Summary

फेरिक क्लोराइड-प्रेरित धमनी घनास्त्रता और 3 डी इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी विश्लेषण के लिए नमूना संग्रह

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

वर्तमान प्रोटोकॉल बताता है कि धमनी घनास्त्रता को प्रेरित करने के लिए एफईसीएल3-मध्यस्थता चोट का उपयोग कैसे करें, और इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी विश्लेषण के लिए घनास्त्रता के विभिन्न चरणों में धमनी चोट के नमूने कैसे एकत्र करें और तैयार करें।

Abstract

कार्डियोवैस्कुलर बीमारियां दुनिया भर में मृत्यु दर और रुग्णता का एक प्रमुख कारण हैं। असामान्य घनास्त्रता मधुमेह और मोटापे जैसी प्रणालीगत स्थितियों और एथेरोस्क्लेरोसिस, कैंसर और ऑटोइम्यून बीमारियों जैसी पुरानी सूजन संबंधी बीमारियों की एक सामान्य विशेषता है। संवहनी चोट पर, आमतौर पर जमावट प्रणाली, प्लेटलेट्स और एंडोथेलियम चोट की जगह पर थक्का बनाकर रक्तस्राव को रोकने के लिए एक व्यवस्थित तरीके से कार्य करते हैं। इस प्रक्रिया में असामान्यताएं या तो अत्यधिक रक्तस्राव या अनियंत्रित घनास्त्रता / अपर्याप्त एंटीथ्रॉम्बोटिक गतिविधि का कारण बनती हैं, जो पोत रोड़ा और इसकी अगली कड़ी में बदल जाती है। FeCl3-प्रेरित कैरोटिड चोट मॉडल यह जांचने में एक मूल्यवान उपकरण है कि विवो में घनास्त्रता कैसे शुरू होती है और प्रगति करती है। इस मॉडल में घायल स्थल पर एंडोथेलियल क्षति / विनाश और बाद में थक्का गठन शामिल है। यह संवहनी क्षति के विभिन्न डिग्री के जवाब में संवहनी क्षति और थक्के के गठन की निगरानी के लिए एक अत्यधिक संवेदनशील, मात्रात्मक परख प्रदान करता है। एक बार अनुकूलित होने के बाद, इस मानक तकनीक का उपयोग थ्रोम्बोसिस के अंतर्निहित आणविक तंत्र का अध्ययन करने के लिए किया जा सकता है, साथ ही साथ बढ़ते थ्रोम्बस में प्लेटलेट्स में अल्ट्रास्ट्रक्चरल परिवर्तन भी होते हैं। यह परख एंटीथ्रोम्बोटिक और एंटीप्लेटलेट एजेंटों की प्रभावकारिता का अध्ययन करने के लिए भी उपयोगी है। यह लेख बताता है कि FeCl3-प्रेरित धमनी घनास्त्रता को कैसे शुरू और मॉनिटर किया जाए और इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी द्वारा विश्लेषण के लिए नमूने कैसे एकत्र किए जाएं।

Introduction

थ्रोम्बोसिस एक रक्त के थक्के का गठन है जो आंशिक रूप से या पूरी तरह से रक्त वाहिका को अवरुद्ध करता है, रक्त के प्राकृतिक प्रवाह को बाधित करता है। यह गंभीर और घातक कार्डियोवैस्कुलर घटनाओं की ओर जाता है, जैसे कि इस्केमिक हृदय रोग और स्ट्रोक। कार्डियोवैस्कुलर बीमारियां रुग्णता और मृत्यु दर का प्रमुख कारण हैं, और दुनिया भर में चार मौतों में से एक का कारणबनती हैं। यद्यपि घनास्त्रता संवहनी प्रणाली की खराबी के रूप में प्रकट होती है, यह एक अंतर्निहित माइक्रोबियल या वायरल संक्रमण, प्रतिरक्षा विकार, घातकता या चयापचय स्थिति का परिणाम हो सकता है। एंडोथेलियल कोशिकाओं, लाल / सफेद रक्त कोशिकाओं, प्लेटलेट्स और जमावट कारकों सहित संवहनी प्रणाली के विभिन्न घटकों के बीच जटिल बातचीत द्वारा रक्त का प्रवाह बनाए रखाजाता है। संवहनी चोट पर, प्लेटलेट्स सबेंडोथेलियल मैट्रिक्स पर चिपकने वाले प्रोटीन के साथ बातचीत करते हैं और उनकी दानेदार सामग्री जारी करते हैं, जो अधिक प्लेटलेट्सकी भर्ती करते हैं। समवर्ती रूप से, जमावट कैस्केड सक्रिय होता है, जिससे फाइब्रिन का गठन और जमाव होता है। अंततः, एक थक्का बनता है, जिसमें प्लेटलेट्स और लाल रक्त कोशिकाएं होती हैं जो एक फाइब्रिन जाल 6 के भीतर फंसजाती हैं। यद्यपि एंटीप्लेटलेट और एंटीकोआगुलेंट दवाएं घनास्त्रता को संशोधित करने के लिए उपलब्ध हैं, नकली रक्तस्राव इन उपचारों के साथ एक प्रमुख चिंता का विषय बना हुआ है, जिसके लिए इन दवाओं की खुराक और संयोजन को ठीक करने की आवश्यकता होती है। इस प्रकार, अभी भी नई एंटी-थ्रोम्बोटिक दवाओं की खोज करने की तत्काल आवश्यकताहै

संवहनी चोट पहुंचाने के लिए कई तरीकों का उपयोग करके थ्रोम्बोसिस का अध्ययन किया जाता है: यांत्रिक (पोत बंधाव), थर्मल (लेजर चोट), और रासायनिक चोट (FeCl3 / Rose Bengal अनुप्रयोग)। घनास्त्रता की प्रकृति स्थान (धमनी बनाम शिरापरक), विधि, या चोट की सीमा के आधार पर भिन्न होती है। इन सभी प्रकारों में, FeCl3-प्रेरित संवहनी चोट सबसे व्यापक रूप से उपयोग की जाने वाली विधि है। यह चूहों, चूहों, खरगोशों, गिनी सूअरों और कुत्तों 8,9,10,11,12 में नियोजित किया गया है। विधि अपेक्षाकृत सरल है, उपयोग करने में आसान है, और यदि प्रमुख मापदंडों को मानकीकृत किया जाता है, तो यह विभिन्न संवहनी प्रणालियों (जैसे, धमनियों [कैरोटिड और ऊरु], नसों [जुगुलर], और धमनी [क्रेमास्टर और मेसेंटेरिक]) में संवेदनशील और प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य है (पूरक तालिका 1)।

इस मॉडल का उपयोग थक्का गठन के यांत्रिकी और आकृति विज्ञान की हमारी समझ को आगे बढ़ाने के लिए भी किया जा सकता है। यह तकनीक विशिष्ट रूप से विभिन्न प्रवाह दर बिंदुओं पर घनास्त्रता को रोकने का लाभ प्रदान करती है, ताकि प्रक्रिया के मध्यवर्ती चरणों का अध्ययन किया जा सके। थ्रोम्बोसिस अनुसंधान में हालिया प्रगति ने इस मॉडल का उपयोग थ्रोम्बोलिसिस13 के गैर-औषधीय तरीकों या एंटी-थ्रोम्बोटिक और / या फाइब्रिनोलिटिकएजेंटों के गैर-इनवेसिव वितरण पर ध्यान केंद्रित करने के लिए किया है। कई समूहों ने दिखाया है कि, जब प्लेटलेट झिल्ली को इन चिकित्सीय के साथ लेपित किया जाता है, तो थक्कों को लक्षित करने के लिए थर्मल उत्तेजना पर दवाओं को सक्रियकिया जा सकता है। यहां वर्णित तकनीकें एकल प्लेटलेट स्तर पर उनके निष्कर्षों के सत्यापन के रूप में ऐसे अध्ययनों के लिए उपयोगी हो सकती हैं। इस पांडुलिपि में, प्रोटोकॉल 1 मूल FeCl3-मध्यस्थता संवहनी चोट प्रक्रिया का वर्णन करता है, जबकि प्रोटोकॉल 2 इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी द्वारा आगे के विश्लेषण के लिए संवहनी चोट के नमूने को एकत्र करने और ठीक करने की विधि का वर्णन करता है।

Protocol

यहां चर्चा किए गए सभी प्रयोगों की समीक्षा की गई और केंटकी विश्वविद्यालय में संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति (आईएसीयूसी) द्वारा अनुमोदित किया गया। नोट: सर्जिकल उपकरण चित्रा 1 औ?…

Representative Results

डेटा को आम तौर पर रोड़ा के समय के रूप में प्रस्तुत किया जाता है, या पूरी तरह से ऑक्लुसिव थ्रोम्बस बनाने के लिए आवश्यक समय होता है। इन आंकड़ों को कपलान-मीयर उत्तरजीविता वक्र (चित्रा 4 ए) 19</…

Discussion

थ्रोम्बोसिस को प्रेरित करने के लिए वास्कुलचर के लिए FeCl3 का सामयिक अनुप्रयोग एक व्यापक रूप से उपयोग की जाने वाली तकनीक है, और विभिन्न प्लेटलेट रिसेप्टर्स, लिगैंड सिग्नलिंग मार्गों और उनके <s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखक इस पांडुलिपि के सावधानीपूर्वक अवलोकन के लिए व्हाइटहार्ट प्रयोगशाला के सदस्यों को धन्यवाद देते हैं। इस काम को एनआईएच, एनएचएलबीआई (एचएल 56652, एचएल 138179, और एचएल 150818) से अनुदान और एसडब्ल्यूडब्ल्यू को वेटरन्स अफेयर्स मेरिट अवार्ड विभाग, बी.एस. को आर01 एचएल 155519, और आर.डी.एल. को एनआईबीआईबी इंट्राम्यूरल प्रोग्राम अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

0.9% Saline  Fisher Scientific  BP358-212 NaCl used to make a solution of 0.9% saline 
1 mL Syringe  Becton, Dickinson and Company  309659
190 Proof Ethanol  KOPTEC V1101  Used to make a 70% ethanol solution to use for prepping the mouse for surgery 
2,2,2 Tribromoethanol Sigma Aldrich 48402
25 Yard Black Braided Silk Suture (5-0) DEKNATEL 136082-1204
26G x 3/8 Needle  Becton, Dickinson and Company  305110
2-methyl-2-butanol Sigma Aldrich 240486
7.5 mL Transfer Pipet, Graduated to 3 mL Globe Scientific Inc. 135010
Alcohol Prep Pads (70% Isopropyl Alcohol) Medline MDS090735
Araldite GY 502  Electron microscopy Services  10900
Cell Culture Dish 35mm X 10mm  Corning Incorporated  430165
Compact Scale  Ward's Science  470314-390
Dissecting Scissors, 12.5 cm long World Precision Instrument 15922-G
DMP-30 activator  Electron microscopy Services  13600
Dodenyl Succinic Anhydride/ DDSA Electron microscopy Services  13700
Doggy Poo Bags/animal carcass disposal bag Crown Products  PP-RB-200
Doppler FlowProbe Transonic Systems Inc. MA0.5PSB
EMBED 812 resin  Electron microscopy Services  14900
Ethyl Alcohol, anhydrous 200 proof  Electron microscopy Services  15055
Eye Dressing Forceps, 4" Full Curved, Standard, 0.8mm Wide Tips Integra Miltex 18-784
Filter Paper  VWR 28310-106
Fine Scissors – Sharp-Blunt Fine Science Tools  14028-10
Finger Loop Ear Punches  Fine Science Tools  24212-01
Gauze Sponges 2” x 2” – 12 Ply  Dukal Corporation 2128
Glutaraldehyde (10% solution) Electron microscopy Services  16120
Integra Miltex Carbon Steel Surgical Blade #10 Integra® Miltex® 4110
Iron (III) Chloride  SIGMA-ALDRICH 157740-100G
Knife Handle Miltex® Extra Fine Stainless Steel Size 3 Integra Lifesciences  157510
L-aspartic acid Sigma Fisher  A93100
L-aspartic acid Fisher Scientific  BP374-100
Lead Nitrate  Fisher Scientific  L-62
LEICA S8AP0 Microscope LEICA No longer available No longer available from the company
LEICA S8AP0 Microscope Stand  LEICA 10447255 No longer available from the company
Light-Duty Tissue Wipers  VWR 82003-822
Micro Dissecting Forceps; 1×2 Teeth, Full Curve; 0.8 mm Tip Width; 4" Length Roboz Surgical Instrument Company RS-5157
Osmium Tetroxide 4% aqueous solution  Electron microscopy Services  19150
Paraformaldehyde (16% solution) Electron microscopy Services  15710
Potassium ferricyanide SIGMA-ALDRICH P-8131
Propylene Oxide, ACS reagent  Electron microscopy Services  20401
Rainin Classic Pipette PR-10 Rainin 17008649
Research Flowmeter  Transonic Systems Inc. T402B01481 Model: T402
Scotch Magic Invisible Tape, 3/4" x 1000", Clear Scotch  305289
Small Animal Heated Pad K&H Manufacturing Inc. Model: HM10
Sodium Cacodylate Buffer 0.2M, pH7.4 Electron microscopy Services  11623
Sterile Cotton Tipped Applicators  Puritan Medical Products  25-806 1WC
Steromaster Illuminator  Fisher Scientific  12-562-21 No longer available from the company
Surgical Dumont #7 Forceps  Fine Science Tools  11271-30
Thiocarbohydrazide (TCH) SIGMA-ALDRICH 88535
Universal Low Retention Pipet Tip Reloads (0.1-10 µL) VWR 76323-394
Uranyl Acetate Electron microscopy Services  22400
Veet Gel Cream Hair Remover Reckitt Benckiser 3116875
White Antistatic Hexagonal Weigh Boats, Medium, 64 x 15 x 19 mm Fisher Scientific  S38975
WinDAQ/100 Software for Windows DATAQ Instruments, Inc. Version 3.38 Freely available to download. https://www.dataq.com/products/windaq/
ZEISS AxioCam Icc 1 ZEISS 57615

References

  1. Lozano, R., et al. Global and regional mortality from 235 causes of death for 20 age groups in 1990 and 2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 380 (9859), 2095-2128 (2012).
  2. Raskob, G. E., et al. Thrombosis: a major contributor to global disease burden. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (11), 2363-2371 (2014).
  3. Walton, J. Lead aspartate, an en bloc contrast stain particularly useful for ultrastructural enzymology. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 27 (10), 1337-1342 (1979).
  4. Palta, S., Saroa, R., Palta, A. Overview of the coagulation system. Indian Journal of Anaesthesia. 58 (5), 515-523 (2014).
  5. Joshi, S., Whiteheart, S. W. The nuts and bolts of the platelet release reaction. Platelets. 28 (2), 129-137 (2017).
  6. Periayah, M. H., Halim, A. S., Mat Saad, A. Z. Mechanism action of platelets and crucial blood coagulation pathways in hemostasis. International Journal of Hematology-Oncology and Stem Cell Research. 11 (4), 319-327 (2017).
  7. Alexopoulos, D., Katogiannis, K., Sfantou, D., Lekakis, J. Combination antiplatelet treatment in coronary artery disease patients: A necessary evil or an overzealous practice. Platelets. 29 (3), 228-237 (2018).
  8. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thrombosis Research. 60 (4), 269-280 (1990).
  9. Denis, C. V., et al. Towards standardization of in vivo thrombosis studies in mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 9 (8), 1641-1644 (2011).
  10. Marsh Lyle, E., et al. Assessment of thrombin inhibitor efficacy in a novel rabbit model of simultaneous arterial and venous thrombosis. Thrombosis and Haemostasis. 79 (3), 656-662 (1998).
  11. Kato, Y., et al. Inhibition of arterial thrombosis by a protease-activated receptor 1 antagonist, FR171113, in the guinea pig. European Journal of Pharmacology. 473 (2-3), 163-169 (2003).
  12. Huttinger, A. L., et al. Ferric chloride-induced canine carotid artery thrombosis: a large animal model of vascular injury. Journal of Visualized Experiments. (139), e57981 (2018).
  13. Zhang, W., et al. Antithrombotic therapy by regulating the ROS-mediated thrombosis microenvironment and specific nonpharmaceutical thrombolysis Using Prussian blue nanodroplets. Small. 18 (15), 2106252 (2022).
  14. Liu, B., et al. Platelet membrane cloaked nanotubes to accelerate thrombolysis by thrombus clot-targeting and penetration. Small. , 2205260 (2022).
  15. Refaat, A., et al. Near-infrared light-responsive liposomes for protein delivery: Towards bleeding-free photothermally-assisted thrombolysis. Journal of Controlled Release. 337, 212-223 (2021).
  16. Li, S., et al. Biomimetic nanoplatelets to target delivery hirudin for site-specific photothermal/photodynamic thrombolysis and preventing venous thrombus formation. Small. 18 (51), 2203184 (2022).
  17. Subramaniam, S., Kanse, S. M. Ferric chloride-induced arterial thrombosis in mice. Current Protocols in Mouse Biology. 4 (4), 151-164 (2014).
  18. Cocchiaro, J. L., Kumar, Y., Fischer, E. R., Hackstadt, T., Valdivia, R. H. Cytoplasmic lipid droplets are translocated into the lumen of the Chlamydia trachomatis parasitophorous vacuole. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105 (27), 9379-9384 (2008).
  19. Kaplan, E. L., Meier, P. Nonparametric-estimation from incomplete observations. Journal of the American Statistical Association. 53 (282), 457-481 (1958).
  20. Chauhan, A. K., Kisucka, J., Lamb, C. B., Bergmeier, W., Wagner, D. D. von Willebrand factor and factor VIII are independently required to form stable occlusive thrombi in injured veins. Blood. 109 (6), 2424-2429 (2007).
  21. Andre, P., et al. CD40L stabilizes arterial thrombi by a beta3 integrin–dependent mechanism. Nature Medicine. 8 (3), 247-252 (2002).
  22. Ni, H., et al. Persistence of platelet thrombus formation in arterioles of mice lacking both von Willebrand factor and fibrinogen. Journal of Clinical Investigation. 106 (3), 385-392 (2000).
  23. Bergmeier, W., et al. The role of platelet adhesion receptor GPIbalpha far exceeds that of its main ligand, von Willebrand factor, in arterial thrombosis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 103 (45), 16900-16905 (2006).
  24. Ciciliano, J. C., et al. Resolving the multifaceted mechanisms of the ferric chloride thrombosis model using an interdisciplinary microfluidic approach. Blood. 126 (6), 817-824 (2015).
  25. Eckly, A., et al. Mechanisms underlying FeCl3-induced arterial thrombosis. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 9 (4), 779-789 (2011).
  26. Woollard, K. J., Sturgeon, S., Chin-Dusting, J. P. F., Salem, H. H., Jackson, S. P. Erythrocyte hemolysis and hemoglobin oxidation promote ferric chloride-induced vascular injury. Journal of Biological Chemistry. 284 (19), 13110-13118 (2009).
  27. Shim, Y., et al. Characterization of ferric chloride-induced arterial thrombosis model of mice and the role of red blood cells in thrombosis acceleration. Yonsei Medical Journal. 62 (11), 1032-1041 (2021).
  28. Ghosh, S., et al. Evaluation of the prothrombotic potential of four-factor prothrombin complex concentrate (4F-PCC) in animal models. PLoS One. 16 (10), 0258192 (2021).
  29. Wilbs, J., et al. Cyclic peptide FXII inhibitor provides safe anticoagulation in a thrombosis model and in artificial lungs. Nature Communications. 11 (1), 3890 (2020).
  30. Wei, Y., Deng, X., Sheng, G., Guo, X. B. A rabbit model of cerebral venous sinus thrombosis established by ferric chloride and thrombin injection. Neuroscience Letters. 662, 205-212 (2018).
  31. Jacob-Ferreira, A. L., et al. Antithrombotic activity of Batroxase, a metalloprotease from Bothrops atrox venom, in a model of venous thrombosis. International Journal of Biological Macromolecules. 95, 263-267 (2017).
  32. Zhou, X., et al. A rabbit model of cerebral microembolic signals for translational research: preclinical validation for aspirin and clopidogrel. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 14 (9), 1855-1866 (2016).
  33. Yang, X., et al. Effect of evodiamine on collagen-induced platelet activation and thrombosis. BioMed Research International. 2022, 4893859 (2022).
  34. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biology. 1 (1), 50-55 (2013).
  35. Li, W., Nieman, M., Sen Gupta, A. Ferric chloride-induced murine thrombosis models. Journal of Visualized Experiments. (115), e54479 (2016).
  36. Holly, S. P., et al. Ether lipid metabolism by AADACL1 regulates platelet function and thrombosis. Blood Advances. 3 (22), 3818-3828 (2019).
  37. Bird, J. E., et al. Prediction of the therapeutic index of marketed anti-coagulants and anti-platelet agents by guinea pig models of thrombosis and hemostasis. Thrombosis Research. 123 (1), 146-158 (2008).
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Joshi, S., Smith, A. N., Prakhya, K. S., Alfar, H. R., Lykins, J., Zhang, M., Pokrovskaya, I., Aronova, M., Leapman, R. D., Storrie, B., Whiteheart, S. W. Ferric Chloride-Induced Arterial Thrombosis and Sample Collection for 3D Electron Microscopy Analysis. J. Vis. Exp. (193), e64985, doi:10.3791/64985 (2023).

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