Præsenteret her er en protokol til radiolabelceller med en positronemissionstomografi (PET) radioisotop, 89 Zr (t1/2 78,4 h), ved hjælp af en brugsklar radiomærkningssynthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin ([89Zr] Zr-DBN). Radioaktive mærkningsceller med [89Zr] Zr-DBN tillader ikke-invasiv sporing og billeddannelse af administrerede radioaktivt mærkede celler i kroppen med PET i op til 7 dage efter administration.
Stamcelle- og kimære antigenreceptor (CAR) T-celleterapier fremstår som lovende behandlinger til organregenerering og som immunterapi til forskellige kræftformer. På trods af at der er gjort betydelige fremskridt på disse områder, er der stadig mere at lære for bedre at forstå farmakokinetikken og farmakodynamikken af de administrerede terapeutiske celler i det levende system. Til ikke-invasiv in vivo-sporing af celler med positronemissionstomografi (PET) er der udviklet en ny [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin ([89 Zr] Zr-DBN) -medieret celleradiomærkningsmetode ved hjælp af 89Zr (t1/2 78,4 timer). Denne protokol beskriver en [89Zr] Zr-DBN-medieret, klar til brug, radiomærkning synthon til direkte radiomærkning af forskellige celler, herunder mesenkymale stamceller, afstamningsstyrede kardiopoietiske stamceller, leverregenererende hepatocytter, hvide blodlegemer, melanomceller og dendritiske celler. Den udviklede metode muliggør ikke-invasiv PET-billeddannelse af cellehandel i op til 7 dage efter administration uden at påvirke arten eller funktionen af de radioaktivt mærkede celler. Derudover beskriver denne protokol en trinvis metode til radiosyntese af [89 Zr] Zr-DBN, biokompatibel formulering af [89 Zr] Zr-DBN, forberedelse af celler til radioaktiv mærkning og endelig radiomærkning af celler med [89Zr] Zr-DBN, herunder alle de indviklede detaljer, der er nødvendige for en vellykket radiomærkning af celler.
Stamcelle- og kimær antigenreceptor (CAR) T-celleterapier vinder popularitet og er under aktiv undersøgelse til behandling af forskellige sygdomme, såsom myokardiesvigt1,2, retinal degeneration 2, makuladegeneration 2, diabetes 2, myokardieinfarkt3,4,5 og kræft 6,7,8,9,10. Blandt de to plausible tilgange til stamcelleterapier kan stamceller enten podes direkte på sygdomsstedet for at forårsage en terapeutisk reaktion eller forårsage ændringer i sygdomsstedets mikromiljø uden at klæbe til sygdomsstedet for at indlede en indirekte terapeutisk respons. En indirekte terapeutisk reaktion kan forårsage ændringer i mikromiljøet på sygdomsstedet ved at frigive faktorer, der ville reparere eller behandle sygdommen5. Disse tilgange til stamcelleterapier kunne evalueres ved ikke-invasiv billeddannelse af radioaktivt mærkede stamceller. Ikke-invasiv billeddannelse kunne korrelere optagelsen af de radioaktivt mærkede celler på sygdomsstedet med et terapeutisk respons for at dechiffrere det direkte versus indirekte terapeutiske respons.
Derudover udvikles immuncellebaserede terapier til behandling af forskellige kræftformer ved hjælp af CAR T-celle 6,7,8,9,10 og dendritisk celleimmunterapi 11,12. Mekanisk er T-celler i CAR T-celleimmunterapi 6,7,8,9,10 konstrueret til at udtrykke en epitop, der binder til et specifikt antigen på tumorer, der skal behandles. Disse konstruerede CAR T-celler binder ved administration til det specifikke antigen, der er til stede på tumorcellerne gennem en epitop-antigeninteraktion. Efter binding gennemgår de bundne CAR T-celler aktivering og prolifererer derefter og frigiver cytokiner, hvilket signalerer værtsens immunsystem til at angribe tumoren, der udtrykker det specifikke antigen. I modsætning hertil er dendritiske celler i tilfælde af dendritiske celleterapier11,12 konstrueret til at præsentere et specifikt kræftantigen på deres overflade. Disse konstruerede dendritiske celler, når de administreres, hjem til lymfeknuderne og binder til T-cellerne i lymfeknuderne. T-cellerne, efter binding til de specifikke kræftantigener på de administrerede dendritiske celler, gennemgår aktivering / proliferation og initierer et immunrespons fra værten mod tumoren, der udtrykker det specifikke antigen. Derfor er vurderingen af handel med administrerede CAR T-celler til et tumorsted9,10 og homing af dendritiske celler til lymfeknuderne11,12 mulig ved billeddannelse af radioaktivt mærkede CAR T-celler og dendritiske celler for at bestemme effekten af immunterapi. Desuden kan ikke-invasiv cellehandel bidrage til bedre at forstå det terapeutiske potentiale, afklare det direkte versus indirekte terapeutiske respons og forudsige og overvåge det terapeutiske respons af både stamcelle- og immuncellebaserede terapier.
Forskellige billeddannelsesmetoder til cellehandel er blevet undersøgt 3,4,9,10,12, herunder optisk billeddannelse, magnetisk resonansbilleddannelse (MRI), computertomografi med en fotonemission (SPECT) og positronemissionstomografi (PET). Hver af disse teknikker har sine egne fordele og ulemper. Blandt disse er PET den mest lovende modalitet på grund af dens kvantitative karakter og høje følsomhed, som er afgørende for pålidelig kvantificering af celler i billeddannelsesbaseret cellehandel 3,4,9,10.
Den positronemitterende radioisotop 89Zr, med en halveringstid på 78, 4 timer, er egnet til cellemærkning. Det tillader PET-billeddannelse af cellehandel i over 1 uge og produceres let af bredt tilgængelige, lavenergi medicinske cyklotroner 13,14,15,16,17. Derudover er en passende funktionaliseret, p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin (DFO-Bn-NCS) chelator kommercielt tilgængelig til syntese af en 89 Zr-mærket, klar til brug, cellemærkningssynthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamin, også kendt som [89Zr] Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Princippet om [89 Zr] Zr-DBN-medieret cellemærkning er baseret på en reaktion mellem primære aminer af cellemembranproteiner og isothiocyanatdelen (NCS) af [89Zr] Zr-DBN for at producere en stabil kovalent thiourea-binding.
[89Zr] Zr-DBN-baseret cellemærkning og billeddannelse er blevet offentliggjort for at spore en række forskellige celler, herunder stamceller 18,23,25, dendritiske celler18, kardiopoietiske stamceller19, decidual stromale celler 20, knoglemarvsafledte makrofager 20, mononukleære celler i perifert blod 20, Jurkat / CAR T-celler 21, hepatocytter 22,24 og hvide blodlegemer 25. Følgende protokol indeholder trinvise metoder til forberedelse og celleradiomærkning med [89Zr] Zr-DBN og beskriver ændringer, der kan være nødvendige i radiomærkningsprotokollen for en bestemt celletype. For større klarhed er metoden til celleradiomærkning præsenteret her opdelt i fire sektioner. Det første afsnit omhandler forberedelsen af [89 Zr]Zr-DBN ved chelatering af 89Zr med DFO-Bn-NCS. Det andet afsnit beskriver fremstillingen af en biokompatibel formulering af [89Zr]Zr-DBN, der let kan anvendes til celleradiomærkning. Det tredje afsnit dækker de trin, der er nødvendige for forkonditionering af celler til radioaktiv mærkning. Forkonditioneringen af celler involverer vask af cellerne med proteinfri fosfatbufret saltvand (PBS) og HEPES-bufret Hanks afbalanceret saltopløsning (H-HBSS) for at fjerne eksterne proteiner, som kan forstyrre eller konkurrere med reaktionen af [89Zr] Zr-DBN med primære aminer til stede på celleoverfladeproteinerne under radiomærkning. Det sidste afsnit indeholder trin, der er involveret i den faktiske radioaktive mærkning af cellerne og kvalitetskontrolanalyse.
Følgende er kritiske trin i protokollen, der har brug for optimering til effektiv celleradiomærkning. I protokoltrin 1.2 og 1.3 skal der afhængigt af det anvendte volumen på [89 Zr]Zr(HPO 4)2 eller [89Zr]ZrCl4 anvendes et passende volumen (mikroliter) base; 1,0 MK2CO3 opløsning skal anvendes til neutralisering af [89 Zr]Zr(HPO 4)2 og 1,0 M Na 2 CO3 opløsning til neutralisering af [89Zr]ZrCl4…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev støttet af NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 og DOE DE-SC0008947 tilskud, Det Internationale Atomenergiagentur, Wien, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology og Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alle figurer blev oprettet ved hjælp af BioRender.com.
Acetonitrile | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | A996-4 | |
Alpha Minimum Essential Medium | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 12571063 | |
Anion exchange column | Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany | 731876 | Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge |
Conical centrifuge tubes (15 mL) | Corning Inc., Glendale, AZ, USA | 352096 | Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes |
Dendritic cells | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | CRL-11904 | |
DFO-Bn-NCS | Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA | B-705 | p-SCN-Bn-Deferoxamine |
DMSO | Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO | 276855 | |
Dose calibrator | Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA | 5130-3234 | CRC -55tR Dose Calibrator |
Dulbecco’s modified Eagle’s medium | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | 30-2002 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | 30-2020 | |
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 14025092 | For preparation of H-HBSS |
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | A508P212 | |
Melanoma cells | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | CRL-6475 | |
Methanol | Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO | 34860 | |
Microcentrifuge tube | Eppendorf, Hamburg, Germany | 30108442 | Protein LoBind microcentrifuge tube |
Murine GM-CSF | R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA | 415-ML-010 | |
Penicillin/Streptomycin | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 15140-122 | |
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 10010023 | For washing cells |
Saline | Covidien LLC, Mansfield, MA, USA | 1020 | 0.9% Sterile Saline Solution |
Shaker | Eppendorf, Hamburg, Germany | T1317 | Thermomixer |
Silica gel-rad-TLC paper sheet | Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA | SGI0001 | iTLC-SG |