Summary

Positronemissionstomografiavbildning av celltrafik: En metod för cellradiomärkning

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

Här presenteras ett protokoll för radiomärkning av celler med en positronemissionstomografi (PET) radioisotop, 89 Zr (t1/2 78,4 h), med användning av en radioaktivt märkande synton som är färdig att använda, [89 Zr]Zr-p-isotiocyanatobensyl-desferrioxamin ([89Zr]Zr-DBN). Radiomärkning av celler med [89Zr]Zr-DBN möjliggör icke-invasiv spårning och avbildning av administrerade radiomärkta celler i kroppen med PET i upp till 7 dagar efter administrering.

Abstract

T-cellsterapier med stamceller och chimära antigenreceptorer (CAR) håller på att utvecklas till lovande terapier för organregenerering och som immunterapi för olika cancerformer. Trots att betydande framsteg har gjorts inom dessa områden finns det fortfarande mer att lära för att bättre förstå farmakokinetiken och farmakodynamiken hos de administrerade terapeutiska cellerna i det levande systemet. För icke-invasiv, in vivo-spårning av celler med positronemissionstomografi (PET) har en ny [89 Zr]Zr-p-isotiocyanatobensyl-desferrioxamin ([89 Zr]Zr-DBN)-medierad cellradiomärkningsmetod utvecklats med användning av 89Zr (t1/2 78,4 h). Det aktuella protokollet beskriver en [89Zr]Zr-DBN-medierad, färdig att använda, radiomärkningssynton för direkt radiomärkning av olika celler, inklusive mesenkymala stamceller, linjestyrda kardiopoetiska stamceller, leverregenererande hepatocyter, vita blodkroppar, melanomceller och dendritiska celler. Den utvecklade metodiken möjliggör icke-invasiv PET-avbildning av celltrafik i upp till 7 dagar efter administrering utan att påverka de radiomärkta cellernas natur eller funktion. Dessutom beskriver detta protokoll en stegvis metod för radiosyntes av [89 Zr]Zr-DBN, biokompatibel formulering av [89 Zr]Zr-DBN, beredning av celler för radiomärkning och slutligen radiomärkning av celler med [89Zr]Zr-DBN, inklusive alla intrikata detaljer som behövs för framgångsrik radiomärkning av celler.

Introduction

Stamcells- och chimär antigenreceptor (CAR) T-cellsterapier blir allt populärare och undersöks aktivt för behandling av olika sjukdomar, såsom myokardsvikt1,2, näthinnedegeneration 2, makuladegeneration 2, diabetes 2, hjärtinfarkt 3,4,5 och cancer 6,7,8,9,10. Bland de två troliga tillvägagångssätten för stamcellsterapier kan stamceller antingen transplanteras direkt på sjukdomsstället för att orsaka ett terapeutiskt svar, eller orsaka förändringar i mikromiljön på sjukdomsstället utan att fästa vid sjukdomsstället för att initiera ett indirekt terapeutiskt svar. Ett indirekt terapeutiskt svar kan orsaka förändringar i mikromiljön på sjukdomsstället genom att frigöra faktorer som skulle reparera ellerbehandla sjukdomen. Dessa metoder för stamcellsterapier kan utvärderas genom icke-invasiv avbildning av radioaktivt märkta stamceller. Icke-invasiv avbildning kan korrelera upptaget av de radioaktivt märkta cellerna på sjukdomsstället med ett terapeutiskt svar för att dechiffrera det direkta kontra indirekta terapeutiska svaret.

Dessutom utvecklas immuncellsbaserade terapier för att behandla olika cancerformer med hjälp av CAR T-cell 6,7,8,9,10 och dendritisk cellimmunterapi 11,12. Mekanistiskt, i CAR T-cellsimmunterapi 6,7,8,9,10, är T-celler konstruerade för att uttrycka en epitop som binder till ett specifikt antigen på tumörer som behöver behandlas. Dessa modifierade CAR T-celler binder vid administrering till det specifika antigen som finns på tumörcellerna genom en epitop-antigeninteraktion. Efter bindning aktiveras de bundna CAR T-cellerna och förökar sig sedan och frisätter cytokiner, som signalerar till värdens immunsystem att attackera tumören som uttrycker det specifika antigenet. Däremot, när det gäller dendritiska cellterapier11,12, är dendritiska celler konstruerade för att presentera ett specifikt cancerantigen på sin yta. Dessa modifierade dendritiska celler, när de administreras, hem till lymfkörtlarna och binder till T-cellerna i lymfkörtlarna. T-cellerna aktiveras/prolifereras och initierar ett immunsvar hos värden mot tumören som uttrycker det specifika antigenet, när de binder till de specifika cancerantigenerna på de administrerade dendritiska cellerna. Därför är det möjligt att bedöma smuggling av administrerade CAR T-celler till ett tumörställe9,10 och målsökning av dendritiska celler till lymfkörtlarna11,12 genom att avbilda radiomärkta CAR T-celler och dendritiska celler för att bestämma effekten av immunterapi. Dessutom kan icke-invasiv celltrafik bidra till att bättre förstå den terapeutiska potentialen, klargöra det direkta kontra indirekta terapeutiska svaret och förutsäga och övervaka det terapeutiska svaret från både stamcells- och immuncellsbaserade terapier.

Olika avbildningsmodaliteter för celltrafik har undersökts 3,4,9,10,12, inklusive optisk avbildning, magnetisk resonanstomografi (MRI), single-photon emission computed tomography (SPECT) och positronemissionstomografi (PET). Var och en av dessa tekniker har sina egna fördelar och nackdelar. Bland dessa är PET den mest lovande modaliteten på grund av dess kvantitativa natur och höga känslighet, vilket är avgörande för tillförlitlig kvantifiering av celler i avbildningsbaserad celltrafik 3,4,9,10.

Den positronemitterande radioisotopen 89Zr, med en halveringstid på 78,4 timmar, är lämplig för cellmärkning. Det möjliggör PET-avbildning av celltrafik i över 1 vecka och produceras lätt av allmänt tillgängliga, lågenergimedicinska cyklotroner 13,14,15,16,17. Dessutom är en lämpligt funktionaliserad, p-isotiocyanatobensyl-desferrioxamin (DFO-Bn-NCS) kelator kommersiellt tillgänglig för syntes av en 89 Zr-märkt, färdig att använda, cellmärkningssynton, [89 Zr]Zr-p-isotiocyanatobensyl-desferrioxamin, även känd som [89Zr]Zr-DBN 18,19,20,21,22,23,24,25. Principen för [89 Zr]Zr-DBN-medierad cellmärkning är baserad på en reaktion mellan primära aminer av cellmembranproteiner och isotiocyanatdelen (NCS) av [89Zr]Zr-DBN för att producera en stabil kovalent tioureabindning.

[89Zr] Zr-DBN-baserad cellmärkning och avbildning har publicerats för att spåra en mängd olika celler, inklusive stamceller 18,23,25, dendritiska celler18, kardiopoetiska stamceller19, deciduala stromaceller 20, benmärgshärledda makrofager20, mononukleära celler i perifert blod 20, Jurkat/CAR T-celler21, hepatocyter 22,24 och vita blodkroppar 25. Följande protokoll tillhandahåller steg-för-steg-metoder för beredning och radiomärkning av celler med [89Zr]Zr-DBN och beskriver ändringar som kan krävas i radiomärkningsprotokollet för en specifik celltyp. För tydlighetens skull är den metod för radiomärkning av celler som presenteras här uppdelad i fyra avsnitt. Det första avsnittet handlar om framställningen av [89 Zr]Zr-DBN genom kelatering av 89Zr med DFO-Bn-NCS. I det andra avsnittet beskrivs beredningen av en biokompatibel formulering av [89Zr]Zr-DBN som lätt kan användas för radiomärkning av celler. I det tredje avsnittet behandlas de steg som behövs för att förkonditionera celler för radioaktiv märkning. Förkonditioneringen av celler innebär att cellerna tvättas med proteinfri fosfatbuffrad saltlösning (PBS) och HEPES-buffrad Hanks-balanserad saltlösning (H-HBSS) för att avlägsna externa proteiner, som kan störa eller konkurrera med reaktionen av [89Zr]Zr-DBN med primära aminer som finns på cellytans proteiner under radiomärkning. Det sista avsnittet innehåller steg som är involverade i själva radiomärkningen av cellerna och kvalitetskontrollanalysen.

Protocol

Dendritiska celler och melanomceller erhölls kommersiellt18. Hepatocyter isolerades från levern hos svin efter laparoskopisk partiell hepatektomi22,24. Stamceller isolerades från benmärgsaspirat18,19,26. De fettvävnadshärledda stamcellerna erhölls från Human Cellular Therapy Laboratory, Mayo Clinic Rochester23. Huma…

Representative Results

De representativa resultaten som presenteras i detta manuskript har sammanställts från de tidigare [89Zr]Zr-DBN-syntes- och cellradiomärkningsstudierna 18,19,22,23,24,25. I korthet kan 89Zr framgångsrikt komplexeras med DFO-Bn-NCS på ~30-60 minuter vid 25-37 °C med 7,5-15 μg DFO-Bn-NCS (ta…

Discussion

Följande är kritiska steg i protokollet som behöver optimeras för effektiv cellradiomärkning. I protokollsteg 1.2 och 1.3 måste en lämplig volym (mikroliter) bas, beroende på volymen av [89 Zr]Zr(HPO 4)2 eller [89Zr]ZrCl4 användas. 1,0 M K 2 CO3 lösning måste användas för neutralisering av [89 Zr] Zr(HPO 4)2 och 1,0 M Na 2 CO3 lösning för neutralisering av [89Zr] ZrCl4 för at…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH 5R21HL127389-02, NIH 4T32HL007111-39, NIH R01HL134664 och DOE DE-SC0008947 anslag, International Atomic Energy Agency, Wien, Mayo Clinic Division of Nuclear Medicine, Department of Radiology, och Mayo Clinic Center for Regenerative Medicine, Rochester, MN. Alla figurer är skapade med hjälp av BioRender.com.

Materials

Acetonitrile Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A996-4
Alpha Minimum Essential Medium Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 12571063
Anion exchange column Macherey-Nagel, Inc., Düren, Germany 731876 Chromafix 30-PS-HCO3 SPE 45 mg cartridge
Conical centrifuge tubes (15 mL) Corning Inc., Glendale, AZ, USA 352096 Falcon 15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes
Dendritic cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-11904
DFO-Bn-NCS Macrocyclics, Inc., Plano, TX, USA B-705 p-SCN-Bn-Deferoxamine
DMSO Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 276855
Dose calibrator Mirion Technologies (Capintec), Inc., Florham Park, NJ, USA 5130-3234 CRC -55tR Dose Calibrator 
Dulbecco’s modified Eagle’s medium  The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2002
Fetal Bovine Serum (FBS) The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA 30-2020
Hanks Balanced Salt solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 14025092 For preparation of H-HBSS
Hydrochloric Acid (trace metal basis grade) Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA A508P212
Melanoma cells The American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA CRL-6475
Methanol Sigma-Aldrich, Inc., St. Louis, MO 34860
Microcentrifuge tube Eppendorf, Hamburg, Germany 30108442 Protein LoBind microcentrifuge tube
Murine GM-CSF R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN USA 415-ML-010
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 15140-122
Phosphate Buffered Saline without Ca2+ and Mg2+ Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA 10010023 For washing cells
Saline Covidien LLC, Mansfield, MA, USA 1020 0.9% Sterile Saline Solution
Shaker  Eppendorf, Hamburg, Germany T1317 Thermomixer
Silica gel-rad-TLC paper sheet  Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA SGI0001 iTLC-SG

References

  1. Bhawnani, N., et al. Effectiveness of stem cell therapies in improving clinical outcomes in patients with heart failure. Cureus. 13 (8), e17236 (2021).
  2. Zakrzewski, W., Dobrzynski, M., Szymonowicz, M., Rybak, Z. Stem cells: past, present, and future. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 68 (2019).
  3. Bukhari, A. B., Dutta, S., De, A. Image guidance in stem cell therapeutics: unfolding the blindfold. Current Drug Targets. 16 (6), 658-671 (2015).
  4. Momeni, A., Neelamegham, S., Parashurama, N. Current challenges for the targeted delivery and molecular imaging of stem cells in animal models. Bioengineered. 8 (4), 316-324 (2017).
  5. Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy. Circulation Research. 103 (11), 1204-1219 (2008).
  6. D’Aloia, M. M., Zizzari, I. G., Sacchetti, B., Pierelli, L., Alimandi, M. CAR-T cells: the long and winding road to solid tumors. Cell Death & Disease. 9 (3), 282 (2018).
  7. Zhang, Q., et al. CAR-T cell therapy in cancer: tribulations and road ahead. Journal of Immunology Research. 2020, 1924379 (2020).
  8. Sterner, R. C., Sterner, R. M. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer Journal. 11 (4), 69 (2021).
  9. Shao, F., et al. Radionuclide-based molecular imaging allows CAR-T cellular visualization and therapeutic monitoring. Theranostics. 11 (14), 6800-6817 (2021).
  10. Sakemura, R., Can, I., Siegler, E. L., Kenderian, S. S. In vivo CART cell imaging: Paving the way for success in CART cell therapy. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 625-633 (2021).
  11. Wang, Y., et al. Dendritic cell biology and its role in tumor immunotherapy. Journal of Hematology & Oncology. 13 (1), 107 (2020).
  12. Bulte, J. W. M., Shakeri-Zadeh, A. In vivo MRI tracking of tumor vaccination and antigen presentation by dendritic cells. Molecular Imaging and Biology. 24 (2), 198-207 (2022).
  13. Holland, J. P., Sheh, Y., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  14. Larenkov, A., et al. Preparation of zirconium-89 solutions for radiopharmaceutical purposes: interrelation between formulation, radiochemical purity, stability and biodistribution. Molecules. 24 (8), 1534 (2019).
  15. Pandey, M. K., et al. A new solid target design for the production of 89Zr and radiosynthesis of high molar activity [89Zr]Zr-DBN. American Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 12 (1), 15-24 (2022).
  16. Pandey, M. K., et al. Improved production and processing of 89Zr using a solution target. Nuclear Medicine and Biology. 43 (1), 97-100 (2016).
  17. Pandey, M. K., Engelbrecht, H. P., Byrne, J. P., Packard, A. B., DeGrado, T. R. Production of 89Zr via the 89Y(p,n)89Zr reaction in aqueous solution: effect of solution composition on in-target chemistry. Nuclear Medicine and Biology. 41 (4), 309-316 (2014).
  18. Bansal, A., et al. Novel 89Zr cell labeling approach for PET-based cell trafficking studies. EJNMMI Research. 5, 19 (2015).
  19. Bansal, A., et al. 89Zr]Zr-DBN labeled cardiopoietic stem cells proficient for heart failure. Nuclear Medicine and Biology. 90-91, 23-30 (2020).
  20. Friberger, I., et al. Optimisation of the synthesis and cell labelling conditions for [89Zr]Zr-oxine and [89Zr]Zr-DFO-NCS: a direct in vitro comparison in cell types with distinct therapeutic applications. Molecular Imaging and Biology. 23 (6), 952-962 (2021).
  21. Lee, S. H., et al. Feasibility of real-time in vivo 89Zr-DFO-labeled CAR T-cell trafficking using PET imaging. PLoS One. 15 (1), e0223814 (2020).
  22. Nicolas, C. T., et al. Hepatocyte spheroids as an alternative to single cells for transplantation after ex vivo gene therapy in mice and pig models. Surgery. 164 (3), 473-481 (2018).
  23. Yang, B., et al. Tracking and therapeutic value of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cell transplantation in reducing venous neointimal hyperplasia associated with arteriovenous fistula. Radiology. 279 (2), 513-522 (2016).
  24. Nicolas, C. T., et al. Ex vivo cell therapy by ectopic hepatocyte transplantation treats the porcine tyrosinemia model of acute liver failure. Molecular Therapy. Methods & Clinical Development. 18, 738-750 (2020).
  25. Bansal, A., Sharma, S., Klasen, B., Rosch, F., Pandey, M. K. Evaluation of different 89Zr-labeled synthons for direct labeling and tracking of white blood cells and stem cells in healthy athymic mice. Scientific Reports. 12 (1), 15646 (2022).
  26. Behfar, A., et al. Guided cardiopoiesis enhances therapeutic benefit of bone marrow human mesenchymal stem cells in chronic myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 56 (9), 721-734 (2010).
  27. Charoenphun, P., et al. 89Zr]oxinate4 for long-term in vivo cell tracking by positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 42 (2), 278-287 (2015).
  28. Sato, N., et al. In vivo tracking of adoptively transferred natural killer cells in rhesus macaques using 89zirconium-oxine cell labeling and PET imaging. Clinical Cancer Research. 26 (11), 2573-2581 (2020).
  29. Volpe, A., Pillarsetty, N. V. K., Lewis, J. S., Ponomarev, V. Applications of nuclear-based imaging in gene and cell therapy: probe considerations. Molecular Therapy Oncolytics. 20, 447-458 (2021).
  30. Fogli, L. K., et al. Challenges and next steps in the advancement of immunotherapy: summary of the 2018 and 2020 National Cancer Institute workshops on cell-based immunotherapy for solid tumors. Journal for Immunotherapy of Cancer. 9 (7), e003048 (2021).
  31. Li, X., Hacker, M. Molecular imaging in stem cell-based therapies of cardiac diseases. Advanced Drug Delivery Reviews. 120, 71-88 (2017).
  32. Puges, M., et al. Retrospective study comparing WBC scan and 18F-FDG PET/CT in patients with suspected prosthetic vascular graft infection. European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 57 (6), 876-884 (2019).
  33. Butterfield, L. H. Dendritic cells in cancer immunotherapy clinical trials: are we making progress. Frontiers in Immunology. 4, 454 (2013).
  34. de Vries, I. J. M., et al. Magnetic resonance tracking of dendritic cells in melanoma patients for monitoring of cellular therapy. Nature Biotechnology. 23 (11), 1407-1413 (2005).
  35. Gosmann, D., et al. Promise and challenges of clinical non-invasive T-cell tracking in the era of cancer immunotherapy. EJNMMI Research. 12 (1), 5 (2022).
check_url/64117?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bansal, A., DeGrado, T. R., Pandey, M. K. Positron Emission Tomography Imaging of Cell Trafficking: A Method of Cell Radiolabeling. J. Vis. Exp. (200), e64117, doi:10.3791/64117 (2023).

View Video