmeler gösterme yeteneğini gösteriyoruz ve hasta MG antikorlarının veya nörotoksinlerin NMJ fonksiyonu üzerindeki zararlı etkilerini karakterize ediyoruz.

Introduction

Nöromüsküler kavşak (NMJ), kas kasılmasına izin veren motonöronlar (MN’ler) ve iskelet kası hücreleri (SkM) arasındaki kimyasal sinapstır. Nörotoksin α-bungarotoksin (BTX) gibi toksinler veya myastenia gravis (MG) gibi nöromüsküler hastalıklar (NMD) NMJ’nin dejenerasyonuna ve kas kontrolünde azalmaya neden olabilir1. Biyomühendislik ürünü insan doku modelleri, insan NMJ’lerinin fonksiyonel ve fizyolojik mekanizmalarını daha iyi özetler ve hayvan modellerinden daha fazla translasyonel potansiyel sunar.

Hayvan modelleri, NMJ’nin oluşumu ve işlevinin anlaşılmasını ilerletirken, insan ve hayvan sinapsları arasında, sonuçların insanlara çevirisini sınırlayan ve NMJ’nin in vivo karakterizasyonunuzorlaştıran önemli farklılıklar vardır. 2,3,4. Fareler, insan NMJ’leri4 ile karşılaştırıldığında daha büyük NMJ’lere ve daha küçük aktif bölge yoğunluklarına sahiptir. Ek olarak, hayvan modellerinde yapılan ilaç çalışmaları her zaman insan klinik çalışmalarında bulunan etkileri yansıtmamaktadır. Tasarlanmış insan doku modelleri, NMJ’nin sağlıklı gelişimini ve nöromüsküler hastalıkların patolojisini inceleme fırsatı sunar ve ilaç taramalarına izin verir. İnsan kaynaklı pluripotent kök hücreler (hiPSC’ler)5, iskelet kası hücreleri6,7 ve motonöronlar 8,9 dahil olmak üzere çeşitli hücre tiplerine ayrılabilir. hiPSC’ler hasta hücrelerinden kolayca üretilebilir, bu da hastaya özgü doku modelleri aracılığıyla daha iyi hastalıkmodellemesi 10 ve ilaç taraması 11,12 sağlar.

SkM’lerin ve MN’lerin iki boyutlu (2B) tek katmanlı ortak kültürleri, fizyolojik NMJ’lerin morfolojisi, fenotipi, organizasyonu ve fonksiyonel davranışından yoksundur. NMJ’ler, analiz için motor birimlerin izolasyonunu engelleyen, doğru fonksiyonel ölçümleri sınırlayan ve tekrarlanan, sistematik deneyler için kullanımlarını önleyen 2D kültürde rastgeleoluşur13 . NMJ’lerin üç boyutlu (3D) doku modelleri, fizyolojik NMJ’lerin 7,14,15,16,17’nin morfolojik ve fonksiyonel özelliklerini özetleyerek bu sınırlamaların çoğunun üstesinden gelir. Bu modeli kullanarak, iki doku tipi ayrı ayrı geliştirilir ve daha sonra aksonal büyümeyi yönlendirerek entegre edilir ve 2D kültür sistemlerine kıyasla daha organize NMJ’lerin gelişmesine izin verilir.

Önceki çalışmamız, optogenetiğin doku mühendisliği ile birleştirilmesinin doğru non-invaziv stimülasyona ve NMJ fonksiyonunun değerlendirilmesine izin verebileceğini göstermiştir18,19. Genetik mühendisliği sayesinde, ışığa duyarlı proteinler hiPSC’lerin genomuna entegre edilebilir. Mavi ışığa tepki olarak açılan bir iyon kanalı olan channelrhodopsin-2’yi (ChR2), nöronlar gibi uyarılabilir hücrelerin zarına entegre etmek, hücre aktivasyonu20,21,22 üzerinde temassız mekansal zamansal kontrol sağlar. ChR2 taşıyan hiPSC’ler, mavi ışığa duyarlı optogenetik motonöronlara ayrılabilir, nöronları uyaran tipik invaziv elektrotlara olan ihtiyacı ortadan kaldırır ve kas hücrelerinin elektrotlar tarafından istenmeyen şekilde uyarılmasını önler23. Bu sistem, optogenetik olmayan iskelet kası hücrelerinde kasılmaları uyarmak için optogenetik motonöronları kullanır. Video yakalama ve kontrollü mavi ışık aydınlatmasını birleştirmek, ko-kültürlü dokuların aynı anda uyarılmasını ve NMJ işlevi için kaydedilmesini sağlar.

MG, nikotinik asetilkolin reseptörlerini (AChR) hedef alan otoantikorlardan kaynaklanır ve bu da NMJ fonksiyonunun azalmasına ve kas güçsüzlüğüne neden olur24. Sunulan semptomlara, elektro tanıya ve serolojik kan testleri ile otoantikorların saptanmasına dayanarak teşhis edilir. Bununla birlikte, MG’de rol oynayan tüm otoantikorlar tanımlanmamıştır ve bazı seronegatif hastalara MG tanısı konmuştur, ancak tanınmış antikorları yoktur25,26. Sistemimiz, MG hastalarından serum eklenmesinden önce ve sonra NMJ’nin tekrarlanan fonksiyonel değerlendirmesine izin vererek, MG antikorlarının neden olduğu fonksiyonel ve biyokimyasal değişiklikler hakkında paha biçilmez bir fikir verir18. Protokolümüz, NMJ patolojilerini teşhis etmek ve araştırmak ve potansiyel terapötikleri test etmek için kullanılabilecek fonksiyonel insan NMJ’nin 3D in vitro modellerinin nasıl üretileceğini göstermektedir. Sistemin çok yönlülüğünü iki platformda, bir mikroakışkan cihazda ve daha büyük bir açık kuyulu biyoreaktör platformunda gösteriyoruz.

Protocol

Bu çalışma için tüm hücre hatları, Columbia Üniversitesi, NY, ABD’nin kurumsal yönergelerine uygun olarak oluşturulmuş ve kullanılmıştır. 1. Biyoreaktör hazırlığı Biyoreaktör kalıpları yapın Ek CAD Dosyasından bir biyoreaktör CAD dosyası indirin veya özel bir tasarım oluşturun. CAM yazılımını kullanarak 3B modelden bir CNC takım yolu oluşturun. CNC freze makinesi kullanarak asetal kal?…

Representative Results

Nöromüsküler kavşaklar, optogenetik hiPSC türevi motonöronların optogenetik olmayan iskelet kası dokusu ile birlikte kültürlenmesiyle oluşturuldu. İnsan primer iskelet miyoblastları (SkM) platformlara tohumlandı ve 2 haftalık protokol kullanılarak çok çekirdekli miyotüplere farklılaştırıldı. Optogenetik motonöronlar ayrı ayrı, ancak miyotüp farklılaşmasına paralel olarak farklılaştırıldı ve daha sonra platforma tohumlandı (Şekil 1). Dokular, MN tohumlama…

Discussion

Bu sistem, NMJ fonksiyonunun otomatik ve tarafsız bir şekilde değerlendirilmesini sağlamak için optogenetik ve video işlemeyi birleştiren tasarlanmış bir 3D insan dokusu modelidir. Standartlaştırılmış bir protokol kullanarak, fizyolojik gelişim sırasında NMJ fonksiyonundaki değişiklikleri ölçme ve nörotoksin maruziyeti ve myastenia gravis hasta serumları gibi patolojilerin zararlı etkilerini karakterize etme yeteneğini gösterdik.

Önceki çalışmalar, MG hastası ser…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NIH [hibe numaraları EB025765 ve EB027062], DOD [ödül numarası W81XWH-18-1-0095] ve UCSF Mühendislik Yoluyla Sağlık İnovasyonu (HIVE Bursu) tarafından sağlanan finansman desteğini minnetle kabul ediyoruz. Columbia Üniversitesi Kök Hücre Çekirdeğine, hücre yeniden programlamadaki yardımları ve rehberlikleri için minnetle teşekkür ederiz.

Materials

Cells
SkMDC Cook Myosite P01059-14M
Media and Supplements
Advanced DMEM/F12 ThermoFisher Scientific 12634-020
Bovine Serum Albumin solution Millipore Sigma A9576-50ML
G-5 Supplement (100X) ThermoFisher Scientific 17503-012
Geneticin Selective Antibiotic (G418 Sulfate) (50 mg/mL) ThermoFisher Scientific 10131-035
Insulin, Recombinant Human Millipore Sigma 91077C-100MG
Matrigel Corning 354277
mTeSR Plus Stem Cell Technologies 100-0276
MyoTonic Growth Media Kit Cook Myosite MK-4444
N-2 Supplement ThermoFisher Scientific 17502-048
NBactiv4 500 mL BrainBits LLC Nb4-500
Neurobasal Medium ThermoFisher Scientific 21103-049
Neurobasal-A Medium ThermoFisher Scientific A13710-01
Pluronic F-127 Sigma Aldrich P2443
ReLeSR Stem Cell Technologies 5872
Plasticware
30 mm cage cube system ThorLabs CM1-DCH, CP33, ER1-P4 and ER2-P4
37 µm Reversible Strainer, large Stem Cell Technologies 27250
546 nm short-pass excitation filter Semrock FF01-546/SP-25
573 nm dichroic mirror Semrock FF573-Di01–25×36
594 nm long- pass emission filter Semrock BLP01-594R-25
594 nm long-pass excitation filter Semrock BLP01-594R-25
Blue (470nm) Rebel LED on a SinkPAD-II 10mm Square Base – 65 lm @ 700mA LuxeonStarLEDs SP-05-B4
Carclo 29.8° Frosted 10 mm Circular Beam Optic – Integrated Legs LuxeonStarLEDs 10413
Corning 60 mm Ultra-Low Attachment Culture Dish Corning 3261
Heat sink LuxeonStarLEDs LPD-19-10B
Optics
pluriStrainer 400 µm, 25 pack, sterile PluriSelect 43-50400-03
pluriStrainer 500 µm, 25 pack, sterile PluriSelect 43-50500-03
Red (627nm) Rebel LED on a SinkPAD-II 10mm Square Base – 65 lm @ 700mA LuxeonStarLEDs SP-05-R5
ring-actuated iris diaphragm ThorLabs SM1D12D
T-Cube LED drivers ThorLabs LEDD1B, KPS101
Molds
Female Threaded Hex Standoffs,  3 1/2" 10-32, Partially Threaded 1/2" McMaster 91920A046
Low-Profile C-Clamp McMaster 1705A12
Growth Factors
Adenosine 3′,5′-cyclic monophosphate Millipore Sigma A9501-1G
CHIR 99021, 10 mg Tocris 4423/10
DAPT 10 mg R&D Systems 2634/10
Human CNTF, research grade, 5 µg Miltenyl Biotec 130-096-336
Human Vitronectin Protein, CF R&D Systems 2349-VN-100
Human Vitronectin Protein, CF R&D Systems 2349-VN-100
IGF1 Recombinant Human Protein ThermoFisher Scientific PHG0078
Laminin mouse protein, natural ThermoFisher Scientific 23017015
Recombinant Human Agrin Protein R&D Systems 6624-AG-050
Recombinant Human GDNF Protein, CF 50ug R&D Systems 212-GD-050/CF
Recombinant Human Neurotrophin 3 100 ug Cell Sciences CRN500D
Recombinant Human Neurotrophin-4 Cell Sciences CRN501B
Recombinant Human Sonic Hedgehog/Shh (C24II) N-Terminus R&D Systems 1845-SH-100
Recombinant Human/Murine/Rat BDNF 50 ug Peprotech 450-02
Retinoic Acid, 50 mg Millipore Sigma R2625-50
SAG Smoothened Agonist Millipore Sigma 566660
SB431542 10 mg Stem Cell Technologies 72234
StemMACS LDN-193189 Miltenyl Biotec 130-103-925
Vitronectin from human plasma Millipore Sigma V8379-50UG
Y-27632 dihydrochloride Tocris 1254
Antibodies
α-actinin mAb (Mouse IgG1) Abcam ab9465
Choline Acetyltransferase (ChAT) (Goat) Millipore AB144P
Desmin mAb (Mouse IgG1) Dako M076029-2
Myosin Heavy Chain (MHC) (Mouse IgG2b) DSHB MF20
Equipment
Arduino Uno R3 Arduino A000066
Automated stage Applied scientific instrumentation MS- 2000 XYZ
Expanded plasma cleaner Harrick Plasma PDC-001 (115V)
Invitrogen Countess Automated Cell Counter Marshal Scientific I-CACC
IX-81 Inverted fluorescence microscope Olympus IX-ILL100LH
Series Stage Top Incubator System Tokai Hit STX TOKAI-HIT-STXG
Zyla 4.2 sCOMS Camera Andor Technology ZYLA-4.2P-CL10
Software
Arduino Software (IDE) Arduino IDE 1.8.19
Mastercam Mastercam Mastercam for Solidworks
Matlab Matlab R2021b
NIS elements Nikon Basic Research
Solidworks 3D CAD Solidworks Solidworks Standard

References

  1. Al-bassam, W., et al. Characteristics, incidence, and outcome of patients admitted to the intensive care unit with myasthenia gravis. Journal of Critical Care. 45, 90-94 (2018).
  2. Vila, O. F., Qu, Y., Vunjak-Novakovic, G. In vitro models of neuromuscular junctions and their potential for novel drug discovery and development. Expert Opinion on Drug Discovery. 15 (3), 307-317 (2020).
  3. Webster, R. G. Animal models of the neuromuscular junction, vitally informative for understanding function and the molecular mechanisms of congenital myasthenic syndromes. International Journal of Molecular Sciences. 19 (5), 1326 (2018).
  4. Jones, R. A., et al. Cellular and molecular anatomy of the human neuromuscular junction. Cell Reports. 21 (9), 2348-2356 (2017).
  5. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  6. Rao, L., Qian, Y., Khodabukus, A., Ribar, T., Bursac, N. Engineering human pluripotent stem cells into a functional skeletal muscle tissue. Nature Communications. 9 (1), 126 (2018).
  7. Madden, L., Juhas, M., Kraus, W. E., Truskey, G. A., Bursac, N. Bioengineered human myobundles mimic clinical responses of skeletal muscle to drugs. eLife. 4, 04885 (2015).
  8. Maury, Y., et al. Combinatorial analysis of developmental cues efficiently converts human pluripotent stem cells into multiple neuronal subtypes. Nature Biotechnology. 33 (1), 89-96 (2015).
  9. Bianchi, F., et al. Rapid and efficient differentiation of functional motor neurons from human iPSC for neural injury modelling. Stem Cell Research. 32, 126-134 (2018).
  10. Turan, S., Farruggio, A. P., Srifa, W., Day, J. W., Calos, M. P. Precise correction of disease mutations in induced pluripotent stem cells derived from patients with limb girdle muscular dystrophy. Molecular Therapy. 24 (4), 685-696 (2016).
  11. Ebert, A. D., Liang, P., Wu, J. C. Induced pluripotent stem cells as a disease modeling and drug screening platform. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 60 (4), 408-416 (2012).
  12. Lin, C. -. Y., et al. iPSC-derived functional human neuromuscular junctions model the pathophysiology of neuromuscular diseases. JCI Insight. 4 (18), (2021).
  13. Centeno, E. G. Z., Cimarosti, H., Bithell, A. 2D versus 3D human induced pluripotent stem cell-derived cultures for neurodegenerative disease modelling. Molecular Neurodegeneration. 13 (1), 27 (2018).
  14. Okano, T., Matsuda, T. Tissue engineered skeletal muscle: preparation of highly dense, highly oriented hybrid muscular tissues. Cell Transplantation. 7 (1), 71-82 (1998).
  15. Powell, C. A., Smiley, B. L., Mills, J., Vandenburgh, H. H. Mechanical stimulation improves tissue-engineered human skeletal muscle. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 283 (5), 1557-1565 (2002).
  16. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Advanced maturation of human cardiac tissue grown from pluripotent stem cells. Nature. 556 (7700), 239-243 (2018).
  17. Guo, X., et al. A human-based functional NMJ system for personalized ALS modeling and drug testing. Advanced Therapeutics. 3 (11), 2000133 (2020).
  18. Vila, O. F., et al. Bioengineered optogenetic model of human neuromuscular junction. Biomaterials. 276, 121033 (2021).
  19. Vila, O. F., et al. Quantification of human neuromuscular function through optogenetics. Theranostics. 9 (5), 1232-1246 (2019).
  20. Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. Millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neural activity. Nature Neuroscience. 8 (9), 1263-1268 (2005).
  21. Nagel, G., et al. Channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel. Proceedings of the National Academy of Sciences. 100 (24), 13940-13945 (2003).
  22. Steinbeck, J. A., et al. Functional connectivity under optogenetic control allows modeling of human neuromuscular disease. Cell Stem Cell. 18 (1), 134-143 (2016).
  23. Santhanam, N., et al. Stem cell derived phenotypic human neuromuscular junction model for dose response evaluation of therapeutics. Biomaterials. 166, 64-78 (2018).
  24. Phillips Ii, L. H. The epidemiology of myasthenia gravis. Annals of the New York Academy of Sciences. 998 (1), 407-412 (2003).
  25. Sanders, D. B., et al. Does change in acetylcholine receptor antibody level correlate with clinical change in myasthenia gravis. Muscle & Nerve. 49 (4), 483-486 (2014).
  26. Vernino, S. Unraveling the enigma of seronegative myasthenia gravis. JAMA Neurology. 72 (6), 630-631 (2015).
  27. Osaki, T., Uzel, S. G. M., Kamm, R. D. Microphysiological 3D model of amyotrophic lateral sclerosis (ALS) from human iPS-derived muscle cells and optogenetic motor neurons. Science Advances. , (2018).
  28. Paredes-Redondo, A., et al. Optogenetic modeling of human neuromuscular circuits in Duchenne muscular dystrophy with CRISPR and pharmacological corrections. Science Advances. 7 (37), (2021).
check_url/63759?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liberman, M., Chavez, M., Nash, T. R., Vila, O. F., Vunjak-Novakovic, G. Engineering and Characterization of an Optogenetic Model of the Human Neuromuscular Junction. J. Vis. Exp. (182), e63759, doi:10.3791/63759 (2022).

View Video