Här beskriver vi en ny metod för att belysa mekanismerna för cellulär immunitet mot Plasmodium under infektionsstadiet i blodet. Detta är en in vitro-analys som mäter infekterade röda blodkroppar som dödar av cytotoxiska lymfocyter.
Malaria är ett stort folkhälsoproblem och uppvisar mer än 200 miljoner fall per år över hela världen. Trots år av vetenskapliga ansträngningar är skyddande immunitet mot malaria fortfarande dåligt förstådd, främst på grund av metodologiska begränsningar av långsiktig Plasmodium-kultur, särskilt för Plasmodium vivax. De flesta studier har fokuserat på adaptivt immunitetsskydd mot malaria av antikroppar, som spelar en nyckelroll för att kontrollera malaria. Det sterila skydd som induceras av försvagade Plasmodium sporozoites-vacciner är emellertid relaterat till cellulärt svar, främst till cytotoxiska T-lymfocyter, såsom CD8+ och gamma delta T-celler (γδ T). Därför måste nya metoder utvecklas för att bättre förstå funktionerna i det cellulära immunsvaret och därmed stödja framtida terapi och vaccinutveckling. För att hitta en ny strategi för att analysera denna cellmedierade immunitet mot Plasmodium-blodstegsinfektion, etablerade vår grupp en in vitro-analys som mäter infekterade röda blodkroppar (iRBC) dödande av cytotoxiska lymfocyter. Denna analys kan användas för att studera cellulära immunsvarsmekanismer mot olika Plasmodium spp. i blodstadiet. Medfödda och adaptiva cytotoxiska immunceller kan direkt eliminera iRBC och den intracellulära parasiten i en effektor:målmekanism. Mål-iRBC är märkta för att utvärdera cellviabilitet och samodlade med effektorceller (CD8 + T, γδ T, NK-celler, etc.). Lysprocenten beräknas baserat på testade förhållanden, jämfört med en spontanlyskontroll i en flödescytometribaserad analys. I slutändan är denna dödsanalysmetod ett stort framsteg för att förstå cellmedierad immunitet mot malaria i blodstadiet, vilket hjälper till att avslöja nya potentiella terapeutiska mål och påskynda utvecklingen av malariavacciner.
Malaria är fortfarande en global hälsokris, med mer än 240 miljoner fall och 627 000 malariarelaterade dödsfall rapporterade 20201. Det finns för närvarande fem parasitarter som kan orsaka malaria hos människor, varav Plasmodium falciparum och Plasmodium vivax är de två vanligaste arterna. Under Plasmodium-infektion är levern eller det pre-erytrocytiska stadiet asymptomatiskt, och symtom uppträder endast under parasitens asexuella cykel i det erytrocytiska stadiet. Vid detta infektionsstadium släpps tusentals merozoiter som härrör från leverstadiet ut i blodomloppet och infekterar röda blodkroppar (RBC). I RBC differentieras parasiterna till trofozoiter och schizonter av schizogoni, tills schizonter brister erytrocyten och släpper ut nybildade merozoiter och upprepar denna blodcykel. Upprepade cykler av invasion, replikation och merozoitfrisättning resulterar i en exponentiell tillväxt av parasitpopulationen och utlöser slutligen sjukdomssymtom2.
En viktig utmaning för att studera immunsvaret mot malaria är att Plasmodium spp. som infekterar människor inte infekterar laboratoriedjurmodeller. Således måste Plasmodium-infekterade patientprover samlas in färskt och omedelbart bearbetas och analyseras. Men i malaria-endemiska områden är resurserna för att få tillgång till immunologiska och molekylära mekanismer begränsade. På grund av dessa begränsningar används gnagare ofta som experimentella modeller för att undersöka immunsvaret mot Plasmodium-infektion. Medan P. berghei och P. chabaudi ofta används som surrogat för P. falciparum-infektion, har den icke-dödliga stammen av P. yoelii 17XNL också många gemensamma drag med P. vivax, såsom retikulocytbegränsad infektion 3,4. Utvecklingen av Plasmodium in vitro-analyser, som kan användas för prover från humana eller djurmodeller, är värdefull för att få en bättre förståelse för patogenesen av malaria och jämföra det immunologiska svaret som framkallas av olika arter av parasiten.
Skyddande antimalarial immunitet är inte fullständigt förstådd varken vid pre-erytrocytiskt stadium eller blodstadiet. Det är känt att exponering för upprepade infektioner resulterar i partiell förvärvad immunitet, men steril immunitet utvecklas sällan5. I årtionden var anti-Plasmodium skyddande immunitet huvudsakligen associerad med induktion av neutraliserande eller opsoniserande antikroppar som förhindrar parasitinvasion av värdceller eller leder till fagocytos av antigenpresenterande celler, respektive6. Som ett resultat har de flesta ansträngningar för att producera antimalariala vacciner hittills förlitat sig på att inducera skyddande och långvariga antikroppar 7,8. Det sterila skydd som induceras genom vaccination med en försvagad sporozoit korrelerar emellertid direkt med aktiveringen och expansionen av cytotoxiska T-lymfocyter 8,9.
Nyligen har vissa studier av nyligen isolerade patientprover och in vitro-kulturer visat att medfödda eller adaptiva cytotoxiska immunceller som CD8 + T 10, γδ T11 och NK-celler12 direkt kan eliminera Plasmodium-infekterade RBC och dess intracellulära parasit på ett effektor: målförhållande sätt. Dessa banbrytande fynd definierade en helt ny immuneffektormekanism i samband med malaria. För att dissekera denna nya antimalariala immunitet är det viktigt att utforska cytotoxiska effektormekanismer hos mördarceller mot infekterade RBC (iRBC) vid naturlig infektion eller vaccination.
Här presenterar vi en in vitro-analys som mäter lymfocyternas cytotoxiska aktivitet mot malaria i blodstadiet. Denna analys kan sedan hjälpa till att belysa mekanismerna för det cellulära immunsvaret mot Plasmodium erytrocytstadiet. Målcellerna, iRBCs, märks med karboxifluoresceinsuccinimidylester (CFSE) för att utvärdera cellviabiliteten och samodlas sedan med effektorceller som cytotoxiska lymfocyter (CTL). Denna samodling utvärderas sedan med flödescytometri med hjälp av fluorescerande markörer för specifika celltyper. Slutligen beräknas procentandelen iRBC-lys med CTL genom att dividera det experimentella tillståndet med spontan bristning av RBC och spontanlyskontroll, som inträffar under inkubation utan effektorcellen. Sammantaget kan denna dödande analysmetod bidra till en bättre förståelse av cellmedierad malariaimmunitet.
Här beskriver vi en in vitro-analys för att mäta Plasmodium-infekterade röda blodkroppar dödande av cytotoxiska lymfocyter. Denna analys kan hjälpa till att belysa mekanismerna för cellulär skyddande immunitet mot malariaparasitens erytrocytiska stadium. Den stora fördelen med denna metod är att den ger en kvantitativ analys av cellmedierad avdödning av iRBC som kan användas för att ta itu med många frågor om hur immunceller interagerar med olika Plasmodium spp.
<p class="jov…The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Dr. Dhelio Pereira och medlemmarna i Research Center for Tropical Medicine of Rondônia (CEPEM) för malariapatientregistrering och blodinsamling och Felicia Ho för att hjälpa till med manuskriptrevision. Följande reagens erhölls genom BEI Resources, NIAID, NIH: Plasmodium yoelii subsp. yoelii, Strain 17XNL: PyGFP, MRA- 817, bidragit av Ana Rodriguez. Denna forskning stöddes av Lemann Brazil Research Fund, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq) – 437851/2018-4, stipendier (CJ, GC, CG) och Fundação de Amparo do Estado de Minas Gerais (FAPEMIG) – APQ-00653-16, APQ-02962-18; Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) – stipendium (LL).
100 μM cell strainer | Corning | 431752 | |
96 Well Round (U) Bottom Plate | Thermo Scientific | 12-565-65 | |
Anti-human CD235a (Glycophorin A) Antibody | Biolegend | 349114 | Used – APC anti-human CD235, dilution 1:100 |
Anti-human CD3 Antibody | Biolegend | 317314 | Used – PB anti-human CD3, dilution 1:200 |
Anti-human CD8 Antibody | Biolegend | 344714 | Used – APC/Cy7 anti-human CD8, dilution 1:200 |
Anti-human TCR Vδ2 Antibody | Biolegend | 331408 | Used – PE anti-human TCR Vδ2, dilution 1:200 |
Anti-mouse CD8a Antibody | Biolegend | 100733 | Used- PerCP/Cyanine5.5 anti-mouse CD8a, dilution 1:200 |
Anti-mouse TER-119/Erythroid Cells Antibody | Biolegend | 116223 | Used – APC/Cyanine7 anti-mouse TER-119, dilution 1:200 |
CellTrace CFSE Cell Proliferation Kit | Invitrogen | C34554 | |
Fetal Bovine Serum, qualified | Gibco | 26140079 | |
Ficoll-Paque Plus | Cytiva | 17144003 | Lymphocyte Separation Medium (LSM) |
Heparin Sodium Injection, USP | meithel pharma | 71228-400-003 | Used – 2000 USP units/2mL |
Isoflurane | Piramal critical care | 66794-0013-25 | |
LS MACS Column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
LSRFortessa Cell Analyzer | BD Bioscience | ||
Percoll | Cytiva | 17089101 | Density Gradient Separation Medium (DGSM) |
QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
RPMI 1640 Medium | Gibco | 11875093 | |
Sodium bicarbonate, powder, BioReagent | Sigma-Aldrich | S5761 | |
Syringe With Sub-Q needle – 1mL, 26 gauge; | BD | 14-829-10F | |
Vacutainer Heparin Tube Glass Green 10 ml | BD | 366480 |