Presentert her er en protokoll til radiolabel celler med en positronemisjonstomografi (PET) radioisotop, 89 Zr (t1/2 78,4 h), ved hjelp av en klar til bruk radiomerking synton, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine ([89Zr] Zr-DBN). Radiomerking av celler med [89Zr]Zr-DBN tillater ikke-invasiv sporing og avbildning av administrerte radiomerkede celler i kroppen med PET i opptil 7 dager etter administrering.
Stamcelle- og kimær antigenreseptor (CAR) T-celleterapier fremstår som lovende terapeutiske midler for organregenerering og som immunterapi for ulike kreftformer. Til tross for at det er gjort betydelige fremskritt på disse områdene, er det fortsatt mer å lære for bedre å forstå farmakokinetikken og farmakodynamikken til de administrerte terapeutiske cellene i det levende systemet. For ikke-invasiv, in vivo sporing av celler med positronemisjonstomografi (PET), er det utviklet en ny [89 Zr] Zr-p-isotiocyanatobenzyl-desferrioksamin ([89 Zr]Zr-DBN)-mediert celleradiomerkingsmetode ved bruk av 89Zr (t1/2 78,4 timer). Den foreliggende protokollen beskriver en [89Zr]Zr-DBN-mediert, klar til bruk, radiomerkingssynthon for direkte radiomerking av forskjellige celler, inkludert mesenkymale stamceller, avstamningsveiledede kardiopoietiske stamceller, leverregenererende hepatocytter, hvite blodlegemer, melanomceller og dendrittiske celler. Den utviklede metoden muliggjør ikke-invasiv PET-avbildning av celletrafikk i opptil 7 dager etter administrering uten å påvirke naturen eller funksjonen til de radiomerkede cellene. I tillegg beskriver denne protokollen en trinnvis metode for radiosyntese av [89 Zr] Zr-DBN, biokompatibel formulering av [89 Zr] Zr-DBN, fremstilling av celler for radiomerking, og til slutt radiomerking av celler med [89Zr] Zr-DBN, inkludert alle de intrikate detaljene som trengs for vellykket radiomerking av celler.
Stamcelle- og kimær antigenreseptor (CAR) T-celleterapier blir stadig mer populære og er under aktiv etterforskning for behandling av ulike sykdommer, som myokardsvikt1,2, retinal degenerasjon 2, makuladegenerasjon 2, diabetes 2, hjerteinfarkt3,4,5 og kreft 6,7,8,9,10. Blant de to plausible tilnærmingene til stamcellebehandlinger, kan stamceller enten bli direkte innpodet på sykdomsstedet for å forårsake en terapeutisk respons, eller forårsake endringer i mikromiljøet på sykdomsstedet uten å feste seg til sykdomsstedet for å initiere en indirekte terapeutisk respons. En indirekte terapeutisk respons kan forårsake endringer i mikromiljøet på sykdomsstedet ved å frigjøre faktorer som vil reparere eller behandle sykdommen5. Disse tilnærmingene til stamcellebehandlinger kan evalueres ved ikke-invasiv avbildning av radiomerkede stamceller. Ikke-invasiv avbildning kan korrelere opptaket av de radiomerkede cellene på sykdomsstedet med en terapeutisk respons for å dechiffrere den direkte versus indirekte terapeutiske responsen.
I tillegg utvikles immuncellebaserte terapier for å behandle ulike kreftformer ved bruk av CAR T-celle 6,7,8,9,10 og dendrittisk celleimmunterapi 11,12. Mekanistisk, i CAR T-celle immunterapi 6,7,8,9,10, er T-celler konstruert for å uttrykke en epitop som binder seg til et spesifikt antigen på svulster som må behandles. Disse konstruerte CAR T-cellene, ved administrering, binder seg til det spesifikke antigenet som er tilstede på tumorcellene gjennom en epitop-antigen-interaksjon. Etter binding gjennomgår de bundne CAR T-cellene aktivering og prolifererer og frigjør cytokiner, som signaliserer vertens immunsystem for å angripe svulsten som uttrykker det spesifikke antigenet. I kontrast, når det gjelder dendritiske celleterapier11,12, er dendrittiske celler konstruert for å presentere et spesifikt kreftantigen på overflaten. Disse konstruerte dendrittiske cellene, når de administreres, hjem til lymfeknuter og binder seg til T-cellene i lymfeknuter. T-cellene, ved binding til de spesifikke kreftantigenene på de administrerte dendrittiske cellene, gjennomgår aktivering / proliferasjon og initierer en immunrespons av verten mot svulsten som uttrykker det spesifikke antigenet. Derfor er vurderingen av trafikk av administrerte CAR T-celler til et tumorsted 9,10 og homing av dendrittiske celler til lymfeknuter11,12 mulig ved å avbilde radiomerkede CAR T-celler og dendrittiske celler for å bestemme effekten av immunterapi. Videre kan ikke-invasiv cellehandel bidra til å bedre forstå det terapeutiske potensialet, klargjøre den direkte versus indirekte terapeutiske responsen, og forutsi og overvåke den terapeutiske responsen til både stamcelle- og immuncellebaserte terapier.
Ulike bildebehandlingsmodaliteter for cellehandel har blitt utforsket 3,4,9,10,12, inkludert optisk bildebehandling, magnetisk resonansavbildning (MRI), enkelt-foton emisjonscomputertomografi (SPECT) og positronemisjonstomografi (PET). Hver av disse teknikkene har sine egne fordeler og ulemper. Blant disse er PET den mest lovende modaliteten på grunn av sin kvantitative natur og høye følsomhet, som er avgjørende for pålitelig kvantifisering av celler i bildebasert cellehandel 3,4,9,10.
Den positronemitterende radioisotopen 89Zr, med en halveringstid på 78,4 timer, er egnet for cellemerking. Det tillater PET-avbildning av cellehandel i over 1 uke og produseres lett av allment tilgjengelige, medisinske syklotroner med lav energi 13,14,15,16,17. I tillegg er en passende funksjonalisert, p-isotiocyanatobenzyl-desferrioxamin (DFO-Bn-NCS) chelator kommersielt tilgjengelig for syntesen av en 89 Zr-merket, klar til bruk, cellemerking synthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine, også kjent som [89Zr] Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Prinsippet for [89 Zr]Zr-DBN-mediert cellemerking er basert på en reaksjon mellom primære aminer av cellemembranproteiner og isotiocyanatdelen (NCS) av [89Zr]Zr-DBN for å produsere en stabil kovalent tioureabinding.
[89Zr] Zr-DBN-basert cellemerking og avbildning har blitt publisert for å spore en rekke forskjellige celler, inkludert stamceller 18,23,25, dendrittiske celler18, kardiopoietiske stamceller19, decidual stromale celler 20, benmargsavledede makrofager 20, mononukleære celler i perifert blod 20, Jukat / CAR T-celler 21, hepatocytter22,24 og hvite blodlegemer 25. Følgende protokoll gir trinnvise metoder for fremstilling og celleradiomerking med [89Zr]Zr-DBN og beskriver endringer som kan være nødvendige i radiomerkingsprotokollen for en bestemt celletype. For større klarhet er metoden for cellemerking presentert her delt inn i fire seksjoner. Den første delen omhandler utarbeidelsen av [89 Zr]Zr-DBN ved å chelatere 89Zr med DFO-Bn-NCS. Den andre delen beskriver fremstillingen av en biokompatibel formulering av [89Zr]Zr-DBN som lett kan brukes til celleradiomerking. Den tredje delen dekker trinnene som er nødvendige for forkondisjonering av celler for radiomerking. Forkondisjoneringen av celler innebærer å vaske cellene med proteinfritt fosfatbufret saltvann (PBS) og HEPES bufret Hanks balansert saltløsning (H-HBSS) for å fjerne eksterne proteiner, som kan forstyrre eller konkurrere med reaksjonen av [89Zr] Zr-DBN med primære aminer tilstede på celleoverflateproteiner under radiomerking. Den siste delen gir trinn involvert i selve radiomerkingen av cellene og kvalitetskontrollanalyse.
Følgende er kritiske trinn i protokollen som trenger optimalisering for effektiv cellemerking. I protokolltrinn 1.2 og 1.3, avhengig av volumet på [89 Zr]Zr(HPO 4)2 eller [89Zr]ZrCl4 anvendt, må et passende volum (mikroliter) base brukes; 1,0 M K 2 CO 3løsning må brukes til nøytralisering av [89 Zr] Zr (HPO 4) 2 og 1,0 M Na2CO 3 løsning for nøytralisering av [89Zr] ZrCl4 for å oppn?…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 og DOE DE-SC0008947 tilskudd, International Atomic Energy Agency, Wien, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology, og Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alle figurene ble laget ved hjelp av BioRender.com.
Acetonitrile | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | A996-4 | |
Alpha Minimum Essential Medium | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 12571063 | |
Anion exchange column | Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany | 731876 | Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge |
Conical centrifuge tubes (15 mL) | Corning Inc., Glendale, AZ, USA | 352096 | Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes |
Dendritic cells | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | CRL-11904 | |
DFO-Bn-NCS | Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA | B-705 | p-SCN-Bn-Deferoxamine |
DMSO | Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO | 276855 | |
Dose calibrator | Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA | 5130-3234 | CRC -55tR Dose Calibrator |
Dulbecco’s modified Eagle’s medium | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | 30-2002 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | 30-2020 | |
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 14025092 | For preparation of H-HBSS |
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | A508P212 | |
Melanoma cells | The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA | CRL-6475 | |
Methanol | Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO | 34860 | |
Microcentrifuge tube | Eppendorf, Hamburg, Germany | 30108442 | Protein LoBind microcentrifuge tube |
Murine GM-CSF | R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA | 415-ML-010 | |
Penicillin/Streptomycin | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 15140-122 | |
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ | Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA | 10010023 | For washing cells |
Saline | Covidien LLC, Mansfield, MA, USA | 1020 | 0.9% Sterile Saline Solution |
Shaker | Eppendorf, Hamburg, Germany | T1317 | Thermomixer |
Silica gel-rad-TLC paper sheet | Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA | SGI0001 | iTLC-SG |