Summary

Positronutslippstomografi Avbildning av cellehandel: En metode for celleradiomerking

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

Presentert her er en protokoll til radiolabel celler med en positronemisjonstomografi (PET) radioisotop, 89 Zr (t1/2 78,4 h), ved hjelp av en klar til bruk radiomerking synton, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine ([89Zr] Zr-DBN). Radiomerking av celler med [89Zr]Zr-DBN tillater ikke-invasiv sporing og avbildning av administrerte radiomerkede celler i kroppen med PET i opptil 7 dager etter administrering.

Abstract

Stamcelle- og kimær antigenreseptor (CAR) T-celleterapier fremstår som lovende terapeutiske midler for organregenerering og som immunterapi for ulike kreftformer. Til tross for at det er gjort betydelige fremskritt på disse områdene, er det fortsatt mer å lære for bedre å forstå farmakokinetikken og farmakodynamikken til de administrerte terapeutiske cellene i det levende systemet. For ikke-invasiv, in vivo sporing av celler med positronemisjonstomografi (PET), er det utviklet en ny [89 Zr] Zr-p-isotiocyanatobenzyl-desferrioksamin ([89 Zr]Zr-DBN)-mediert celleradiomerkingsmetode ved bruk av 89Zr (t1/2 78,4 timer). Den foreliggende protokollen beskriver en [89Zr]Zr-DBN-mediert, klar til bruk, radiomerkingssynthon for direkte radiomerking av forskjellige celler, inkludert mesenkymale stamceller, avstamningsveiledede kardiopoietiske stamceller, leverregenererende hepatocytter, hvite blodlegemer, melanomceller og dendrittiske celler. Den utviklede metoden muliggjør ikke-invasiv PET-avbildning av celletrafikk i opptil 7 dager etter administrering uten å påvirke naturen eller funksjonen til de radiomerkede cellene. I tillegg beskriver denne protokollen en trinnvis metode for radiosyntese av [89 Zr] Zr-DBN, biokompatibel formulering av [89 Zr] Zr-DBN, fremstilling av celler for radiomerking, og til slutt radiomerking av celler med [89Zr] Zr-DBN, inkludert alle de intrikate detaljene som trengs for vellykket radiomerking av celler.

Introduction

Stamcelle- og kimær antigenreseptor (CAR) T-celleterapier blir stadig mer populære og er under aktiv etterforskning for behandling av ulike sykdommer, som myokardsvikt1,2, retinal degenerasjon 2, makuladegenerasjon 2, diabetes 2, hjerteinfarkt3,4,5 og kreft 6,7,8,9,10. Blant de to plausible tilnærmingene til stamcellebehandlinger, kan stamceller enten bli direkte innpodet på sykdomsstedet for å forårsake en terapeutisk respons, eller forårsake endringer i mikromiljøet på sykdomsstedet uten å feste seg til sykdomsstedet for å initiere en indirekte terapeutisk respons. En indirekte terapeutisk respons kan forårsake endringer i mikromiljøet på sykdomsstedet ved å frigjøre faktorer som vil reparere eller behandle sykdommen5. Disse tilnærmingene til stamcellebehandlinger kan evalueres ved ikke-invasiv avbildning av radiomerkede stamceller. Ikke-invasiv avbildning kan korrelere opptaket av de radiomerkede cellene på sykdomsstedet med en terapeutisk respons for å dechiffrere den direkte versus indirekte terapeutiske responsen.

I tillegg utvikles immuncellebaserte terapier for å behandle ulike kreftformer ved bruk av CAR T-celle 6,7,8,9,10 og dendrittisk celleimmunterapi 11,12. Mekanistisk, i CAR T-celle immunterapi 6,7,8,9,10, er T-celler konstruert for å uttrykke en epitop som binder seg til et spesifikt antigen på svulster som må behandles. Disse konstruerte CAR T-cellene, ved administrering, binder seg til det spesifikke antigenet som er tilstede på tumorcellene gjennom en epitop-antigen-interaksjon. Etter binding gjennomgår de bundne CAR T-cellene aktivering og prolifererer og frigjør cytokiner, som signaliserer vertens immunsystem for å angripe svulsten som uttrykker det spesifikke antigenet. I kontrast, når det gjelder dendritiske celleterapier11,12, er dendrittiske celler konstruert for å presentere et spesifikt kreftantigen på overflaten. Disse konstruerte dendrittiske cellene, når de administreres, hjem til lymfeknuter og binder seg til T-cellene i lymfeknuter. T-cellene, ved binding til de spesifikke kreftantigenene på de administrerte dendrittiske cellene, gjennomgår aktivering / proliferasjon og initierer en immunrespons av verten mot svulsten som uttrykker det spesifikke antigenet. Derfor er vurderingen av trafikk av administrerte CAR T-celler til et tumorsted 9,10 og homing av dendrittiske celler til lymfeknuter11,12 mulig ved å avbilde radiomerkede CAR T-celler og dendrittiske celler for å bestemme effekten av immunterapi. Videre kan ikke-invasiv cellehandel bidra til å bedre forstå det terapeutiske potensialet, klargjøre den direkte versus indirekte terapeutiske responsen, og forutsi og overvåke den terapeutiske responsen til både stamcelle- og immuncellebaserte terapier.

Ulike bildebehandlingsmodaliteter for cellehandel har blitt utforsket 3,4,9,10,12, inkludert optisk bildebehandling, magnetisk resonansavbildning (MRI), enkelt-foton emisjonscomputertomografi (SPECT) og positronemisjonstomografi (PET). Hver av disse teknikkene har sine egne fordeler og ulemper. Blant disse er PET den mest lovende modaliteten på grunn av sin kvantitative natur og høye følsomhet, som er avgjørende for pålitelig kvantifisering av celler i bildebasert cellehandel 3,4,9,10.

Den positronemitterende radioisotopen 89Zr, med en halveringstid på 78,4 timer, er egnet for cellemerking. Det tillater PET-avbildning av cellehandel i over 1 uke og produseres lett av allment tilgjengelige, medisinske syklotroner med lav energi 13,14,15,16,17. I tillegg er en passende funksjonalisert, p-isotiocyanatobenzyl-desferrioxamin (DFO-Bn-NCS) chelator kommersielt tilgjengelig for syntesen av en 89 Zr-merket, klar til bruk, cellemerking synthon, [89 Zr] Zr-p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine, også kjent som [89Zr] Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Prinsippet for [89 Zr]Zr-DBN-mediert cellemerking er basert på en reaksjon mellom primære aminer av cellemembranproteiner og isotiocyanatdelen (NCS) av [89Zr]Zr-DBN for å produsere en stabil kovalent tioureabinding.

[89Zr] Zr-DBN-basert cellemerking og avbildning har blitt publisert for å spore en rekke forskjellige celler, inkludert stamceller 18,23,25, dendrittiske celler18, kardiopoietiske stamceller19, decidual stromale celler 20, benmargsavledede makrofager 20, mononukleære celler i perifert blod 20, Jukat / CAR T-celler 21, hepatocytter22,24 og hvite blodlegemer 25. Følgende protokoll gir trinnvise metoder for fremstilling og celleradiomerking med [89Zr]Zr-DBN og beskriver endringer som kan være nødvendige i radiomerkingsprotokollen for en bestemt celletype. For større klarhet er metoden for cellemerking presentert her delt inn i fire seksjoner. Den første delen omhandler utarbeidelsen av [89 Zr]Zr-DBN ved å chelatere 89Zr med DFO-Bn-NCS. Den andre delen beskriver fremstillingen av en biokompatibel formulering av [89Zr]Zr-DBN som lett kan brukes til celleradiomerking. Den tredje delen dekker trinnene som er nødvendige for forkondisjonering av celler for radiomerking. Forkondisjoneringen av celler innebærer å vaske cellene med proteinfritt fosfatbufret saltvann (PBS) og HEPES bufret Hanks balansert saltløsning (H-HBSS) for å fjerne eksterne proteiner, som kan forstyrre eller konkurrere med reaksjonen av [89Zr] Zr-DBN med primære aminer tilstede på celleoverflateproteiner under radiomerking. Den siste delen gir trinn involvert i selve radiomerkingen av cellene og kvalitetskontrollanalyse.

Protocol

Dendrittiske celler og melanomceller ble oppnådd kommersielt18. Hepatocytter ble isolert fra leveren hos griser etter laparoskopisk partiell hepatektomi22,24. Stamceller ble isolert fra benmargsaspirater18,19,26. De fettvevsavledede stamcellene ble hentet fra Human Cellular Therapy Laboratory, Mayo Clinic Rochester23. Huma…

Representative Results

De representative resultatene som presenteres i dette manuskriptet er utarbeidet fra tidligere [89Zr]Zr-DBN syntese- og celleradiomerkingsstudier 18,19,22,23,24,25. Kort fortalt kan 89Zr med hell komplekseres med DFO-Bn-NCS i ~30-60 min ved 25-37 °C ved bruk av 7,5-15 μg DFO-Bn-NCS (tabell 2</s…

Discussion

Følgende er kritiske trinn i protokollen som trenger optimalisering for effektiv cellemerking. I protokolltrinn 1.2 og 1.3, avhengig av volumet på [89 Zr]Zr(HPO 4)2 eller [89Zr]ZrCl4 anvendt, må et passende volum (mikroliter) base brukes; 1,0 M K 2 CO 3løsning må brukes til nøytralisering av [89 Zr] Zr (HPO 4) 2 og 1,0 M Na2CO 3 løsning for nøytralisering av [89Zr] ZrCl4 for å oppn?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 og DOE DE-SC0008947 tilskudd, International Atomic Energy Agency, Wien, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology, og Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alle figurene ble laget ved hjelp av BioRender.com.

Materials

Acetonitrile Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A996-4
Alpha Minimum Essential Medium Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 12571063
Anion exchange column Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany 731876 Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge
Conical centrifuge tubes (15 mL) Corning Inc., Glendale, AZ, USA 352096 Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes
Dendritic cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-11904
DFO-Bn-NCS Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA B-705 p-SCN-Bn-Deferoxamine
DMSO Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 276855
Dose calibrator Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA 5130-3234 CRC -55tR Dose Calibrator 
Dulbecco’s modified Eagle’s medium  The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2002
Fetal Bovine Serum (FBS) The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2020
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 14025092 For preparation of H-HBSS
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A508P212
Melanoma cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-6475
Methanol Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 34860
Microcentrifuge tube Eppendorf, Hamburg, Germany 30108442 Protein LoBind microcentrifuge tube
Murine GM-CSF R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA 415-ML-010
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 15140-122
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 10010023 For washing cells
Saline Covidien LLC, Mansfield, MA, USA 1020 0.9% Sterile Saline Solution
Shaker  Eppendorf, Hamburg, Germany T1317 Thermomixer
Silica gel-rad-TLC paper sheet  Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA SGI0001 iTLC-SG

References

  1. Bhawnani, N., et al. Effectiveness of stem cell therapies in improving clinical outcomes in patients with heart failure. Cureus. 13 (8), e17236 (2021).
  2. Zakrzewski, W., Dobrzynski, M., Szymonowicz, M., Rybak, Z. Stem cells: past, present, and future. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 68 (2019).
  3. Bukhari, A. B., Dutta, S., De, A. Image guidance in stem cell therapeutics: unfolding the blindfold. Current Drug Targets. 16 (6), 658-671 (2015).
  4. Momeni, A., Neelamegham, S., Parashurama, N. Current challenges for the targeted delivery and molecular imaging of stem cells in animal models. Bioengineered. 8 (4), 316-324 (2017).
  5. Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy. Circulation Research. 103 (11), 1204-1219 (2008).
  6. D’Aloia, M. M., Zizzari, I. G., Sacchetti, B., Pierelli, L., Alimandi, M. CAR-T cells: the long and winding road to solid tumors. Cell Death & Disease. 9 (3), 282 (2018).
  7. Zhang, Q., et al. CAR-T cell therapy in cancer: tribulations and road ahead. Journal of Immunology Research. 2020, 1924379 (2020).
  8. Sterner, R. C., Sterner, R. M. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer Journal. 11 (4), 69 (2021).
  9. Shao, F., et al. Radionuclide-based molecular imaging allows CAR-T cellular visualization and therapeutic monitoring. Theranostics. 11 (14), 6800-6817 (2021).
  10. Sakemura, R., Can, I., Siegler, E. L., Kenderian, S. S. In vivo CART cell imaging: Paving the way for success in CART cell therapy. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 625-633 (2021).
  11. Wang, Y., et al. Dendritic cell biology and its role in tumor immunotherapy. Journal of Hematology & Oncology. 13 (1), 107 (2020).
  12. Bulte, J. W. M., Shakeri-Zadeh, A. In vivo MRI tracking of tumor vaccination and antigen presentation by dendritic cells. Molecular Imaging and Biology. 24 (2), 198-207 (2022).
  13. Holland, J. P., Sheh, Y., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  14. Larenkov, A., et al. Preparation of zirconium-89 solutions for radiopharmaceutical purposes: interrelation between formulation, radiochemical purity, stability and biodistribution. Molecules. 24 (8), 1534 (2019).
  15. Pandey, M. K., et al. A new solid target design for the production of 89Zr and radiosynthesis of high molar activity [89Zr]Zr-DBN. American Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 12 (1), 15-24 (2022).
  16. Pandey, M. K., et al. Improved production and processing of 89Zr using a solution target. Nuclear Medicine and Biology. 43 (1), 97-100 (2016).
  17. Pandey, M. K., Engelbrecht, H. P., Byrne, J. P., Packard, A. B., DeGrado, T. R. Production of 89Zr via the 89Y(p,n)89Zr reaction in aqueous solution: effect of solution composition on in-target chemistry. Nuclear Medicine and Biology. 41 (4), 309-316 (2014).
  18. Bansal, A., et al. Novel 89Zr cell labeling approach for PET-based cell trafficking studies. EJNMMI Research. 5, 19 (2015).
  19. Bansal, A., et al. 89Zr]Zr-DBN labeled cardiopoietic stem cells proficient for heart failure. Nuclear Medicine and Biology. 90-91, 23-30 (2020).
  20. Friberger, I., et al. Optimisation of the synthesis and cell labelling conditions for [89Zr]Zr-oxine and [89Zr]Zr-DFO-NCS: a direct in vitro comparison in cell types with distinct therapeutic applications. Molecular Imaging and Biology. 23 (6), 952-962 (2021).
  21. Lee, S. H., et al. Feasibility of real-time in vivo 89Zr-DFO-labeled CAR T-cell trafficking using PET imaging. PLoS One. 15 (1), e0223814 (2020).
  22. Nicolas, C. T., et al. Hepatocyte spheroids as an alternative to single cells for transplantation after ex vivo gene therapy in mice and pig models. Surgery. 164 (3), 473-481 (2018).
  23. Yang, B., et al. Tracking and therapeutic value of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cell transplantation in reducing venous neointimal hyperplasia associated with arteriovenous fistula. Radiology. 279 (2), 513-522 (2016).
  24. Nicolas, C. T., et al. Ex vivo cell therapy by ectopic hepatocyte transplantation treats the porcine tyrosinemia model of acute liver failure. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 18, 738-750 (2020).
  25. Bansal, A., Sharma, S., Klasen, B., Rosch, F., Pandey, M. K. Evaluation of different 89Zr-labeled synthons for direct labeling and tracking of white blood cells and stem cells in healthy athymic mice. Scientific Reports. 12 (1), 15646 (2022).
  26. Behfar, A., et al. Guided cardiopoiesis enhances therapeutic benefit of bone marrow human mesenchymal stem cells in chronic myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 56 (9), 721-734 (2010).
  27. Charoenphun, P., et al. 89Zr]oxinate4 for long-term in vivo cell tracking by positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 42 (2), 278-287 (2015).
  28. Sato, N., et al. In vivo tracking of adoptively transferred natural killer cells in rhesus macaques using 89zirconium-oxine cell labeling and PET imaging. Clinical Cancer Research. 26 (11), 2573-2581 (2020).
  29. Volpe, A., Pillarsetty, N. V. K., Lewis, J. S., Ponomarev, V. Applications of nuclear-based imaging in gene and cell therapy: probe considerations. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 447-458 (2021).
  30. Fogli, L. K., et al. Challenges and next steps in the advancement of immunotherapy: summary of the 2018 and 2020 National Cancer Institute workshops on cell-based immunotherapy for solid tumors. Journal for Immunotherapy of Cancer. 9 (7), e003048 (2021).
  31. Li, X., Hacker, M. Molecular imaging in stem cell-based therapies of cardiac diseases. Advanced Drug Delivery Reviews. 120, 71-88 (2017).
  32. Puges, M., et al. Retrospective study comparing WBC scan and 18F-FDG PET/CT in patients with suspected prosthetic vascular graft infection. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 57 (6), 876-884 (2019).
  33. Butterfield, L. H. Dendritic cells in cancer immunotherapy clinical trials: are we making progress. Frontiers in Immunology. 4, 454 (2013).
  34. de Vries, I. J. M., et al. Magnetic resonance tracking of dendritic cells in melanoma patients for monitoring of cellular therapy. Nature Biotechnology. 23 (11), 1407-1413 (2005).
  35. Gosmann, D., et al. Promise and challenges of clinical non-invasive T-cell tracking in the era of cancer immunotherapy. EJNMMI Research. 12 (1), 5 (2022).
check_url/64117?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bansal, A., DeGrado, T. R., Pandey, M. K. Positron Emission Tomography Imaging of Cell Trafficking: A Method of Cell Radiolabeling. J. Vis. Exp. (200), e64117, doi:10.3791/64117 (2023).

View Video