Summary
본 연구는 핵이 있는 구체의 고해상도 라이브 셀 이미징을 가능하게 하기 위해 3D 프린팅 홀더를 활용하는 새로운 실험 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜을 통해 생체 외 글로브 에서 상처 입은 각막 상피의 세포 칼슘 신호 전달 활성을 실시간으로 관찰 할 수 있습니다.
Abstract
각막 상피 상처 치유는 상피 세포에서 발현되는 퓨린 성 수용체의 활성화에 의해 시작되는 이동 과정입니다. 이 활성화는 세포에서 세포로 전파되는 칼슘 동원 이벤트를 초래하며, 이는 상처 침대로의 세포 운동성을 시작하여 효율적인 상처 치유를 촉진하는 데 필수적입니다. 트링카우스-랜달 연구실은 생체 외 쥐 구체에서 각막 상처 치유 반응을 실시간으로 이미징하는 방법론을 개발했습니다. 이 접근법은 확립 된 프로토콜에 따라 안락사 된 마우스에서 손상되지 않은 지구를 핵 제거하고 칼슘 지시제 염료로 지구를 즉시 배양하는 것을 포함합니다. 이 단계에서 세포의 다른 특징을 염색하는 카운터 염색을 적용하여 이미징을 돕고 세포 랜드 마크를 보여줄 수 있습니다. 이 프로토콜은 액틴을 염색하는 SiR 액틴과 세포막을 염색하는 진한 적색 원형질막 염색을 포함하여 카운터 염색에 사용되는 여러 가지 살아있는 세포 염료와 잘 작동했습니다. 상처에 대한 반응을 검사하기 위해 25G 바늘을 사용하여 각막 상피를 손상시키고 지구본을 3D 인쇄 홀더에 넣습니다. 3D 프린팅 홀더의 치수는 실험 기간 동안 지구본의 고정을 보장하도록 보정되며 다양한 크기의 눈을 수용하도록 수정할 수 있습니다. 상처 반응의 라이브 셀 이미징은 컨포칼 현미경을 사용하여 시간이 지남에 따라 조직 전체에 걸쳐 다양한 깊이에서 연속적으로 수행됩니다. 이 프로토콜을 사용하면 컨포칼 현미경에서 20x 공기 대물렌즈를 사용하여 고해상도 출판 품질의 이미지를 생성할 수 있습니다. 이 프로토콜에는 다른 목표도 사용할 수 있습니다. 이는 생체 외 뮤린 글로브에서 생세포 영상의 품질을 크게 개선했으며 신경과 상피의 식별을 허용합니다.
Introduction
각막
각막은 눈의 앞쪽 표면을 덮고 있는 투명한 무혈관 구조로, 빛을 굴절시켜 시력을 가능하게 하고 눈 내부를 손상으로부터 보호합니다. 각막은 환경에 노출되기 때문에 기계적 원인(긁힘)과 감염으로 인한 손상을 받기 쉽습니다. 건강한 환자의 각막 손상은 일반적으로 1-3 일 이내에 치유됩니다. 그러나 윤부 줄기 세포 결핍 및 제 2 형 당뇨병을 포함한 기저 질환이있는 환자의 경우 각막 상처 치유 과정이 크게 연장 될 수 있습니다1. 각막이 고도로 신경이 분포되어 있기 때문에 이러한 치유되지 않는 각막 궤양과 재발성 각막 침식은 매우 고통스럽고 이를 경험하는 환자의 삶의 질을 크게 저하시킵니다1.
세포 신호 전달
건강한 각막이 손상되면 상처에 인접한 세포에서 칼슘 신호 이벤트가 선행되어 상처 침대로 세포 이동을 촉진하여 흉터 2,3의 위험없이 손상을 닫습니다. 이러한 신호전달 이벤트는 라이브세포 이미징을 사용하는 각막 상피 세포 배양 모델에서 잘 특성화되었습니다2. 예비 실험은 당뇨병 세포에 비해 비 당뇨병 세포에서 손상 후 훨씬 더 많은 칼슘 신호 전달을 보여줍니다. 그러나 생체 외 글로브에서 세포 신호 전달 이벤트의 특성 분석은 기술적 과제임이 입증되었습니다.
라이브 셀 이미징
이전 연구에서는 각막 상처 치유의 시험관 내 세포 배양 모델에서 칼슘 신호 전달 이벤트를 성공적으로 기록했습니다 4,5,6. 생체 외 조직에서 이러한 신호 이벤트의 고품질 이미지를 생성하는 방법론을 개발하는 것은 보다 복잡하고 실제와 같은 시스템에서 이러한 이벤트를 연구할 수 있기 때문에 큰 관심을 끌고 있습니다. 이전의 접근법은 각막의 해부에 이어 UV 유도 PEG 겔 7,8,9에서의 고정화를 포함하였다. 고정화는 살아있는 조직으로 작업할 때 필수적이지만 어려운 단계로, 실험 과정 내내 실행 가능하고 수분을 유지해야 합니다. 또한, 고정은 조직을 손상시키지 않아야합니다. PEG 용액이 조직을 고정화하는 동안, 생성된 이미지의 해상도와 품질은 일관되지 않았다. 따라서 3D 프린팅 홀더는 손상되지 않은 지구본을 고정하여 조직 손상 위험이 적은 고품질 이미지를 생성하기 위해 개발되었습니다.
접근 방식
고유한 3D 프린팅 홀더는 라이브 셀 이미징을 위해 손상되지 않은 생체 외 글로브를 고정하기 위해 개발되었습니다. 이 홀더는 두 가지 주요 원인으로 인한 손상을 방지합니다: 각막을 해부할 필요 없이 핵이 있는 지구를 이미징할 수 있고 자외선에 대한 노출을 제거합니다. 이러한 손상 원이 없으면 얻은 이미지는 실험적으로 만들어진 스크래치 부상에 대한 반응을보다 정확하게 나타냅니다. 또한 3D 인쇄 홀더는 쥐 눈의 정확한 치수로 보정되었습니다. 이는 PEG 용액에 고정화하는 것보다 훨씬 더 잘 맞았으며, 조직 움직임 감소로 인해 저전력 대물렌즈에서 더 높은 품질의 이미지를 얻을 수 있었습니다. 홀더 상단에 부착된 커버 바는 실험 기간 동안 지구가 움직이지 않고 수화와 생존력을 유지하기 위해 성장 배지를 적용할 때 지구본이 변위되지 않도록 합니다. 홀더를 정확한 치수로 인쇄 할 수있는 기능을 통해 연령이나 질병 상태로 인해 다양한 크기의 쥐 눈에 최적의 맞춤을 생성 할 수 있습니다. 이 기술은 크기에 따라 다른 종의 눈을 위한 홀더를 개발하는 데 보다 광범위하게 적용될 수 있습니다.
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Protocol
동물 피험자와 관련된 절차는 안과 치료 및 시력 연구에서 동물 사용을위한 시력 및 안과 연구 협회 및 보스턴 대학 IACUC 프로토콜 (201800302)의 승인을 받았습니다.
1. 3D 프린팅 홀더 및 커버 바 디자인
- 마우스 글로브의 평균 직경을 고려하여 3D 프린팅된 홀더와 커버 바를 설계하고 디자인을 3D 프린팅합니다(그림 1A, B).
- 개별 마우스의 다양한 크기를 설명하기 위해 홀더의 내벽 직경을 지구의 평균 직경보다 약간 크게 유지하십시오. 홀더의 높이를 지구 직경의 약 절반으로 유지하여 3D 인쇄 커버 바에 고정할 때 지구본이 꼭 맞도록 합니다.
- 홀더 덮개 막대의 크기를 홀더 직경의 1/4에서 1/2 너비로 홀더 외경의 길이에 맞춥니다. 커버 바는 실험이 끝날 때 수화 및 눈 제거를 위해 홀더에 고정될 때 지구본에 접근할 수 있는 크기입니다.
- 홀더와 커버 바를 인쇄합니다.
2. 샘플 수집
- 기관 지침에 따라 확립된 프로토콜을 사용하여 마우스(9-12주 및 27주령의 수컷 C57BL/6 마우스를 이 연구에 사용함)를 안락사시킵니다. 이 프로토콜의 경우 이산화탄소로 안락사를 수행 한 후 참수하십시오.
- 마우스 머리를 제거하고 즉시 얼음 위에 놓아 조직의 생존력을 보존하십시오. 해부 도구를 사용하여 지구본을 핵을 제거하고 조직 손상을 방지합니다.
- 핀셋을 사용하여 지구를 보호하십시오. 핀셋으로 잡은 곳 바로 아래에 해부 가위를 사용하여 시신경을 자릅니다.
알림: 추가 예방 조치를 위해 층류 후드에서 다음 단계를 수행하십시오. - 저조도 조건의 37°C, 5%CO2 인큐베이터에서 칼슘 지시약 및/또는 세포막 염색이 포함된 p35 세포 배양 접시에 2mL의 배지에 글로브를 배양합니다. 균일한 염색을 위해 글로브가 염색 매체에 잠겨 있는지 확인하십시오.
- 여기에서 수행된 실험의 경우 칼슘 지시약인 Fluo4-AM (1:100)2 및 세포막 카운터 염색, 진한 적색 원형질막 염색(1:10,000)2, 최종 농도가 1%(v/v) DMSO 및 0.1%(w/v) 플루론산인 각질세포 무혈청 배지(KSFM) 2mL에 다음 성장 보조제와 함께 사용하십시오: 25μg/mL 소 뇌하수체 추출물, 0.02 nM 표피 성장 인자, 0.3 mMCaCl2 및 페니실린-스트렙토 마이신 (각각 100 단위 / mL 및 100 μg / mL).
참고: 배양 조건과 시간은 칼슘 지시약, 조직 유형 및 샘플 부피에 따라 다릅니다. 플루론산을 사용할 때는 조직 투과성을 제공하므로 주의가 필요합니다. 이 프로토콜은 10 % 플루 론산을 요구합니다. 낮은 농도의 플루 론산은 실험적으로 효과가없는 것으로 결정되었으며, 높은 농도는 조직에 손상을 줄 위험이 있습니다.
- 여기에서 수행된 실험의 경우 칼슘 지시약인 Fluo4-AM (1:100)2 및 세포막 카운터 염색, 진한 적색 원형질막 염색(1:10,000)2, 최종 농도가 1%(v/v) DMSO 및 0.1%(w/v) 플루론산인 각질세포 무혈청 배지(KSFM) 2mL에 다음 성장 보조제와 함께 사용하십시오: 25μg/mL 소 뇌하수체 추출물, 0.02 nM 표피 성장 인자, 0.3 mMCaCl2 및 페니실린-스트렙토 마이신 (각각 100 단위 / mL 및 100 μg / mL).
3. 시료 홀더의 준비
- 홀더를 이전에 사용하지 않은 접착제로 깨끗한 유리 바닥 커버 슬립에 부착하십시오. 이 프로토콜에 사용되는 접착제는 무균을 보장하기 위해 일회용 용기에서 나오며 매번 개봉하지 않은 새 용기가 사용됩니다.
- 홀더를 70 % 에탄올로 씻으십시오. 홀더에 접착제를 바르고 홀더를 유리 바닥 커버슬립에 부착합니다. 접착제가 형광을 발하여 이미징을 복잡하게 만들 수 있으므로 홀더의 내부 영역 내에 접착제가 없는지 확인하십시오.
- 접착제가 고형화 될 때까지 기다리십시오. 홀더가 커버슬립에 고정되어 있는지 확인하십시오.
참고: 유리 바닥 커버슬립이 있는 P35 셀 플레이트가 이 원고에 제시된 실험에 사용되었습니다. 다른 유리 바닥 슬라이드 및/또는 플레이트는 실험의 필요에 따라 대체될 수 있습니다.
4. 눈 구체의 상처
- 멸균 점안기를 사용하여 염색 용액에서 지구본을 제거하고 관심 부위의 조직 손상을 방지하도록 주의하십시오. 멸균 인산염 완충 식염수를 사용하여 실온에서 5분 동안 글로브를 세척하여 과도한 얼룩을 제거하고 글로브를 배지에 넣어 현미경으로 운반합니다.
- 관심 부위에 멸균 된 25G 바늘을 사용하여 지구본을 감습니다.
- 멸균 점안기를 사용하여 눈 뒤쪽에서 지구본을 집어 들고 잡습니다. 이렇게 하면 지구본이 안정적으로 유지되고 구르는 것을 방지하며 일관된 상처가 생길 수 있습니다. 이 설정을 사용하면 시신경이 스포이드 노즐 내부에 있고 각막이 바깥쪽을 향하게됩니다.
- 긁힌 상처의 경우 멸균 된 25G 바늘을 노출 된 각막을 가로 질러 부드럽게 움직입니다. 찔린 상처의 경우 바늘을 중앙 각막으로 직접 부드럽게 누르십시오. 상처가 각막을 뚫지 않도록하십시오.
참고: 실험에 상처 반응 또는 상처 환경이 필요하지 않은 경우 이 단계를 건너뜁니다. 이전 연구에 따르면 이 방법을 사용하여 만든 쥐 각막의 긁힌 상처와 찔린 상처는 직경과 깊이10 모두에서 일치합니다. 독립적 인 구체 사이의 상처 치수 확인은 관심 영역 분석을 사용하여 수행되었습니다.
5. 홀더에 샘플 배치
- 각막 또는 윤부 부위를 홀더 내부 영역의 커버 슬립에 놓고 3D 인쇄 커버를 사용하여 안정화합니다(그림 1C-H).
- 지구본이 올바른 위치에 있고 관심 부위가 유리 커버슬립과 접촉하고 있는지 확인합니다. 지구본을 홀더에 넣은 후에는 조직 손상을 일으킬 수 있으므로 지구본을 제거하지 마십시오.
- 접착제를 사용하여 3D 인쇄 커버를 홀더에 부착하여 안정화를 보장합니다. 커버 바가 지구본이 아닌 홀더에 부착되는지 확인하십시오.
참고: 이미징할 영역은 프로토콜이 도립 현미경에서 사용하도록 작성되었기 때문에 아래로 배치됩니다. 이 프로토콜은 내부 반경이 더 작은 홀더와 커버 바 제거를 사용하는 정립 현미경에 맞게 조정할 수 있습니다. 이로 인해 지구 안정화가 줄어 듭니다.
6. 샘플 이미징
- 현미경과 환경 챔버를 켜고 챔버가 가습되었는지 확인합니다. 실험 기간 동안 환경 챔버를 35°C 및 5%CO2 로 설정하였다.
참고: 이 절차에는 탈수를 방지하고 지구를 최적의 온도로 유지하기 위해 환경 챔버가 있는 현미경이 선호되지만 필수는 아닙니다. - 커버슬립, 홀더 및 안정화된 지구본을 환경 챔버 내의 현미경 스테이지에 놓고 라이브 셀 이미징 기술을 사용하여 이미지를 만듭니다9.
- 탈수를 방지하고 조직 생존력을 유지하기 위해 커버슬립에 추가 성장 배지를 피펫팅합니다. 홀더의 지구본을 덮을 수 있는 충분한 매체가 우물에 있는지 확인하십시오. 이미징 기간에 따라 실험 전반에 걸쳐 필요할 때 새 배지를 추가합니다.
- 라이브 셀 이미징 기술 및 프로토콜을 사용하여 실험을 시작합니다. 저전력 레이저 설정을 사용하여 조직을 보존하고 장기 실험에서 조직 손상을 방지합니다. 긴 작동 거리에 적절한 대물렌즈를 사용하십시오. 이 원고의 실험은 20x 대물렌즈를 사용하여 수행되었습니다.
참고: 레이저 출력 및 게인, 실험 기간, 위치 및 이미징 평면은 모두 실험 매개변수에 따라 달라집니다. 1 시간에서 4 시간 사이의 손상되지 않은 지구본에 대한 이미징 실험은 과거 간행물10에서 성공적으로 수행되었습니다. - 원하는 파일 형식으로 데이터를 기록하고 저장합니다. 현미경에 의해 사용되는 소프트웨어는 데이터 기록을위한 .czi 파일을 생성합니다.
- 프로토콜 끝에 있는 표준 기관 프로토콜에 따라 지구본을 폐기하십시오.
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Representative Results
이 프로토콜은 출판물 품질의 데이터 및 이미지를 일관되게 생성하는데 사용되어 왔다(10). 얻은 이미지는 이전 접근 방식과 비교할 때 상당한 개선을 나타냅니다(그림 2). 3D 프린팅 홀더를 사용하여 각막 층 전체에서 이미지를 캡처하고 다양한 Z 평면에서 칼슘 동원을 관찰할 수 있습니다(그림 3). 이 접근법은 젊은 마우스와 늙은 마우스의 상처에서 정점 및 기저 세포층 사이의 세포-세포 신호 전달을 비교하기 위해 사용되었습니다10.
향상된 안정성은 또한 이전보다 훨씬 더 오랫동안 지구본을 이미징할 수 있게 했습니다. 이를 통해 상처 침대로의 세포 이동에 대한 연구가 이전 능력보다 몇 시간 연장 될 수있었습니다. 이러한 연장된 타임라인으로, 각막 손상 후 젊은 마우스와 늙은 마우스 사이의 상처 치유 반응 동안 세포 행동의 실질적인 차이가 관찰될 수 있다10. 이 프로토콜의 경우 4시간 동안 5분마다 데이터를 수집했습니다. 홀더를 사용할 때 실험 과정 전반에 걸쳐 x, y 또는 z 평면에서 유의미한 드리프트가 관찰되지 않았습니다(그림 4, 비디오 1).
이 프로토콜의 장점은 홀더의 지구 배치에 따라 각막의 다른 영역을 이미지화할 수 있다는 것입니다. 최근 간행물에서 이 특징은 중앙 각막과 각막-윤부 영역 모두에서 이미지를 수집하는 데 활용되었습니다(그림 5)10. 중앙 각막의 손상은 윤부 영역10의 신경에 인접한 세포에서 칼슘 신호 전달 이벤트를 생성하는 것으로 밝혀졌습니다. 홀더의 다재다능함은 이미징 실험을 위해 지구를 안정화하는 것을 넘어 여러 다른 응용 분야에 사용되었습니다. 각막을 위로 향하게 하여 홀더에 놓고 나노인 마우스10,11에서 각막 상피, 기저막 및 기질의 강성을 측정하기 위한 나노인덴테이션 실험을 수행하였다.
그림 1: 3D 프린팅 홀더의 회로도 및 설정. (A) 주석이 달린 높이 및 너비 치수가 있는 3D 인쇄 홀더 디자인. (B) 3D 프린터 소프트웨어의 대표 CAD 파일 이미지. (C) 쥐 지구를 포함하는 덮개가 부착된 홀더의 대표 이미지. (D) 멸균 일회용 접착제가 3D 인쇄 홀더의 바닥에 도포됩니다. (E) 3D 프린팅 홀더를 유리 바닥 p35 세포 배양 접시에 부착합니다. (F) 핵이 제거 된 지구본을 멸균 점안기를 사용하여 각막을 아래로 향하게 놓습니다. (G) 커버 바는 지구본 고정을 보장하기 위해 3D 인쇄 홀더의 상단에 부착됩니다. (H) 홀더와 글로브가 부착 된 유리 바닥 판을 현미경 스테이지에 놓습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 특수 3D 프린팅 홀더를 사용하여 지구를 안정화하고 다층 구조의 고품질 이미징 데이터를 생성합니다. (A) 및 (B)는 각각 3D 프린팅 홀더 없이 안정화된 상처 입은 생체 외 각막의 전형적인 라이브 이미징 데이터를 나타냅니다. 칼슘 신호 전달 사건 (녹색) 및 세포 대조 염색 (진한 적색 원형질막 염색)은 (B)의 각막의 정점, 기저 및 기질층에서 명확하게 식별 할 수 있지만 (A)에서는 명확하게 식별 할 수 없습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 3D 프린팅 홀더에 고정된 각막의 Z 스택. 긁힌 상처에서 각막 층을 통해 찍은 z 스택의 대표 이미지 (흰색 별표로 표시됨). 샘플은 세포막을 시각화하기 위해 진한 빨간색 원형질막 염색으로 염색되고 칼슘 신호 전달을 시각화하기 위해 Fluo4-AM (녹색)으로 염색됩니다. (A) 정점 세포층, (B) 정점 및 기저 세포, (C) 기저 세포층 및 (D) 간질이 상처 침대에서 볼 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4: 각막의 대표적인 4시간 시계열 실험에서 x, y 또는 z 방향으로 지구의 움직임이 거의 없음을 보여줍니다. 이미지는 생체 외 쥐 지구본의 중앙 각막에 있는 긁힌 상처 부상(흰색 별표로 표시됨)입니다. 지구본은 세포막을 시각화하기 위해 진한 빨간색 원형질막 염색으로 염색되고 칼슘 신호 이벤트를 시각화하기 위해 Fluo4-AM (녹색)으로 염색됩니다. 지구본은 3D 인쇄 홀더를 사용하여 고정됩니다. 이미지는 부상 후 1 분 후에 시작하여 5 시간 간격으로 촬영되었습니다. 실험 과정 전반에 걸쳐 이 이미징 설정을 사용하여 x, y 또는 z 방향의 드리프트가 거의 관찰되지 않았습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5: 온전한 지구본의 이미징 위치 다이어그램. 3D 프린팅 홀더를 사용하면 다양한 위치에서 손상되지 않은 생체 외 지구본을 이미징할 수 있습니다. 홀더는 각막의 중앙 및 윤부 영역 모두에서 이미지를 수집하는 데 사용되었습니다. 글로브는 세포막을 감지하기 위해 진한 빨간색 원형질막 염색으로 염색되고 칼슘 신호 전달을 감지하기 위해 Fluo4-AM (녹색)으로 염색됩니다. (A) 긁힌 상처에서 중심 각막의 대표 이미지. (B) 중앙 각막 손상 후 각막 윤부 부위의 대표 이미지. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
비디오 1: 3D 프린팅 홀더에 4시간 동안 고정된 지구본 동영상. 지구본을 3D 프린팅 홀더로 고정하고 진한 빨간색 원형질막 염색(빨간색)으로 염색하여 세포막을 시각화하고 Fluo4-AM(녹색)으로 염색하여 칼슘 신호 이벤트를 시각화했습니다. 부상 후 5 분부터 4 시간 동안 5 분마다 이미지를 촬영했습니다. 실험 과정 전반에 걸쳐 이 이미징 설정을 사용하여 x, y 또는 z 방향의 드리프트가 거의 관찰되지 않았습니다. 재생 속도는 초당 30 프레임입니다. 이 비디오를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
이 프로토콜은 3D 프린팅 홀더를 사용하여 손상되지 않은 동물의 눈을 안정화하고 고정시키는 라이브 셀 이미징 기술을 설명합니다. 이는 생체 외 각막 조직의 이전 라이브 셀 이미징 프로토콜에서 인식된 몇 가지 중요한 단점을 우회하도록 설계되었습니다. 이 프로토콜은 온전한 구체의 라이브 셀 이미징에 많은 이점을 제공합니다. 실험적으로 유도 된 스크래치 상처에 대한 상처 치유 반응을 방해 할 수있는 불필요한 조직 손상을 크게 줄입니다. 여기에는 해부 및 자외선 노출로 인한 신경 및 상피 손상이 포함됩니다. 또한, 이 프로토콜은 성장 배지가 실험의 중단 없이 주기적으로 적용될 수 있도록 하는 방식으로 조직을 고정시킴으로써 조직 수화 및 생존성을 촉진합니다. 홀더에서 눈의 방향을 변경함으로써 프로토콜은 지구상의 다른 영역의 이미징을 허용합니다. 이 프로토콜과 함께 컨포칼 현미경을 사용하면 지구의 다른 평면을 이미징할 수 있으므로 조직 구조 간의 상호 작용을 관찰할 수 있습니다. 이 프로토콜은 매우 다재다능하며 생쥐 및 기타 종의 다양한 크기의 지구본에 적용할 수 있습니다. 홀더와 커버는 이미징 웰에서 쉽게 제거하고 멸균 및 재사용할 수 있습니다. 3D 프린팅 프로토콜은 효율적이고 시간 효율적이어서 한 번에 많은 홀더를 편리하게 만들 수 있습니다. 샘플을 보관하고 나중에 다시 이미지화해야 하는 경우 글로브를 홀더 내에 고정할 수 있습니다. 고정 조직은 고정 후 몇 주 동안 진한 빨간색 원형질막 염색과 Fluo4-AM 염색을 유지하며, 이는 특정 단백질을 염색할 때 마커로 사용할 수 있습니다.
이전 프로토콜은 눈의 해부와 이미징을 위해 각막을 고정하기 위해 UV 활성화 PEG 젤의 후속 사용을 요구했습니다 7,8,9. 이러한 기술을 통해 발생한 조직 손상은 실험 결과를 혼란스럽게 할 수 있습니다. 이것은 실험적으로 적용된 상처를 넘어서는 이러한 추가 손상이 상처 치유 반응 4,12을 변경할 수 있기 때문에 상처 치유와 관련된 세포 및 조직 과정을 연구 할 때 고려하는 것이 특히 중요합니다. 감각 각막 신경의 입력은 해부 과정이 삼차 신경절(13)에서 세포체로부터 신경을 절단하기 때문에 이전 프로토콜에 의해 영향을받을 것이다. 또한, 각막의 박리는 그 자체로 상해 반응을 일으킬 것인데, 이는 상해로부터 방출된 용해성 인자들이 상처치유 반응4에 대한 책임이 있기 때문이다. 이 새로운 절차는 지구본을 그대로 이미징하여 이러한 약점을 해결합니다. 이 방법론을 사용하면 눈 손상은 핵 제거시 시신경 절단으로 제한되고 장기간 각막 내 세포 생존력을 유지합니다. 이러한 개선은 함께 상처 반응의 더 나은 시뮬레이션을 만듭니다.
고정화는 살아있는 조직으로 작업할 때 필수적이지만 어려운 단계로, 실험 과정 내내 실행 가능하고 수분을 유지해야 합니다. 각막과 글로브는 UV 유도 PEG 겔로 고정될 수 있지만, 절차는 조직을 홀더(8)에 배치한 후 UV 조사를 필요로 한다. PEG를 중합하는데 필요한 조사가 세포 반응성을 감소시키는 것으로 관찰되었다. 또한 PEG는 이미지의 해상도를 감소시켰고 세포 신호 전달을 관찰하려면 AiryScan 기능이 필요했습니다. 이 새로운 프로토콜에서 홀더의 치수는 글로브에 정확하게 맞도록 최적화되었으며 커버 바는 추가 고정 레이어를 제공합니다. 홀더와 커버 바는 상처 치유 과정의 실시간 영상으로 고품질의 고해상도 이미지를 생성하는 PEG를 사용할 필요가 없습니다. 위에서 언급한 문제에 대한 한 가지 해결책은 생세포 이미징을 완전히 포기하고 부상 후 미리 결정된 시간에 파라포름알데히드(4%)로 지구를 고정하는 것입니다. 그러나 고정 된 조직에서는 칼슘 신호 전달과 같은 진행중인 세포 과정과 이러한 과정이 조직의 물리적 변화에 미치는 영향을 관찰 할 수 없습니다. 각막 상피의 세포 간의 통신 이벤트를 기록하고 정량화하는 데 관심이있는 그룹의 경우 조직 고정에 의해 부과 된 한계로 인해이 기술은 그러한 목적에 실용적이지 않습니다.
이 새로운 프로토콜에는 (1) 안락사 및 즉각적인 지구 핵 제거, (2) 보유자 내에서 지구의 위치 및 방향이라는 두 가지 주요 단계가 있습니다. 시신경의 절단과 지구의 핵 제거는 내부 및 외부 구조를 보존하기 위해 버팀대를 배치하지 않고 눈을 지지하여 조심스럽게 수행해야 합니다. 위치 지정 및 방향은 관심 부위의 이미징에 필요하며 가능한 가장 큰 시야에 적절한 세부 사항에 초점을 맞추는 데 필요합니다. 커버 바를 홀더에 적용하기 전에 지구본을 올바르게 배치해야 합니다.
프로토콜의 여러 변수는 실험 매개 변수의 요구 사항에 따라 조정할 수 있습니다. 홀더는 다양한 볼륨의 지구본을 수용하기 위해 다양한 크기로 인쇄 할 수 있습니다. 지구 크기와 관련된 홀더 직경 및 높이에 관한 매개변수는 크기 범위에서 동일하게 유지됩니다. 사용자가 z-평면에서 드리프트를 경험하는 경우 잠재적인 이유는 조직이 고정되지 않았기 때문일 수 있으며 홀더를 다시 제조해야 합니다. 온전한 글로브의 염색은 실험 파라미터, 사용된 염색, 관심 조직의 최적 환경 및 농도에 따라 조정할 수 있습니다. 실험 기간은 조직 생존력이 유지되는 한 조정할 수 있습니다. 1 시간의 지속적인 조직 이미징을 포함하는 단기 실험과 4 시간 동안 일정한 간격으로 조직을 이미징하는 장기 실험이 모두 성공적으로 수행되었습니다. 이러한 실험은 도립 현미경에서 수행되었으며 이 프로토콜은 유사한 이미징 설정에서 최적으로 사용하도록 설계되었습니다. 지구본이 안정화되고 홀더 내에 위치하면 지구본을 제거하면 조직이 손상될 수 있습니다. 따라서 커버 바를 부착하기 전에 지구본의 최적의 위치와 방향이 필수적입니다. 글로브는 단백질 국소화의 추가 분석을 위해 홀더 내에 있는 동안 4% 파라포름알데히드로 고정될 수 있습니다. 예비 데이터에 따르면 진한 빨간색 원형질막 염색과 Fluo4-AM 염색은 모두 고정 과정을 통해 유지됩니다.
이 프로토콜은 이전 프로토콜에 비해 많은 장점이 있지만 이 실험적 접근 방식에는 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 한 가지 단점은 각막 상피를 손상시키지 않고 홀더에서 지구를 제거하기가 어렵다는 것입니다. 따라서 지구본은 나중에 단백질 또는 RNA 국소화 방법을 사용하여 재 이미징하기 위해 홀더에 고정되어야합니다. 이것은 후속 연구를 제한 할 수 있습니다. 연장된 이미징 프로토콜 동안 이 프로토콜의 또 다른 단점은 수분 공급이 유지되어야 한다는 것입니다. 정기적으로 미디어를 수동으로 다시 적용해야 하는 경우 누군가가 실험 범위에 대해 이미징 프로세스를 적극적으로 모니터링해야 합니다. 이는 확장된 이미징 프로토콜의 경우 물류적으로 어려울 수 있습니다.
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Disclosures
우리는 공개 할 이해 상충이 없습니다.
Acknowledgments
RO1EY032079 (VTR), R21EY029097-01 (VTR), 1F30EY033647-01 (KS) 및 5T32GM008541-24 (KS)의 보조금 지원에 대해 NIH에 감사드립니다. 또한 매사추세츠 라이온스 안구 연구 기금과 뉴잉글랜드 각막 이식 기금에 감사드립니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1.75 blue polylactic acid (PLA) plastic | Creality (Shenzen, China) | N/A | Material for holder |
| 35 mm Dish, No. 1.5 Coverslip, 14 mm glass diameter, Poly-D-Lysine Coated | MatTek Corporation (Ashland, MA) | P35GC-1.5-14-C | Well for imaging. |
| Autodesk Fusion 360 software | Autodesk (San Rafael, CA). | N/A | Software used for printing the holders. |
| BD 25 G 7/8 sterile needles single use 100 needles/box | Thermo Fisher Scientific (Waltham, MA) | 305124 | For experimentally-induced wounds to the globes |
| CellMask DeepRed | Invitrogen (Carlsbad, CA) | C10046 | Cell membrane counterstain. Calcium indicator. 1:10,000 concentration with a final concentration of 1%(v/v) DMSO and 0.1% (w/v) pluronic acid |
| Complete Home Super Glue | Walgreens (Deerfield, IL) | N/A | For attaching the holder to the imaging well |
| Ender 3 Pro 3D printer | Creality (Shenzen, China) | N/A | For printing the holder |
| FIJI/ImageJ | ImageJ (Bethesda, MD) | License Number: GPL2 | Softwareused for confirming consistency of wound depth and diameter between independent globes using Region of Interest analysis |
| Fluo-4 | Invitrogen (Carlsbad, CA) | F14201 | Calcium indicator. 1:100 concentration with a final concentration of 1%(v/v) DMSO and 0.1% (w/v) pluronic acid |
| Keratinocyte Serum-Free Medium | Gibco (Waltham, MA) | 17005042 | 25 mg/mL bovine pituitary extract, 0.02 nM EGF, 0.3 mM CaCl2, and penicillin-streptomycin (100 units/mL, 100 µg/mL, respectively) added to medium |
| Phophate-Buffered Saline (PBS) | Corning, Medlabtech (Manassas, VA) | 21-040-CV | Used to wash excess stain off of corneas before imaging |
| Zeiss Confocal 880 Microscope with AiryScan | Zeiss (Thornwood, NY) | N/A | 20x magnification objective was used |
References
- Kneer, K., et al. High fat diet induces pre-type 2 diabetes with regional changes in corneal sensory nerves and altered P2X7 expression and localization. Experimental Eye Research. 175, 44-55 (2018).
- Lee, Y., et al. Sustained Ca2+ mobilizations: A quantitative approach to predict their importance in cell-cell communication and wound healing. PLoS One. 14 (4), 0213422 (2019).
- Stepp, M. A., et al. Wounding the cornea to learn how it heals. Experimental Eye Research. 121, 178-193 (2014).
- Klepeis, V. S., Cornell-Bell, A., Trinkaus-Randal, V. Growth factors but not gap junctions play a role in injury-induced Ca2+ waves in epithelial cells. Journal of Cell Science. 114 (23), 4185-4195 (2001).
- Lee, A., et al. Hypoxia-induced changes in Ca(2+) mobilization and protein phosphorylation implicated in impaired wound healing. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 306 (10), 972-985 (2014).
- Boucher, I., Rich, C., Lee, A., Marcincin, A., Trinkaus-Randall, V. The P2Y2 receptor mediates the epithelial injury response and cell migration. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 299 (2), 411-421 (2010).
- Awal, M. R., Wirak, G. S., Gabel, C. V., Connor, C. W. Collapse of global neuronal states in Caenorhabditis elegans under isoflurane anesthesia. Anesthesiology. 133 (1), 133-144 (2020).
- Burnett, K., Edsinger, E., Albrecht, D. R. Rapid and gentle hydrogel encapsulation of living organisms enables long-term microscopy over multiple hours. Communications Biology. 1, 73 (2018).
- Rhodes, G., et al. Pannexin1: Role as a sensor to injury is attenuated in pretype 2 corneal diabetic epithelium. Analytical Cellular Pathology. 2021, 4793338 (2021).
- Segars, K. L., et al. Age dependent changes in corneal epithelial cell signaling. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 886721 (2022).
- Xu, P., Londregan, A., Rich, C., Trinkaus-Randall, V. Changes in epithelial and stromal corneal stiffness occur with age and obesity. Bioengineering. 7 (1), 14 (2020).
- Minns, M. S., Teicher, G., Rich, C. B., Trinkaus-Randall, V. Purinoreceptor P2X7 regulation of Ca(2+) mobilization and cytoskeletal rearrangement is required for corneal reepithelialization after injury. The American Journal of Pathology. 186 (2), 285-296 (2016).
- Tadvalkar, G., Pal-Ghosh, S., Pajoohesh-Ganji, A., Stepp, M. A. The impact of euthanasia and enucleation on mouse corneal epithelial axon density and nerve terminal morphology. The Ocular Surface. 18 (4), 821-828 (2020).
