Summary

Ortotopisk implantasjon av pasientavledede kreftceller hos mus rekapitulerer avansert kolorektal kreft

Published: February 10, 2023
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver den ortotopiske implantasjonen av pasientavledede kreftceller i cecumveggen hos immundefekte mus. Modellen rekapitulerer avansert metastatisk sykdom i kolorektal kreft og muliggjør evaluering av nye terapeutiske legemidler i et klinisk relevant scenario for lunge- og levermetastaser.

Abstract

I løpet av det siste tiåret har mer sofistikerte prekliniske kolorektal kreft (CRC) modeller blitt etablert ved hjelp av pasientavledede kreftceller og 3D-tumoroider. Siden pasientavledede tumororganoider kan beholde egenskapene til den opprinnelige svulsten, muliggjør disse pålitelige prekliniske modellene screening av kreftmedisiner og studiet av legemiddelresistensmekanismer. Imidlertid er CRC-relatert død hos pasienter hovedsakelig forbundet med tilstedeværelsen av metastatisk sykdom. Det er derfor viktig å evaluere effekten av anti-kreftbehandlinger i relevante in vivo-modeller som virkelig rekapitulerer de viktigste molekylære egenskapene til human kreftmetastase. Vi har etablert en ortotopisk modell basert på injeksjon av CRC-pasientavledede kreftceller direkte inn i cecumveggen hos mus. Disse tumorcellene utvikler primære svulster i cecum som metastaserer til leveren og lungene, noe som ofte observeres hos pasienter med avansert CRC. Denne CRC-musemodellen kan brukes til å evaluere legemiddelresponser overvåket av mikrocomputertomografi (μCT), en klinisk relevant småskala bildebehandlingsmetode som lett kan identifisere primære svulster eller metastaser hos pasienter. Her beskriver vi den kirurgiske prosedyren og den nødvendige metodikken for å implantere pasientavledede kreftceller i cecumveggen hos immundefekte mus.

Introduction

Kolorektal kreft (CRC) er den nest største årsaken til kreftdød over hele verden1. Evnen til å generere in vitro eller in vivo tumormodeller avledet fra individuelle pasienttumorceller har avansert presisjonsmedisin innen onkologi. I løpet av det siste tiåret har pasientavledede organoider (PUD) eller xenotransplantater (PDX) blitt brukt av mange forskningsgrupper rundt om i verden2. PUD er flercellede in vitro-strukturer som ligner funksjonene i det opprinnelige tumorvevet og kan selvorganisere og selvfornye3. Disse lovende in vitro-modellene kan med hell brukes til narkotikascreening og legge til rette for translasjonsforskning. På den andre siden rekapitulerer PDX-modellene trofast den opprinnelige CRC på alle relevante nivåer, fra histologi til molekylære egenskaper og legemiddelrespons 2,4.

In vivo PDX-modeller dyrkes for det meste som subkutane svulster i immundefekte mus. Ved hjelp av denne tilnærmingen har PDX blitt gullstandarden i kreftforskning, spesielt for å studere legemiddelfølsomhet eller resistens. Imidlertid er CRC-relaterte dødsfall hovedsakelig forbundet med tilstedeværelsen av metastaserende lesjoner i leveren, lungen eller bukhulen, og ingen av de to tilnærmingene (PUD eller PDX) kan rekapitulere den avanserte kliniske innstillingen. I tillegg har det spesifikke stedet for tumorvekst vist seg å bestemme viktige biologiske egenskaper som har innvirkning på legemiddeleffekt og sykdomsprognose2. Derfor er det et presserende behov for å etablere prekliniske modeller som kan brukes til å vurdere effekten av kreftmedisiner i en klinisk relevant metastatisk setting6.

Mikrocomputertomografiskannere (μCT) kan fungere som nedskalerte kliniske CT-skannere, og gir primærtumor- og metastaseavbildning hos mus med en skalert bildeoppløsning proporsjonal med CT-bilder av kreftpasienter7. For å motvirke den dårlige bløtvevskontrasten til μCT-teknikken, kan radiologiske joderte kontrastmidler brukes til å forbedre kontrasten og evaluere tumorbelastningen. Ved hjelp av en dobbel kontrasttilnærming administreres oralt og intraperitonealt jod på forskjellige tidspunkter. Kontrasten administrert oralt bidrar til å definere grensene mellom tumorvev og cecum innhold inne i tarmen.  På den andre siden tillater kontrasten administrert intraperitonealt identifisering av de ytre grensene for tumormassen, som ofte vokser og invaderer bukhinnen8.

Manuskriptet beskriver en protokoll for å utføre ortotopisk implantasjon av pasientavledede kreftceller i cecumveggen hos immundefekte mus, og metodikken for å overvåke intestinal tumorvekst ved hjelp av μCT-skanning. Det foreliggende manuskriptet viser at modellen rekapitulerer det kliniske scenariet med avanserte tarmsvulster og metastatisk sykdom hos CRC-pasienter som ikke kan studeres ved hjelp av PUD- eller PDXO-modeller. Siden ortotopiske PDX-modeller av CRC rekapitulerer det kliniske scenariet for CRC-pasienter, konkluderer vi med at de er de beste til dags dato for å teste effekten av antitumorale legemidler i avanserte tarmtumorer og metastatisk sykdom.

Protocol

Det ble innhentet skriftlig informert samtykke fra alle pasientene. Prosjektet ble godkjent av forskningsetisk komité ved Vall d’Hebron universitetssykehus, Barcelona, Spania (godkjenning ID: PR(IR)79/2009 PR(AG)114/2014, PR(AG)18/2018). Vevsprøver fra humant tykktarm besto av biopsier fra ikke-nekrotiske områder av primære adenokarsinomer eller levermetastaser, svarende til pasienter med tykk- og endetarmskreft som var tumorreseksjonert. Forsøkene ble utført i henhold til EUs dyrepleiedirektiv (86/609/EØF) og ble…

Representative Results

Mus ortopisk implantert med pasientavledede kreftceller ble overvåket ukentlig ved μCT-skanning. På slutten av forsøket ble dyrene avlivet. Tarm, ceca (figur 1A,B), lever, lunger og andre mulige lesjoner ble samlet, inkludert i en kassett, og fiksert med 4% formalin over natten. Tarmvev fra mus uten tumor i cecum ble brukt som kontroll (figur 1C). Til slutt ble kassetter endret til 70% etanol i minst 3 timer og parafin innebygd. Hematoksylin…

Discussion

I løpet av de siste tiårene har mange nye anti-kreftbehandlinger blitt utviklet og testet hos pasienter med forskjellige svulsttyper, inkludert kolorektal kreft (CRC). Selv om lovende resultater i prekliniske modeller har blitt observert i mange tilfeller, har den terapeutiske effekten hos pasienter med avansert metastatisk CRC ofte vært begrenset. Derfor er det et presserende behov for prekliniske modeller som gjør det mulig å teste effekten av nye terapeutiske legemidler i et klinisk relevant metastatisk scenario….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner Cellex Foundation, CIBERONC-nettverket og Instituto de Salud Carlos III for deres støtte. Videre takker vi også den prekliniske bildebehandlingsplattformen ved Vall d’Hebron Research Institute (VHIR), hvor eksperimentene ble utført.

Materials

REAGENT
Apo-Transferrin MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. T1147-500MG
B27 Supplement Life Technologies S.A (Spain) 17504044
Chlorhexidine Aqueous Solution 2% DH MATERIAL MÉDICO, S.L. 1111696250
Collagenase MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. C0130-500MG
D-(+)-Glucose MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. G6152
DMEM /F12  LIFE TECHNOLOGIES S.A. 21331-020
DNase I   MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. D4263-5VL
EGF PEPRO TECH EC LTD. AF-100-15-500 µg
FGF basic PEPRO TECH EC LTD. 100-18B
Fungizone Life Technologies S.A (Spain) 15290026
Gentamycin LIFE TECHNOLOGIES S.A. 15750037
Heparin Sodium Salt MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. H4784-250MG
Insulin MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. I9278-5ML
Iopamiro
Isoflurane 
Kanamycin LIFE TECHNOLOGIES S.A. 15160047
L-Glutamine LIFE TECHNOLOGIES S.A. 25030032
Matrigel Matrix CULTEK, S.L.U. 356235/356234/354234
Metacam, 5 mg/mL
Non-essential amino acids LIFE TECHNOLOGIES S.A. 11140035
Nystatin MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. N4014-50MG
Pen/Strep Life Technologies S.A (Spain) 15140122
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile Labclinics S.A L0615-500
Progesterone MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. P0130-25G
Putrescine MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. P5780-5G
RBC Lysis Buffer  Labclinics S.A 00-4333-57
Sodium Pyruvate LIFE TECHNOLOGIES S.A. 11360039
Sodium Selenite MERCK LIFE SCIENCE S.L.U. S5261-25G
ESSENTIAL SUPPLIES
8 weeks-old NOD.CB17-Prkdcscid/NcrCrl mice
BD Micro-Fine 0.5 ml U 100 needle 0.33 mm (29G) x 12.7 mm  BECTON DICKINSON, S.A.U. 320926
Blade #24
Cell Strainer 100 µm Cultek, SLU 45352360
Forceps and Surgical scissors
Heating pad
Lacryvisc, 3 mg/g, ophthalmic gel
Surfasafe
Suture PROLENE 5-0  JOHNSON&JOHNSON S, A. 8720H
EQUIPMENT/SOFTWARE
Quantum FX µCT Imaging system Perkin Elmer Perkin Elmer http://www.perkinelmer.com/es/product/quantum-gx-instrument-120-240-cls140083

References

  1. Sung, H., et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: a Cancer Journal for Clinicians. 71 (3), 209-249 (2021).
  2. Puig, I., et al. A personalized preclinical model to evaluate the metastatic potential of patient-derived colon cancer initiating cells. Clinical Cancer Research. 19 (24), 6787-6801 (2013).
  3. Clevers, H. Modeling development and disease with organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  4. Byrne, A. T., et al. Interrogating open issues in cancer precision medicine with patient-derived xenografts. Nature Reviews. Cancer. 17 (4), 254-268 (2017).
  5. Vatandoust, S., Price, T. J., Karapetis, C. S. Colorectal cancer: Metastases to a single organ. World Journal of Gastroenterology. 21 (41), 11767-11776 (2015).
  6. Cespedes, M. V., et al. Orthotopic microinjection of human colon cancer cells in nude mice induces tumor foci in all clinically relevant metastatic sites. The American Journal of Pathology. 170 (3), 1077-1085 (2007).
  7. Durkee, B. Y., Weichert, J. P., Halberg, R. B. Small animal micro-CT colonography. Methods. 50 (1), 36-41 (2010).
  8. Boll, H., et al. Double-contrast micro-CT colonoscopy in live mice. International Journal of Colorectal Disease. 26 (6), 721-727 (2011).
  9. O’Brien, C. A., Pollett, A., Gallinger, S., Dick, J. E. A human colon cancer cell capable of initiating tumour growth in immunodeficient mice. Nature. 445 (7123), 106-110 (2007).
  10. Jensen, M. M., Jorgensen, J. T., Binderup, T., Kjaer, A. Tumor volume in subcutaneous mouse xenografts measured by microCT is more accurate and reproducible than determined by 18F-FDG-microPET or external caliper. BMC Medical Imaging. 8, 16 (2008).
  11. Herpers, B., et al. Functional patient-derived organoid screenings identify MCLA-158 as a therapeutic EGFR x LGR5 bispecific antibody with efficacy in epithelial tumors. Nature Cancer. 3 (4), 418-436 (2022).
  12. Chicote, I., Camara, J. A., Palmer, H. G. Advanced colorectal cancer orthotopic patient-derived xenograft models for cancer and stem cell research. Methods in Molecular Biology. 2171, 321-329 (2020).
check_url/64629?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chicote, I., Martínez-Quintanilla, J., Cámara, J. A., Palmer, H. G. Orthotopic Implantation of Patient-Derived Cancer Cells in Mice Recapitulates Advanced Colorectal Cancer. J. Vis. Exp. (192), e64629, doi:10.3791/64629 (2023).

View Video