Summary

Undersøke de beskyttende effektene av platycodin d på ikke-alkoholholdig fettleversykdom i en palmitinsyreindusert in vitro-modell

Published: December 02, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen undersøker den beskyttende effekten av platycodin D på ikke-alkoholholdig fettleversykdom i en palmitinsyreindusert in vitro-modell .

Abstract

Forekomsten av ikke-alkoholholdig fettleversykdom (NAFLD) har økt med en alarmerende hastighet over hele verden. Platycodon grandiflorum er mye brukt som en tradisjonell etnomedisin for behandling av ulike sykdommer og er en typisk funksjonell mat som kan innlemmes i det daglige kostholdet. Studier har antydet at platycodin D (PD), en av de viktigste aktive ingrediensene i Platycodon grandiflorum, har høy biotilgjengelighet og reduserer fremdriften av NAFLD betydelig, men den underliggende mekanismen for dette er fortsatt uklar. Denne studien tar sikte på å undersøke den terapeutiske effekten av PD mot NAFLD in vitro. AML-12-celler ble forbehandlet med 300 μM palmitinsyre (PA) i 24 timer for å modellere NAFLD in vitro. Deretter ble cellene enten behandlet med PD eller fikk ingen PD-behandling i 24 timer. Nivåene av reaktive oksygenarter (ROS) ble analysert ved bruk av 2′,7′-diklor-dihydro-fluoresceindiacetat (DCFH-DA) farging, og mitokondriemembranpotensialet ble bestemt ved JC-1-fargemetoden. Videre ble proteinuttrykksnivåene av LC3-II / LC3-I og p62 / SQSTM1 i cellelysatene analysert ved vestlig blotting. PD ble funnet å signifikant redusere ROS og mitokondriemembranpotensialnivåene i den PA-behandlede gruppen sammenlignet med kontrollgruppen. I mellomtiden økte PD LC3-II / LC3-I-nivåene og reduserte p62 / SQSTM1-nivåene i den PA-behandlede gruppen sammenlignet med kontrollgruppen. Resultatene indikerte at PD forbedret NAFLD in vitro ved å redusere oksidativt stress og stimulere autofagi. Denne in vitro-modellen er et nyttig verktøy for å studere PDs rolle i NAFLD.

Introduction

Platycodon grandiflorus (PG), som er den tørkede roten til Platycodon grandiflorus (Jacq.) A.DC., brukes i tradisjonell kinesisk medisin (TCM). Den produseres hovedsakelig i nordøst-, nord-, øst-, sentral- og sørvestregionene i Kina1. PG-komponentene inkluderer triterpenoid saponiner, polysakkarider, flavonoider, polyfenoler, polyetylenglykoler, flyktige oljer og mineraler2. PG har en lang historie med å bli brukt som mat og urtemedisin i Asia. Tradisjonelt ble denne urten brukt til å lage medisin mot lungesykdommer. Moderne farmakologi gir også bevis på effekten av PG for behandling av andre sykdommer. Studier har vist at PG har en terapeutisk effekt på en rekke legemiddelinduserte leverskademodeller. Kosttilskudd av PG eller platycodin-ekstrakter kan forbedre fettrik diettindusert fedme og relaterte metabolske sykdommer 3,4,5. Polysakkarider fra PG kan brukes til behandling av akutt leverskade forårsaket av LPS / D-GalN hos mus6. Videre forbedrer saponiner fra røttene til PG fettfattig diettindusert ikke-alkoholisk steatohepatitt (NASH)7. Videre kan platycodin D (PD), en av de viktigste terapeutiske komponentene i PG, forbedre lipoproteinreseptorekspresjon med lav tetthet og lipoproteinopptak med lav tetthet i humant hepatocellulært karsinom (HepG2) celler8. Videre kan PD også indusere apoptose og hemme adhesjon, migrasjon og invasjon i HepG2-celler 9,10. I denne studien brukes således mushepatom AML-12-celler til in vitro-modellkonstruksjon og for å studere farmakologiske effekter og underliggende mekanismer for PD i denne modellen.

Begrepet ikke-alkoholholdig fettleversykdom (NAFLD) refererer til en gruppe leversykdommer som inkluderer enkel steatose, NASH, skrumplever og hepatocellulært karsinom11. Selv om patogenesen til NAFLD er ufullstendig forstått, fra den klassiske “to-hit” -teorien til den nåværende “multiple-hit” -teorien, anses insulinresistens å være sentral i patogenesen til NAFLD12,13,14. Studier har vist at insulinresistens i hepatocytter kan føre til økte frie fettsyrer, som danner triglyserider som avsettes i leveren og forårsaker at leveren blir fet15,16. Akkumuleringen av fett kan føre til lipotoksisitet, oksidativ stressindusert mitokondriell dysfunksjon, endoplasmatisk retikulumstress og inflammatorisk cytokinfrigivelse, noe som resulterer i patogenesen og progresjonen av NAFLD17,18. I tillegg spiller autofagi også en rolle i patogenesen til NAFLD, da den er involvert i regulering av cellulær insulinfølsomhet, cellulær lipidmetabolisme, hepatocyttskade og medfødt immunitet 19,20,21.

En rekke dyremodeller og cellulære modeller er etablert for å gi grunnlag for å utforske patogenesen og potensielle terapeutiske mål for NAFLD22,23. Imidlertid kan enkeltdyrmodeller ikke fullt ut etterligne alle de patologiske prosessene i NAFLD24. Individuelle forskjeller mellom dyr fører til forskjellige patologiske egenskaper. Bruk av levercellelinjer eller primære hepatocytter i in vitro-studier av NAFLD sikrer maksimal konsistens i eksperimentelle forhold. Dysregulering av lipidmetabolisme i lever kan føre til høyere nivåer av akkumulering av hepatocyttlipiddråper i NAFLD25. Frie fettsyrer som oljesyre og palmeolje har blitt brukt i in vitro-modellen for å etterligne NAFLD forårsaket av et fettfattig kosthold26,27. Den humane hepatoblastomcellelinjen HepG2 brukes ofte i konstruksjonen av NAFLD-modeller in vitro, men som en tumorcellelinje er metabolismen av HepG2-celler signifikant forskjellig fra leverceller under normale fysiologiske forhold28. Derfor er bruk av primære hepatocytter eller musprimære hepatocytter for å konstruere in vitro NAFLD-modellen for legemiddelscreening mer fordelaktig enn å bruke tumorcellelinjer. Sammenligning av synergistisk undersøkelse av legemiddeleffekter og terapeutiske mål i både dyremodeller og in vitro hepatocyttmodeller, ser det ut til at bruk av musehepatocytter for å konstruere in vitro NAFLD-modellen har bedre applikasjonspotensial.

Frie fettsyrer som kommer inn i leveren oksideres for å produsere energi eller lagres som triglyserider. Signifikant har frie fettsyrer en viss lipotoksisitet og kan indusere cellulær dysfunksjon og apoptose12. Palmitinsyre (PA) er den mest tallrike mettede fettsyren i humant plasma29. Når celler i ikke-fettvev blir utsatt for høye konsentrasjoner av PA i lang tid, stimulerer dette produksjonen av reaktive oksygenarter (ROS) og forårsaker oksidativt stress, lipidakkumulering og til og med apoptose30. Derfor bruker mange forskere PA som en induktor for å stimulere leverceller til å produsere ROS og dermed konstruere in vitro fettleversykdomsmodellen og evaluere de beskyttende effektene av visse aktive stoffer på celler31,32,33,34. Denne studien introduserer en protokoll for å undersøke de beskyttende effektene av PD på en cellemodell av NAFLD indusert av PA.

Protocol

AML-12-celler (en normal hepatocyttcellelinje fra mus) brukes til cellebaserte studier. Cellene hentes fra en kommersiell kilde (se Materialfortegnelse). 1. Forbehandling av AML-12-cellene for å modellere NAFLD in vitro Vedlikehold cellene i normale cellekulturmedier (DMEM pluss Hams F12 [1:1] som inneholder 0,005 mg/ml insulin, 5 ng/ml selen, 0,005 mg/ml transferrin, 40 ng/ml deksametason og 10 % føtal bovint serum [FBS], se mate…

Representative Results

Intracellulær ROS i celleneAML-12-celler ble indusert med 300 μM PA i 24 timer, og en NAFLD-cellemodell ble etablert. Deretter ble cellene behandlet med PD i 24 timer. Cellene ble merket med en DCFH-DA fluorescerende sonde, og ROS-produksjon ble observert under et fluorescensmikroskop. Resultatene av DCFH-DA-fargingen av intracellulær ROS i cellene er vist i figur 1. Resultatene viste at PD kunne redusere nivået av intracellulær ROS signifikant i cellene inkubert me…

Discussion

Studier har fremhevet det faktum at NAFLD er et kliniskpatologisk syndrom, alt fra fettlever til NASH, som kan utvikle seg til skrumplever og leverkreft51. Et fettrikt kosthold og en inaktiv livsstil er typiske risikofaktorer for NAFLD. Både ikke-medisinske terapier og narkotikaterapier for NAFLD-behandling har blitt undersøkt51,52,53. Patogenesen til NAFLD er imidlertid ikke fullstendig klarlagt. Metod…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet støttes av tilskudd fra Chongqing Science and Technology Commission (cstc2020jxjl-jbky10002, jbky20200026, cstc2021jscx-dxwtBX0013 og jbky20210029) og China Postdoctoral Science Foundation (nr. 2021MD703919).

Materials

5% BSA Blocking Buffer Solarbio, Beijing, China SW3015
AML12 (alpha mouse liver 12) cell line Procell Life Science&Technology Co., Ltd, China AML12
Beyo ECL Plus Beyotime, Shanghai, China P0018S
Bio-safety cabinet Esco Micro Pte Ltd, Singapore AC2-5S1 A2 
cellSens Olympus, Tokyo, Japan 1.8
Culture CO2 Incubator Esco Micro Pte Ltd, Singapore CCL-170B-8
Dexamethasone Beyotime, Shanghai, China ST125
Dimethyl sulfoxide Solarbio, Beijing, China D8371
DMEM/F12 Hyclone, Logan, UT, USA SH30023.01
Foetal Bovine Serum Hyclone, Tauranga, New Zealand SH30406.05
Graphpad software GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA 8.0
HRP Goat Anti-Mouse IgG (H+L) ABclonal, Wuhan, China AS003
Hydrophobic PVDF Transfer Membrane Merck, Darmstadt, Germany IPFL00010
Insulin, Transferrin, Selenium Solution, 100× Beyotime, Shanghai, China C0341
MAP LC3β Antibody Santa Cruz Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd SC-376404
Mitochondrial Membrane Potential Assay Kit with JC-1 Solarbio, Beijing, China M8650
Olympus Inverted Microscope IX53 Olympus, Tokyo, Japan IX53
Palmitic Acid Sigma, Germany P0500
Penicillin-Streptomycin Solution (100x) Hyclone, Logan, UT, USA SV30010
Phenylmethanesulfonyl fluoride Beyotime, Shanghai, China ST506
Phosphate Buffered Solution Hyclone, Logan, UT, USA BL302A
Platycodin D Chengdu Must Bio-Technology Co., Ltd, China CSA: 58479-68-8
Protease inhibitor cocktail for general use, 100x Beyotime, Shanghai, China P1005
Protein Marker Solarbio, Beijing, China PR1910
Reactive Oxygen Species Assay Kit Solarbio, Beijing, China CA1410
RIPA Lysis Buffer Beyotime, Shanghai, China P0013E
SDS-PAGE Gel Quick Preparation Kit Beyotime, Shanghai, China P0012AC
SDS-PAGE Sample Loading Buffer, 5x Beyotime, Shanghai, China P0015
Sigma Centrifuge Sigma, Germany 3K15
SQSTM1/p62 Antibody Santa Cruz Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd SC-28359
Tecan Infinite 200 PRO   Tecan Austria GmbH, Austria 1510002987
WB Transfer Buffer,10x Solarbio, Beijing, China D1060
β-Actin Mouse mAb ABclonal, Wuhan, China AC004

References

  1. Xunyan, X. Y., Fang, X. M. The effect of Platycodon grandiflorum and its historical change in the clinical application of Platycodonis radix. Zhonghua Yi Shi Za Shi. 51 (3), 167-176 (2021).
  2. Ma, X., et al. Platycodon grandiflorum extract: Chemical composition and whitening, antioxidant, and anti-inflammatory effects. RSC Advances. 11 (18), 10814-10826 (2021).
  3. Ke, W., et al. Dietary Platycodon grandiflorus attenuates hepatic insulin resistance and oxidative stress in high-fat-diet induced non-alcoholic fatty liver disease. Nutrients. 12 (2), 480 (2020).
  4. Kim, Y. J., et al. Platycodon grandiflorus root extract attenuates body fat mass, hepatic steatosis and insulin resistance through the interplay between the liver and adipose tissue. Nutrients. 8 (9), 532 (2016).
  5. Park, H. M., et al. Mass spectrometry-based metabolomic and lipidomic analyses of the effects of dietary Platycodon grandiflorum on liver and serum of obese mice under a high-fat diet. Nutrients. 9 (1), 71 (2017).
  6. Qi, C., et al. Platycodon grandiflorus polysaccharide with anti-apoptosis, anti-oxidant and anti-inflammatory activity against LPS/D-GalN induced acute liver injury in mice. Journal of Polymers and the Environment. 29 (12), 4088-4097 (2021).
  7. Choi, J. H., et al. Saponins from the roots of Platycodon grandiflorum ameliorate high fat diet-induced non-alcoholic steatohepatitis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 86, 205-212 (2017).
  8. Choi, Y. J., et al. Platycodin D enhances LDLR expression and LDL uptake via down-regulation of IDOL mRNA in hepatic cells. Scientific Reports. 10, 19834 (2020).
  9. Li, T., et al. Platycodin D triggers autophagy through activation of extracellular signal-regulated kinase in hepatocellular carcinoma HepG2 cells. European Journal of Pharmacology. 749, 81-88 (2015).
  10. Lu, J. -. J., et al. Proteomic analysis of hepatocellular carcinoma HepG2 cells treated with platycodin D. Chinese Journal of Natural Medicines. 13 (9), 673-679 (2015).
  11. Neuschwander-Tetri, B. A. Therapeutic landscape for NAFLD in 2020. Gastroenterology. 158 (7), 1984-1998 (2020).
  12. Friedman, S. L., Neuschwander-Tetri, B. A., Rinella, M., Sanyal, A. J. Mechanisms of NAFLD development and therapeutic strategies. Nature Medicine. 24 (7), 908-922 (2018).
  13. Bessone, F., Razori, M. V., Roma, M. G. Molecular pathways of nonalcoholic fatty liver disease development and progression. Cellular and Molecular Life Sciences. 76 (1), 99-128 (2019).
  14. Buzzetti, E., Pinzani, M., Tsochatzis, E. A. The multiple-hit pathogenesis of non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). Metabolism. 65 (8), 1038-1048 (2016).
  15. Watt, M. J., Miotto, P. M., De Nardo, W., Montgomery, M. K. The liver as an endocrine organ-Linking NAFLD and insulin resistance. Endocrine Reviews. 40 (5), 1367-1393 (2019).
  16. Khan, R. S., Bril, F., Cusi, K., Newsome, P. N. Modulation of insulin resistance in nonalcoholic fatty liver disease. Hepatology. 70 (2), 711-724 (2019).
  17. Karkucinska-Wieckowska, A., et al. Mitochondria, oxidative stress and nonalcoholic fatty liver disease: A complex relationship. European Journal of Clinical Investigation. 52 (3), 13622 (2022).
  18. Tilg, H., Adolph, T. E., Dudek, M., Knolle, P. Non-alcoholic fatty liver disease: The interplay between metabolism, microbes and immunity. Nature Metabolism. 3 (12), 1596-1607 (2021).
  19. Qian, H., et al. Autophagy in liver diseases: A review. Molecular Aspects of Medicine. 82, 100973 (2021).
  20. Du, J., Ji, Y., Qiao, L., Liu, Y., Lin, J. Cellular endo-lysosomal dysfunction in the pathogenesis of non-alcoholic fatty liver disease. Liver International. 40 (2), 271-280 (2020).
  21. Allaire, M., Rautou, P. E., Codogno, P., Lotersztajn, S. Autophagy in liver diseases: Time for translation. Journal of Hepatology. 70 (5), 985-998 (2019).
  22. Kanuri, G., Bergheim, I. In vitro and in vivo models of non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). International Journal of Molecular Sciences. 14 (6), 11963-11980 (2013).
  23. Lau, J. K., Zhang, X., Yu, J. Animal models of non-alcoholic fatty liver disease: Current perspectives and recent advances. The Journal of Pathology. 241 (1), 36-44 (2017).
  24. Reimer, K. C., Wree, A., Roderburg, C., Tacke, F. New drugs for NAFLD: Lessons from basic models to the clinic. Hepatology International. 14 (1), 8-23 (2020).
  25. Carpino, G., et al. Increased liver localization of lipopolysaccharides in human and experimental NAFLD. Hepatology. 72 (2), 470-485 (2020).
  26. Vergani, L. Fatty acids and effects on in vitro and in vivo models of liver steatosis. Current Medicinal Chemistry. 26 (19), 3439-3456 (2019).
  27. Scorletti, E., Carr, R. M. A new perspective on NAFLD: Focusing on lipid droplets. Journal of Hepatology. 76 (4), 934-945 (2022).
  28. Green, C. J., Pramfalk, C., Morten, K. J., Hodson, L. From whole body to cellular models of hepatic triglyceride metabolism: Man has got to know his limitations. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 308 (1), 1-20 (2015).
  29. Gambino, R., et al. Different serum free fatty acid profiles in NAFLD subjects and healthy controls after oral fat load. International Journal of Molecular Sciences. 17 (4), 479 (2016).
  30. Marra, F., Svegliati-Baroni, G. Lipotoxicity and the gut-liver axis in NASH pathogenesis. Journal of Hepatology. 68 (2), 280-295 (2018).
  31. Zhang, J., Zhang, H., Deng, X., Zhang, Y., Xu, K. Baicalin protects AML-12 cells from lipotoxicity via the suppression of ER stress and TXNIP/NLRP3 inflammasome activation. Chemico-Biological Interactions. 278, 189-196 (2017).
  32. Liang, Y., et al. γ-Linolenic acid prevents lipid metabolism disorder in palmitic acid-treated alpha mouse liver-12 cells by balancing autophagy and apoptosis via the LKB1-AMPK-mTOR pathway. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 69 (29), 8257-8267 (2021).
  33. Peng, Z., et al. Nobiletin alleviates palmitic acid-induced NLRP3 inflammasome activation in a sirtuin 1dependent manner in AML12 cells. Molecular Medicine Reports. 18 (6), 5815-5822 (2018).
  34. Xu, T., et al. Ferulic acid alleviates lipotoxicity-induced hepatocellular death through the SIRT1-regulated autophagy pathway and independently of AMPK and Akt in AML-12 hepatocytes. Nutrition & Metabolism. 18 (1), 13 (2021).
  35. Aranda, A., et al. Dichloro-dihydro-fluorescein diacetate (DCFH-DA) assay: A quantitative method for oxidative stress assessment of nanoparticle-treated cells. Toxicology in Vitro. 27 (2), 954-963 (2013).
  36. Eruslanov, E., Kusmartsev, S. Identification of ROS using oxidized DCFDA and flow-cytometry. Methods in Molecular Biology. 594, 57-72 (2010).
  37. Bankhead, P. . Analyzing Fluorescence Microscopy Images with ImageJ. , (2014).
  38. Wiesmann, V., et al. Review of free software tools for image analysis of fluorescence cell micrographs. Journal of Microscopy. 257 (1), 39-53 (2015).
  39. Lugli, E., Troiano, L., Cossarizza, A. Polychromatic analysis of mitochondrial membrane potential using JC-1. Current Protocols in Cytometry. , (2007).
  40. Sivandzade, F., Bhalerao, A., Cucullo, L. Analysis of the mitochondrial membrane potential using the cationic JC-1 dye as a sensitive fluorescent probe. Bio-protocol. 9 (1), 3128 (2019).
  41. Chazotte, B. Labeling mitochondria with JC-1. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (9), (2011).
  42. Walker, J. M. The bicinchoninic acid (BCA) assay for protein quantitation. The Protein Protocols Handbook. , 11-15 (2009).
  43. Goldman, A., Ursitti, J. A., Mozdzanowski, J., Speicher, D. W. Electroblotting from polyacrylamide gels. Current Protocols in Protein Science. 82, 1-16 (2015).
  44. Mozdzanowski, J., Speicher, D. W. Proteins from polyacrylamide gels onto PVDF membranes. Current Research in Protein Chemistry. , 87 (2012).
  45. Taylor, S. C., Posch, A. The design of a quantitative western blot experiment. Biomed Research International. 2014, 361590 (2014).
  46. Motulsky, H. J. Graphpad Statistics Guide. Options for multiple t tests. Graphpad. , (2020).
  47. Poltorak, A. Cell death: All roads lead to mitochondria. Current Biology. 32 (16), 891-894 (2022).
  48. Dadsena, S., Jenner, A., García-Sáez, A. J. Mitochondrial outer membrane permeabilization at the single molecule level. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (8), 3777-3790 (2021).
  49. Green, D. R., Kroemer, G. The pathophysiology of mitochondrial cell death. Science. 305 (5684), 626-629 (2004).
  50. Lange, N. F., Radu, P., Dufour, J. F. Prevention of NAFLD-associated HCC: Role of lifestyle and chemoprevention. Journal of Hepatology. 75 (5), 1217-1227 (2021).
  51. Liu, X., Zhang, Y., Ma, C., Lin, J., Du, J. Alternate-day fasting alleviates high fat diet induced non-alcoholic fatty liver disease through controlling PPARalpha/Fgf21 signaling. Molecular Biology Reports. 49 (4), 3113-3122 (2022).
  52. Romero-Gomez, M., Zelber-Sagi, S., Trenell, M. Treatment of NAFLD with diet, physical activity and exercise. Journal of Hepatology. 67 (4), 829-846 (2017).
  53. Mizushima, N., Levine, B. Autophagy in human diseases. New England Journal of Medicine. 383 (16), 1564-1576 (2020).
  54. Cui, B., Yu, J. M. Autophagy: A new pathway for traditional Chinese medicine. Journal of Asian Natural Products Research. 20 (1), 14-26 (2018).
  55. Law, B. Y., et al. New potential pharmacological functions of Chinese herbal medicines via regulation of autophagy. Molecules. 21 (3), 359 (2016).
  56. Zhou, H., et al. Research progress in use of traditional Chinese medicine monomer for treatment of non-alcoholic fatty liver disease. European Journal of Pharmacology. 898, 173976 (2021).
  57. Zhang, L., Yao, Z., Ji, G. Herbal extracts and natural products in alleviating non-alcoholic fatty liver disease via activating autophagy. Frontiers in Pharmacology. 9, 1459 (2018).
  58. Zhang, X., et al. C-X-C motif chemokine 10 impairs autophagy and autolysosome formation in non-alcoholic steatohepatitis. Theranostics. 7 (11), 2822-2836 (2017).
  59. Li, C. X., et al. Allyl isothiocyanate ameliorates lipid accumulation and inflammation in nonalcoholic fatty liver disease via the Sirt1/AMPK and NF-kappaB signaling pathways. World Journal of Gastroenterology. 25 (34), 5120-5133 (2019).
  60. Li, S., et al. Sirtuin 3 acts as a negative regulator of autophagy dictating hepatocyte susceptibility to lipotoxicity. Hepatology. 66 (3), 936-952 (2017).
  61. Farrell, G. C., Teoh, N. C., McCuskey, R. S. Hepatic microcirculation in fatty liver disease. The Anatomical Record. 291 (6), 684-692 (2008).
  62. Milner, E., et al. Emerging three-dimensional hepatic models in relation to traditional two-dimensional in vitro assays for evaluating drug metabolism and hepatoxicity. Medicine in Drug Discovery. 8, 100060 (2020).
  63. Zhang, X., Jiang, T., Chen, D., Wang, Q., Zhang, L. W. Three-dimensional liver models: State of the art and their application for hepatotoxicity evaluation. Critical Reviews in Toxicology. 50 (4), 279-309 (2020).
  64. Bilson, J., Sethi, J. K., Byrne, C. D. Non-alcoholic fatty liver disease: A multi-system disease influenced by ageing and sex, and affected by adipose tissue and intestinal function. Proceedings of the Nutrition Society. 81 (2), 146-161 (2022).
check_url/64816?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wen, X., Wang, J., Fan, J., Chu, R., Chen, Y., Xing, Y., Li, N., Wang, G. Investigating the Protective Effects of Platycodin D on Non-Alcoholic Fatty Liver Disease in a Palmitic Acid-Induced In Vitro Model. J. Vis. Exp. (190), e64816, doi:10.3791/64816 (2022).

View Video