Summary

Positronemissionstomografi Imaging af cellehandel: En metode til celleradiomærkning

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

Præsenteret her er en protokol til radiolabelceller med en positronemissionstomografi (PET) radioisotop, 89 Zr (t1/2 78,4 h), ved hjælp af en brugsklar radiomærkningssynthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin ([89Zr] Zr-DBN). Radioaktive mærkningsceller med [89Zr] Zr-DBN tillader ikke-invasiv sporing og billeddannelse af administrerede radioaktivt mærkede celler i kroppen med PET i op til 7 dage efter administration.

Abstract

Stamcelle- og kimære antigenreceptor (CAR) T-celleterapier fremstår som lovende behandlinger til organregenerering og som immunterapi til forskellige kræftformer. På trods af at der er gjort betydelige fremskridt på disse områder, er der stadig mere at lære for bedre at forstå farmakokinetikken og farmakodynamikken af de administrerede terapeutiske celler i det levende system. Til ikke-invasiv in vivo-sporing af celler med positronemissionstomografi (PET) er der udviklet en ny [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin ([89 Zr] Zr-DBN) -medieret celleradiomærkningsmetode ved hjælp af 89Zr (t1/2 78,4 timer). Denne protokol beskriver en [89Zr] Zr-DBN-medieret, klar til brug, radiomærkning synthon til direkte radiomærkning af forskellige celler, herunder mesenkymale stamceller, afstamningsstyrede kardiopoietiske stamceller, leverregenererende hepatocytter, hvide blodlegemer, melanomceller og dendritiske celler. Den udviklede metode muliggør ikke-invasiv PET-billeddannelse af cellehandel i op til 7 dage efter administration uden at påvirke arten eller funktionen af de radioaktivt mærkede celler. Derudover beskriver denne protokol en trinvis metode til radiosyntese af [89 Zr] Zr-DBN, biokompatibel formulering af [89 Zr] Zr-DBN, forberedelse af celler til radioaktiv mærkning og endelig radiomærkning af celler med [89Zr] Zr-DBN, herunder alle de indviklede detaljer, der er nødvendige for en vellykket radiomærkning af celler.

Introduction

Stamcelle- og kimær antigenreceptor (CAR) T-celleterapier vinder popularitet og er under aktiv undersøgelse til behandling af forskellige sygdomme, såsom myokardiesvigt1,2, retinal degeneration 2, makuladegeneration 2, diabetes 2, myokardieinfarkt3,4,5 og kræft 6,7,8,9,10. Blandt de to plausible tilgange til stamcelleterapier kan stamceller enten podes direkte på sygdomsstedet for at forårsage en terapeutisk reaktion eller forårsage ændringer i sygdomsstedets mikromiljø uden at klæbe til sygdomsstedet for at indlede en indirekte terapeutisk respons. En indirekte terapeutisk reaktion kan forårsage ændringer i mikromiljøet på sygdomsstedet ved at frigive faktorer, der ville reparere eller behandle sygdommen5. Disse tilgange til stamcelleterapier kunne evalueres ved ikke-invasiv billeddannelse af radioaktivt mærkede stamceller. Ikke-invasiv billeddannelse kunne korrelere optagelsen af de radioaktivt mærkede celler på sygdomsstedet med et terapeutisk respons for at dechiffrere det direkte versus indirekte terapeutiske respons.

Derudover udvikles immuncellebaserede terapier til behandling af forskellige kræftformer ved hjælp af CAR T-celle 6,7,8,9,10 og dendritisk celleimmunterapi 11,12. Mekanisk er T-celler i CAR T-celleimmunterapi 6,7,8,9,10 konstrueret til at udtrykke en epitop, der binder til et specifikt antigen på tumorer, der skal behandles. Disse konstruerede CAR T-celler binder ved administration til det specifikke antigen, der er til stede på tumorcellerne gennem en epitop-antigeninteraktion. Efter binding gennemgår de bundne CAR T-celler aktivering og prolifererer derefter og frigiver cytokiner, hvilket signalerer værtsens immunsystem til at angribe tumoren, der udtrykker det specifikke antigen. I modsætning hertil er dendritiske celler i tilfælde af dendritiske celleterapier11,12 konstrueret til at præsentere et specifikt kræftantigen på deres overflade. Disse konstruerede dendritiske celler, når de administreres, hjem til lymfeknuderne og binder til T-cellerne i lymfeknuderne. T-cellerne, efter binding til de specifikke kræftantigener på de administrerede dendritiske celler, gennemgår aktivering / proliferation og initierer et immunrespons fra værten mod tumoren, der udtrykker det specifikke antigen. Derfor er vurderingen af handel med administrerede CAR T-celler til et tumorsted9,10 og homing af dendritiske celler til lymfeknuderne11,12 mulig ved billeddannelse af radioaktivt mærkede CAR T-celler og dendritiske celler for at bestemme effekten af immunterapi. Desuden kan ikke-invasiv cellehandel bidrage til bedre at forstå det terapeutiske potentiale, afklare det direkte versus indirekte terapeutiske respons og forudsige og overvåge det terapeutiske respons af både stamcelle- og immuncellebaserede terapier.

Forskellige billeddannelsesmetoder til cellehandel er blevet undersøgt 3,4,9,10,12, herunder optisk billeddannelse, magnetisk resonansbilleddannelse (MRI), computertomografi med en fotonemission (SPECT) og positronemissionstomografi (PET). Hver af disse teknikker har sine egne fordele og ulemper. Blandt disse er PET den mest lovende modalitet på grund af dens kvantitative karakter og høje følsomhed, som er afgørende for pålidelig kvantificering af celler i billeddannelsesbaseret cellehandel 3,4,9,10.

Den positronemitterende radioisotop 89Zr, med en halveringstid på 78, 4 timer, er egnet til cellemærkning. Det tillader PET-billeddannelse af cellehandel i over 1 uge og produceres let af bredt tilgængelige, lavenergi medicinske cyklotroner 13,14,15,16,17. Derudover er en passende funktionaliseret, p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin (DFO-Bn-NCS) chelator kommercielt tilgængelig til syntese af en 89 Zr-mærket, klar til brug, cellemærkningssynthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin, også kendt som [89Zr] Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Princippet om [89 Zr] Zr-DBN-medieret cellemærkning er baseret på en reaktion mellem primære aminer af cellemembranproteiner og isothiocyanatdelen (NCS) af [89Zr] Zr-DBN for at producere en stabil kovalent thiourea-binding.

[89Zr] Zr-DBN-baseret cellemærkning og billeddannelse er blevet offentliggjort for at spore en række forskellige celler, herunder stamceller 18,23,25, dendritiske celler18, kardiopoietiske stamceller19, decidual stromale celler 20, knoglemarvsafledte makrofager 20, mononukleære celler i perifert blod 20, Jurkat / CAR T-celler 21, hepatocytter 22,24 og hvide blodlegemer 25. Følgende protokol indeholder trinvise metoder til forberedelse og celleradiomærkning med [89Zr] Zr-DBN og beskriver ændringer, der kan være nødvendige i radiomærkningsprotokollen for en bestemt celletype. For større klarhed er metoden til celleradiomærkning præsenteret her opdelt i fire sektioner. Det første afsnit omhandler forberedelsen af [89 Zr]Zr-DBN ved chelatering af 89Zr med DFO-Bn-NCS. Det andet afsnit beskriver fremstillingen af en biokompatibel formulering af [89Zr]Zr-DBN, der let kan anvendes til celleradiomærkning. Det tredje afsnit dækker de trin, der er nødvendige for forkonditionering af celler til radioaktiv mærkning. Forkonditioneringen af celler involverer vask af cellerne med proteinfri fosfatbufret saltvand (PBS) og HEPES-bufret Hanks afbalanceret saltopløsning (H-HBSS) for at fjerne eksterne proteiner, som kan forstyrre eller konkurrere med reaktionen af [89Zr] Zr-DBN med primære aminer til stede på celleoverfladeproteinerne under radiomærkning. Det sidste afsnit indeholder trin, der er involveret i den faktiske radioaktive mærkning af cellerne og kvalitetskontrolanalyse.

Protocol

Dendritiske celler og melanomceller blev opnået kommercielt18. Hepatocytter blev isoleret fra leveren hos svin efter laparoskopisk partiel hepatektomi22,24. Stamceller blev isoleret fra knoglemarvsaspirater18,19,26. De fedtvævsafledte stamceller blev opnået fra Human Cellular Therapy Laboratory, Mayo Clinic Rochester23. …

Representative Results

De repræsentative resultater præsenteret i dette manuskript blev samlet fra de tidligere [89Zr] Zr-DBN syntese og celle radiomærkning undersøgelser 18,19,22,23,24,25. Kort fortalt kan 89Zr med succes kompleksiseres med DFO-Bn-NCS på ~30-60 min ved 25-37 °C ved hjælp af 7,5-15 μg DFO-Bn-NCS (<stro…

Discussion

Følgende er kritiske trin i protokollen, der har brug for optimering til effektiv celleradiomærkning. I protokoltrin 1.2 og 1.3 skal der afhængigt af det anvendte volumen på [89 Zr]Zr(HPO 4)2 eller [89Zr]ZrCl4 anvendes et passende volumen (mikroliter) base; 1,0 MK2CO3 opløsning skal anvendes til neutralisering af [89 Zr]Zr(HPO 4)2 og 1,0 M Na 2 CO3 opløsning til neutralisering af [89Zr]ZrCl4…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 og DOE DE-SC0008947 tilskud, Det Internationale Atomenergiagentur, Wien, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology og Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alle figurer blev oprettet ved hjælp af BioRender.com.

Materials

Acetonitrile Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A996-4
Alpha Minimum Essential Medium Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 12571063
Anion exchange column Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany 731876 Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge
Conical centrifuge tubes (15 mL) Corning Inc., Glendale, AZ, USA 352096 Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes
Dendritic cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-11904
DFO-Bn-NCS Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA B-705 p-SCN-Bn-Deferoxamine
DMSO Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 276855
Dose calibrator Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA 5130-3234 CRC -55tR Dose Calibrator 
Dulbecco’s modified Eagle’s medium  The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2002
Fetal Bovine Serum (FBS) The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2020
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 14025092 For preparation of H-HBSS
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A508P212
Melanoma cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-6475
Methanol Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 34860
Microcentrifuge tube Eppendorf, Hamburg, Germany 30108442 Protein LoBind microcentrifuge tube
Murine GM-CSF R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA 415-ML-010
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 15140-122
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 10010023 For washing cells
Saline Covidien LLC, Mansfield, MA, USA 1020 0.9% Sterile Saline Solution
Shaker  Eppendorf, Hamburg, Germany T1317 Thermomixer
Silica gel-rad-TLC paper sheet  Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA SGI0001 iTLC-SG

References

  1. Bhawnani, N., et al. Effectiveness of stem cell therapies in improving clinical outcomes in patients with heart failure. Cureus. 13 (8), e17236 (2021).
  2. Zakrzewski, W., Dobrzynski, M., Szymonowicz, M., Rybak, Z. Stem cells: past, present, and future. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 68 (2019).
  3. Bukhari, A. B., Dutta, S., De, A. Image guidance in stem cell therapeutics: unfolding the blindfold. Current Drug Targets. 16 (6), 658-671 (2015).
  4. Momeni, A., Neelamegham, S., Parashurama, N. Current challenges for the targeted delivery and molecular imaging of stem cells in animal models. Bioengineered. 8 (4), 316-324 (2017).
  5. Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy. Circulation Research. 103 (11), 1204-1219 (2008).
  6. D’Aloia, M. M., Zizzari, I. G., Sacchetti, B., Pierelli, L., Alimandi, M. CAR-T cells: the long and winding road to solid tumors. Cell Death & Disease. 9 (3), 282 (2018).
  7. Zhang, Q., et al. CAR-T cell therapy in cancer: tribulations and road ahead. Journal of Immunology Research. 2020, 1924379 (2020).
  8. Sterner, R. C., Sterner, R. M. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer Journal. 11 (4), 69 (2021).
  9. Shao, F., et al. Radionuclide-based molecular imaging allows CAR-T cellular visualization and therapeutic monitoring. Theranostics. 11 (14), 6800-6817 (2021).
  10. Sakemura, R., Can, I., Siegler, E. L., Kenderian, S. S. In vivo CART cell imaging: Paving the way for success in CART cell therapy. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 625-633 (2021).
  11. Wang, Y., et al. Dendritic cell biology and its role in tumor immunotherapy. Journal of Hematology & Oncology. 13 (1), 107 (2020).
  12. Bulte, J. W. M., Shakeri-Zadeh, A. In vivo MRI tracking of tumor vaccination and antigen presentation by dendritic cells. Molecular Imaging and Biology. 24 (2), 198-207 (2022).
  13. Holland, J. P., Sheh, Y., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  14. Larenkov, A., et al. Preparation of zirconium-89 solutions for radiopharmaceutical purposes: interrelation between formulation, radiochemical purity, stability and biodistribution. Molecules. 24 (8), 1534 (2019).
  15. Pandey, M. K., et al. A new solid target design for the production of 89Zr and radiosynthesis of high molar activity [89Zr]Zr-DBN. American Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 12 (1), 15-24 (2022).
  16. Pandey, M. K., et al. Improved production and processing of 89Zr using a solution target. Nuclear Medicine and Biology. 43 (1), 97-100 (2016).
  17. Pandey, M. K., Engelbrecht, H. P., Byrne, J. P., Packard, A. B., DeGrado, T. R. Production of 89Zr via the 89Y(p,n)89Zr reaction in aqueous solution: effect of solution composition on in-target chemistry. Nuclear Medicine and Biology. 41 (4), 309-316 (2014).
  18. Bansal, A., et al. Novel 89Zr cell labeling approach for PET-based cell trafficking studies. EJNMMI Research. 5, 19 (2015).
  19. Bansal, A., et al. 89Zr]Zr-DBN labeled cardiopoietic stem cells proficient for heart failure. Nuclear Medicine and Biology. 90-91, 23-30 (2020).
  20. Friberger, I., et al. Optimisation of the synthesis and cell labelling conditions for [89Zr]Zr-oxine and [89Zr]Zr-DFO-NCS: a direct in vitro comparison in cell types with distinct therapeutic applications. Molecular Imaging and Biology. 23 (6), 952-962 (2021).
  21. Lee, S. H., et al. Feasibility of real-time in vivo 89Zr-DFO-labeled CAR T-cell trafficking using PET imaging. PLoS One. 15 (1), e0223814 (2020).
  22. Nicolas, C. T., et al. Hepatocyte spheroids as an alternative to single cells for transplantation after ex vivo gene therapy in mice and pig models. Surgery. 164 (3), 473-481 (2018).
  23. Yang, B., et al. Tracking and therapeutic value of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cell transplantation in reducing venous neointimal hyperplasia associated with arteriovenous fistula. Radiology. 279 (2), 513-522 (2016).
  24. Nicolas, C. T., et al. Ex vivo cell therapy by ectopic hepatocyte transplantation treats the porcine tyrosinemia model of acute liver failure. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 18, 738-750 (2020).
  25. Bansal, A., Sharma, S., Klasen, B., Rosch, F., Pandey, M. K. Evaluation of different 89Zr-labeled synthons for direct labeling and tracking of white blood cells and stem cells in healthy athymic mice. Scientific Reports. 12 (1), 15646 (2022).
  26. Behfar, A., et al. Guided cardiopoiesis enhances therapeutic benefit of bone marrow human mesenchymal stem cells in chronic myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 56 (9), 721-734 (2010).
  27. Charoenphun, P., et al. 89Zr]oxinate4 for long-term in vivo cell tracking by positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 42 (2), 278-287 (2015).
  28. Sato, N., et al. In vivo tracking of adoptively transferred natural killer cells in rhesus macaques using 89zirconium-oxine cell labeling and PET imaging. Clinical Cancer Research. 26 (11), 2573-2581 (2020).
  29. Volpe, A., Pillarsetty, N. V. K., Lewis, J. S., Ponomarev, V. Applications of nuclear-based imaging in gene and cell therapy: probe considerations. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 447-458 (2021).
  30. Fogli, L. K., et al. Challenges and next steps in the advancement of immunotherapy: summary of the 2018 and 2020 National Cancer Institute workshops on cell-based immunotherapy for solid tumors. Journal for Immunotherapy of Cancer. 9 (7), e003048 (2021).
  31. Li, X., Hacker, M. Molecular imaging in stem cell-based therapies of cardiac diseases. Advanced Drug Delivery Reviews. 120, 71-88 (2017).
  32. Puges, M., et al. Retrospective study comparing WBC scan and 18F-FDG PET/CT in patients with suspected prosthetic vascular graft infection. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 57 (6), 876-884 (2019).
  33. Butterfield, L. H. Dendritic cells in cancer immunotherapy clinical trials: are we making progress. Frontiers in Immunology. 4, 454 (2013).
  34. de Vries, I. J. M., et al. Magnetic resonance tracking of dendritic cells in melanoma patients for monitoring of cellular therapy. Nature Biotechnology. 23 (11), 1407-1413 (2005).
  35. Gosmann, D., et al. Promise and challenges of clinical non-invasive T-cell tracking in the era of cancer immunotherapy. EJNMMI Research. 12 (1), 5 (2022).
check_url/64117?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bansal, A., DeGrado, T. R., Pandey, M. K. Positron Emission Tomography Imaging of Cell Trafficking: A Method of Cell Radiolabeling. J. Vis. Exp. (200), e64117, doi:10.3791/64117 (2023).

View Video