Summary

ヒト異種異系フリーのヒト治療法によるヒト脂肪由来幹細胞の単離と培養

Published: February 03, 2023
doi:

Summary

細胞療法の準備/操作ステップで導入された異種(化学的または動物由来)製品は、宿主患者における免疫反応性および病原性伝播のリスクの増加と関連しています。ここでは、ヒト脂肪由来幹細胞の単離および in vitro 増殖のための完全な異種異系フリーの方法が記載されている。

Abstract

幹細胞治療の影響の増大を考慮して、 in vitro 操作中の動物由来製品の導入による潜在的な汚染または感染伝播に関してバイオセーフティの懸念が提起されています。細胞の単離および増殖ステップで一般的に使用されるコラゲナーゼやウシ胎児血清などの異種成分は、投与を受けた患者の免疫反応性またはウイルス、細菌、プリオン感染の潜在的なリスクに関連している可能性があります。適正製造基準のガイドラインに従って、化学的組織の解離は避ける必要がありますが、ウシ胎児血清(FBS)は異種を含まないサプリメントに置き換えることができます。さらに、細胞製品の安全性を確保するためには、より信頼性が高く再現性のある方法の定義が重要です。私たちは、コラゲナーゼFBS培養標準プロトコルと比較して、その特性を変えることなく、ヒト脂肪由来幹細胞の単離と in vitro 増殖のための革新的で完全に異種異系を含まない方法を開発しました。ここでは、腹部脂肪組織からヒト脂肪由来幹細胞(hASC)を単離した。サンプルはハサミ/メスで機械的にミンチし、マイクロ解剖して10 cmのペトリ皿に機械的に分散させ、組織片の付着とhASCの移動を容易にするためにメスの切開で調製しました。洗浄ステップに続いて、酵素消化なしでプラスチックが付着するため、hASCが選択されました。単離したhASCを、5%ヘパリンフリーヒト血小板溶解物を添加した培地で培養し、動物を含まないトリプシン代替物で剥離しました。ヒト治療を目的とした細胞製品の製造に関する適正製造基準(GMP)の指示に従って、どの培地にも抗生物質は使用されていません。

Introduction

過去数十年で、革新的な治療法に対する需要の高まりにより、トランスレーショナルメディシン分野への多大な努力とリソース投資が発生しました1。細胞ベースの製品は、細胞源、製造プロセス(分離、増殖、または遺伝子組み換え)、および非細胞サプリメント(酵素、成長因子、培養サプリメント、および抗生物質)によって決定されるリスクと関連しており、これらの危険因子は特定の治療適応症に依存します。最終製品の品質、安全性、および有効性は、上記の要素2によって深く影響を受ける可能性があります。幹細胞治療は、バイオセーフティの原則を順守する必要があります。細胞培養における動物由来製品による病原性感染の潜在的なリスクは問題となる可能性があり、製造に導入された製品の徹底的なテストが不可欠です3

ヒト脂肪由来幹細胞(hASC)を単離する従来の方法では、コラゲナーゼを用いた酵素消化とそれに続く遠心分離による洗浄ステップが行われます4。酵素による単離は、一般に、細胞収量と生存率の点で他の機械的技術よりも効率的であると考えられていますが、コラゲナーゼなど、使用される動物由来の成分は、米国食品医薬品局によって最小限に操作されていると考えられています。これは、免疫反応または疾患伝播のリスクが大幅に増加することを意味し、したがって、hASC療法の臨床現場への翻訳を制限します5,6

トリプシンベースの消化は、ASCを単離するための別の酵素プロトコルです。トリプシン濃度、遠心分離速度、およびインキュベーション時間の点でわずかな変更を加えたさまざまな技術が説明されています。残念なことに、この方法は十分に説明されておらず、文献、特に機械的絶縁プロトコル7との比較の欠如が存在する。しかしながら、アプローチの翻訳可能性に関して、トリプシンはコラゲナーゼと同じ欠点を有する。

機械的な力に基づいて酵素を添加しないASCを得るための代替単離方法には、脂肪組織断片の高速遠心分離(800 x gまたは1,280 x g、15分)が含まれます。次いで、ペレットを赤血球溶解緩衝液(5分間)と共にインキュベートし、続いて培養培地に再懸濁する前に600 x gで別の遠心分離工程を行う。外植片法と比較して最初の数日間に単離された細胞の数が多いにもかかわらず、以前の研究では、培養2週目以降の増殖が少ないか、または存在しないことが示されました8

それに加えて、細胞培養のための成長因子サプリメントとして使用されるウシ胎児血清(FBS)などの異種添加培地によるさらなる操作は、免疫反応性のリスクおよび宿主患者のウイルス、細菌、またはプリオン感染への曝露の増加と関連している9,10。免疫反応および蕁麻疹様発疹の発生は、FBS11で産生された間葉系幹細胞を数回投与された個体において既に説明されている。さらに、FBSはバッチ間のばらつきを受け、最終製品の品質に影響を与える可能性があります12

適正製造基準(GMP)ガイドラインに従って、酵素組織の解離を回避し、FBSを異種を含まないサプリメントに置き換える必要があります。これらのステップは、より信頼性が高く再現性のあるプロトコルとともに、細胞療法の適用をサポートするために不可欠です313

これに関連して、ヒト血小板ライセート(hPL)は、無細胞、タンパク質含有、成長因子が豊富なサプリメントであり、in vitro細胞培養および増殖のための増殖培地の添加剤として臨床グレードの細胞ベースの製品の間で以前に導入されたため、FBSの代替として提案されています14,15。hPLはヒト由来の産物であるため、臨床応用を目的としたhASCのin vitro培養中にFBSの代替として頻繁に使用され、FBSの翻訳可能性に関連する免疫反応や感染症に関する問題を軽減します15,16

より高い生産コストにもかかわらず、FBSと比較して、hPLは多くの細胞タイプの細胞生存率をサポートし、増殖を増加させ、老化を遅らせ、ゲノム安定性を保証し、後期細胞継代でも細胞免疫表現型を保存することがすでに実証されています。これらすべての要素は、この文化サプリメント11への切り替えをサポートします。

この研究の目的は、従来のFBS培養hASCと比較して、細胞生理学とステムネスの特性を変更することなく、完全な動物を含まない方法でhASCを分離および培養するための標準化されたプロトコルを開発することでした(図1)。

Protocol

hASCは、スイス、ローザンヌ、CHUVのローザンヌ大学病院で腹部自家皮弁(深部下上腹部穿孔フラップ、[DIEP])を使用して乳房再建術を受けた健康な女性の腹部脂肪組織から分離されました。フラップと脂肪組織の廃棄部分は、患者がインフォームドコンセントに署名した後に取得されました。すべてのプロトコルは、ヘルシンキ宣言に従って、病院のバイオバンク部門DAL(番号314 GGC)および倫理委…

Representative Results

上記の単離方法を適用すると、コラゲナーゼを使用せずに腹部脂肪組織サンプルからhASCが首尾よく得られました。さらに、hASCは、hPLの存在下で、動物由来の他の成分を含まない完全な異種異系フリー条件で増殖した。以下の結果は、プロトコルを支持し、hPLと並行して培養し、FBSを対照条件として培養したhASCから得られたものです。 最初のクラスター出現後、hASCは古?…

Discussion

脂肪由来幹細胞は、その豊富さ、迅速で手頃な価格の単離方法、高いin vitro/in vivo増殖率、および幹細胞性/分化特性により、過去10年間でトランスレーショナル研究の関心を集めてきました18,19,20。その結果、hASCは再生医療における細胞ベースの戦略の優れた候補と考えられています21。脂肪…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者には謝辞がありません。

Materials

15 mL tubes euroclone et5015b
anti-CD105 BD Biosciences BD560839
anti-CD34 BD Biosciences BD555821
anti-CD45 BD Biosciences BD555482
anti-CD73 BD Biosciences BD561254
autoMACS Rinsing Solution (FACS buffer) Miltenyi 130-091-222
BD Accuri C6 apparatus (flow cytometry instrument) BD accuri
Burker chamber Blaubrand 717810
Cell freezing container corning CLS432002
CellTiter 96 AQueous One Solution Cell Proliferation Assay Promega G3582
CoolCell Freezing container Corning CLS432002
Cryovials clearline 390701
Dimethyl sulfide Sigma Aldrich D2650-100mL
disposabile blade scalpel paragon bs 2982
Dulbecco's Modified Eagle's Medium – high glucose GIBCO 11965092
Human Platelet Lysate FD (GMP grade) Stemulate PL-NH-500
Infinite F50 spectrophotometer Tecan
Optical microscope with 4x and 10x magnification objectives Olympus CKX41
Petri dish 10 cm Greiner bio-one 664160
Sterile scalpels Reda 07104-00
Sterile scissors Bochem 4071
Sterile tweezers Bochem 1152
Swinging bucket centrifuge Sigma 3-16K
T25 flasks Greiner bio-one 6910170
TrypLe (animal free trypsin substitute) GIBCO 12604-013

References

  1. Naderi, N., et al. The regenerative role of adipose-derived stem cells (ADSC) in plastic and reconstructive surgery. International Wound Journal. 14 (1), 112-124 (2017).
  2. Guiotto, M., Riehle, M. O., Raffoul, W., Hart, A., di Summa, P. G. Is human platelet lysate (hPL) the ideal candidate to substitute the foetal bovine serum for cell-therapy translational research. Journal of Translational Medicine. 19 (1), 426 (2021).
  3. Condé-Green, A., et al. Shift toward mechanical isolation of adipose-derived stromal vascular fraction: Review of upcoming techniques. Plastic and Reconstructive Surgery. Global Open. 4 (9), 1017 (2016).
  4. Zuk, P. A., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: Implications for cell-based therapies. Tissue Engineering. 7 (2), 211-228 (2001).
  5. Chang, H., et al. Safety of adipose-derived stem cells and collagenase in fat tissue preparation. Aesthetic Plastic Surgery. 37 (4), 802-808 (2013).
  6. Spees, J. L., et al. Internalized antigens must be removed to prepare hypoimmunogenic mesenchymal stem cells for cell and gene therapy. Molecular Therapy. 9 (5), 747-756 (2004).
  7. Fadel, L., et al. Protocols for obtainment and isolation of two mesenchymal stem cell sources in sheep. Acta Cirurgica Brasileria. 26 (4), 267-273 (2011).
  8. Markarian, C. F., et al. Isolation of adipose-derived stem cells: A comparison among different methods. Biotechnology Letters. 36 (4), 693-702 (2014).
  9. Sherman, L. S., Condé-Green, A., Naaldijk, Y., Lee, E. S., Rameshwar, P. An enzyme-free method for isolation and expansion of human adipose-derived mesenchymal stem cells. Journal of Visualized Experiments. (154), e59419 (2019).
  10. Lalu, M. M., et al. Safety of cell therapy with mesenchymal stromal cells (SafeCell): A systematic review and meta-analysis of clinical trials. PLoS One. 7 (10), 47559 (2012).
  11. Escobar, C. H., Chaparro, O. Xeno-free extraction, culture, and cryopreservation of human adipose-derived mesenchymal stem cells. Stem Cells Translational Medicine. 5 (3), 358-365 (2016).
  12. Vaidya, V., et al. Ultraviolet-C irradiation for inactivation of viruses in foetal bovine serum. Vaccine. 36 (29), 4215-4221 (2018).
  13. Kyllönen, L., et al. Effects of different serum conditions on osteogenic differentiation of human adipose stem cells in vitro. Stem Cell Research & Therapy. 4 (1), 17 (2013).
  14. Schallmoser, K., Henschler, R., Gabriel, C., Koh, M. B. C., Burnouf, T. Production and quality requirements of human platelet lysate: A position statement from the Working Party on Cellular Therapies of the International Society of Blood Transfusion. Trends in Biotechnology. 38 (1), 13-23 (2020).
  15. Guiotto, M., Raffoul, W., Hart, A. M., Riehle, M. O., di Summa, P. G. Human platelet lysate to substitute fetal bovine serum in hMSC expansion for translational applications: A systematic review. Journal of Translational Medicine. 18 (1), 351 (2020).
  16. Guiotto, M., Raffoul, W., Hart, A. M., Riehle, M. O., di Summa, P. G. Human platelet lysate acts synergistically with laminin to improve the neurotrophic effect of human adipose-derived stem cells on primary neurons. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 9, 658176 (2021).
  17. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  18. Cowper, M., et al. Human platelet lysate as a functional substitute for fetal bovine serum in the culture of human adipose derived stromal/stem cells. Cells. 8 (7), 724 (2019).
  19. Kim, N., et al. Mesenchymal stem cells for the treatment and prevention of graft-versus-host disease: Experiments and practice. Annals of Hematology. 92 (10), 1295-1308 (2013).
  20. Palombella, S., et al. Effects of metal micro and nano-particles on hASCs: An in vitro model. Nanomaterials. 7 (8), 212 (2017).
  21. Han, S., Sun, H. M., Hwang, K. C., Kim, S. W. Adipose-derived stromal vascular fraction cells: Update on clinical utility and efficacy. Critical Reviews in Eukaryotic Gene Expression. 25 (2), 145-152 (2015).
  22. Sotiropoulou, P. A., Perez, S. A., Salagianni, M., Baxevanis, C. N., Papamichail, M. Cell culture medium composition and translational adult bone marrow-derived stem cell research. Stem Cells. 24 (5), 1409-1410 (2006).
  23. Perez-Ilzarbe, M., et al. Comparison of ex vivo expansion culture conditions of mesenchymal stem cells for human cell therapy. Transfusion. 49 (9), 1901-1910 (2009).
  24. Tsuji, K., et al. Effects of different cell-detaching methods on the viability and cell surface antigen expression of synovial mesenchymal stem cells. Cell Transplantation. 26 (6), 1089-1102 (2017).
  25. Shah, F. S., Wu, X., Dietrich, M., Rood, J., Gimble, J. M. A non-enzymatic method for isolating human adipose tissue-derived stromal stem cells. Cytotherapy. 15 (8), 979-985 (2013).
  26. Becherucci, V., et al. Human platelet lysate in mesenchymal stromal cell expansion according to a GMP grade protocol: A cell factory experience. Stem Cell Research & Therapy. 9 (1), 124 (2018).
  27. Blande, I. S., et al. Adipose tissue mesenchymal stem cell expansion in animal serum-free medium supplemented with autologous human platelet lysate. Transfusion. 49 (12), 2680-2685 (2009).
  28. Castegnaro, S., et al. Effect of platelet lysate on the functional and molecular characteristics of mesenchymal stem cells isolated from adipose tissue. Current Stem Cell Research & Therapy. 6 (2), 105-114 (2011).
  29. Palombella, S., et al. Systematic review and meta-analysis on the use of human platelet lysate for mesenchymal stem cell cultures: Comparison with fetal bovine serum and considerations on the production protocol. Stem Cell Research & Therapy. 13 (1), 142 (2022).
  30. Palombella, S., et al. Human platelet lysate as a potential clinical-translatable supplement to support the neurotrophic properties of human adipose-derived stem cells. Stem Cell Research & Therapy. 11 (1), 432 (2020).
  31. Krähenbühl, S. M., Grognuz, A., Michetti, M., Raffoul, W., Applegate, L. A. Enhancement of human adipose-derived stem cell expansion and stability for clinical use. International Journal of Stem Cell Research & Therapy. 2 (1), 007 (2015).

Play Video

Cite This Article
Guiotto, M., Palombella, S., Brambilla, S., Applegate, L. A., Riehle, M., Hart, A., Raffoul, W., di Summa, P. G. Isolation and Culture of Human Adipose-Derived Stem Cells With an Innovative Xenogeneic-Free Method for Human Therapy. J. Vis. Exp. (192), e65104, doi:10.3791/65104 (2023).

View Video