Summary

Multiplex cyclische fluorescerende immunohistochemie

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

Multiplex, cyclische immunohistochemie, maakt in situ detectie van meerdere markers tegelijk mogelijk met behulp van herhaalde antigeen-antilichaamincubatie, beeldscanning en beelduitlijning en -integratie. Hier presenteren we het operationele protocol voor het identificeren van immuuncelsubstraten met deze technologie in longkanker en gepaarde hersenmetastasemonsters.

Abstract

De micro-omgeving van de tumor omvat interacties tussen gastheercellen, tumorcellen, immuuncellen, stromale cellen en vasculatuur. Het karakteriseren en ruimtelijk organiseren van subsets van immuuncellen en doeleiwitten is cruciaal voor prognostische en therapeutische doeleinden. Dit heeft geleid tot de ontwikkeling van multiplexed immunohistochemie kleuringsmethoden. Multiplex-fluorescentie-immunohistochemie maakt de gelijktijdige detectie van meerdere markers mogelijk, waardoor een uitgebreid begrip van de celfunctie en intercellulaire interacties mogelijk wordt. In dit artikel beschrijven we een workflow voor de multiplex cyclische fluorescerende immunohistochemietest en de toepassing ervan in de kwantificeringsanalyse van lymfocytensubsets. De multiplex cyclische fluorescerende immunohistochemische kleuring volgt vergelijkbare stappen en reagentia als standaard immunohistochemie, waarbij antigeenextractie, cyclische antilichaamincubatie en kleuring op een in formaline gefixeerde paraffine ingebedde (FFPE) weefselglaasje betrokken zijn. Tijdens de antigeen-antilichaamreactie wordt een mengsel van antilichamen van verschillende soorten bereid. Omstandigheden, zoals de ophaaltijd van het antigeen en de concentratie van antilichamen, worden geoptimaliseerd en gevalideerd om de signaal-ruisverhouding te verhogen. Deze techniek is reproduceerbaar en dient als een waardevol hulpmiddel voor onderzoek naar immunotherapie en klinische toepassingen.

Introduction

Hersenmetastasen (BM) vertegenwoordigen de meest voorkomende tumoren van het centrale zenuwstelsel (CZS) en komen voor in bijna de helft van de gevallen van niet-kleincellige longkanker (NSCLC), met een slechte prognose1. Naar schatting 10%-20% van de NSCLC-patiënten heeft al BM op het moment van de eerste diagnose, en ongeveer 40% van de NSCLC-gevallen zal BM ontwikkelen in de loop van behandeling2. De tumormicro-omgeving (TME) is nauw verbonden met het voorkomen van NSCLC en BM, inclusief verschillende componenten, zoals bloedvaten, fibroblasten, macrofagen, extracellulaire matrix (ECM), lymfoïde, van beenmerg afgeleide immuuncellen en signaalmoleculen 3,4. Micro-omgevingsimmuuncellen spelen een cruciale rol bij het beïnvloeden van de groei en ontwikkeling van kankercellen. Hersenmetastasen presenteren tal van potentiële behandelingsdoelen die worden gekenmerkt door complexe immunologische micro-omgevingen en signaleringsprocessen. PD-1-remmers hebben bijvoorbeeld klinische werkzaamheid aangetoond voor patiënten met hersenmetastasen van longkanker (LCBM) als immuuncheckpointremmer (ICI). De frequentie van reacties op PD-1-therapie varieert echter tussen primaire NSCLC en LCBM5, wat suggereert dat de immuunmicro-omgeving van de tumor fungeert als een kritische ICI-regulator.

Immunohistochemie (IHC) is een hulpmiddel van onschatbare waarde op het gebied van biologie, basisgeneeskunde en pathologie6. Deze detectiemethode visualiseert antigeenexpressie door de interactie van antigeen-antilichaam op een weefselglaasje7. IHC wordt gebruikt voor het diagnosticeren van voorspellende markers, het evalueren van prognostische markers, het begeleiden van gerichte therapieën en het onderzoeken van de biologische functies van tumorcellen8. De traditionele IHC-methode kan echter maar één biomarker tegelijk detecteren. Om deze beperking aan te pakken, heeft de innovatie van immunohistochemische technologie geleid tot de ontwikkeling van multiplex fluorescentie immunohistochemie (mfIHC), die de gelijktijdige identificatie van meerdere eiwitmarkers op hetzelfde weefselglaasje mogelijk maakt, zowel in het heldere veld als in het fluorescerende veld9. Deze vooruitgang biedt een nauwkeurige analyse van de celsamenstelling en moleculaire interacties tussen stromale cellen, immuuncellen en kankercellen binnen de TME.

In deze studie presenteren we een protocol voor multiplex cyclische immunohistochemie om de ruimtelijke verdeling van immuuncellen te analyseren. Twee primaire antilichamen van verschillende soorten, zoals konijn en rat, worden tegelijkertijd gekozen voor incubatie, gevolgd door fluorescentie-gelabelde secundaire antilichamen. Het ophalen van antigeen wordt uitgevoerd na elke antigeen-antilichaamreactie. Autofluorescentie wordt geblokkeerd en 4′, 6-diamidino-2-fenylindool (DAPI) wordt gebruikt voor het kleuren van de kernen. Het panel omvat sequentiële detectie van CD3, CD8, CD20 en CK, cellen worden gecategoriseerd volgens de markers: tumorcellen (CK+), rijpe T-cellen (CD3+), cytotoxische T-cellen (CD3+CD8+), B-cellen (CD20+)10,11.

Protocol

Het onderzoek werd goedgekeurd door de medisch-ethische commissie van het Yunnan Cancer Hospital/het Third Affiliated Hospital van de Kunming Medical University. Alle proefpersonen/wettelijke voogden ondertekenden geïnformeerde toestemming. 1. Voorbereiding van de objectglaasjes Snijd met behulp van een microtoom secties van gepaarde paraffineblokken met primaire longtumor- of longkankerhersenmetastasencellen met een dikte van 4 μm. Verwijder secties in water en sc…

Representative Results

We presenteren een protocol voor cyclische antigeendetectie met behulp van 5-kleuren multiplex fluorescentie op een enkel objectglaasje. Door onze optimalisatie van de test maken we de incubatie van twee antilichamen van verschillende soorten mogelijk (Figuur 1). De benodigde apparaten voor de experimentprocedure zijn onder meer een snelkookpan en een immunokleuringsdoos (Figuur 2A). Na voltooiing van de test definiëren we de pseudok…

Discussion

We hebben het proces beschreven voor multiplex cyclische fluorescentie immunohistochemische kleuring. De selectie van primaire antilichamen is een cruciaal aspect van de fluorescentie-immunohistochemische test, en monoklonale antilichamen worden aanbevolen voor een betere specificiteit en herhaalbaarheid. Om de werkconcentratie van het primaire antilichaam te optimaliseren, is een reeks verdunningen getest door middel van immunohistochemische experimenten. Zowel positieve controles (om de expressie van het doelantigeen t…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (NO.81860413, 81960455), Yunnan Science and Technology Department Fund (202001AY070001-080), Scientific Research Foundation of Education Department van de provincie Yunnan (2019J1274).

Materials

0.15 mol/L KmnO4 Maixin Biotechnology Co. Ltd. MST-8005
100x sodium citrate  Maixin Biotechnology Co., Ltd MVS-0100
3% hydrogen peroxide Maixin Biotechnology Co., Ltd SP KIT-A1
3D Pannoramic MIDI 3D histech Ltd Pannoramic MIDI 1.18
Alexa Fluor 488 Abcam ab150113
Alexa Fluor 568  Abcam ab175701
Alexa Fluor 594 Abcam ab150116
Alexa Fluor 647 Abcam ab150079
Bond primary antibody diluent Lecia AR9352
CD20 Maixin Biotechnology Co., Ltd kit-0001
CD3 Maixin Biotechnology Co., Ltd.  kit-0003
CD8  Maixin Biotechnology Co., Ltd RMA-0514
CK Maixin Biotechnology Co. Ltd. MAB-0671,
DAPI sig-ma D8417
ethanol Sinopharm Group Chemical reagent Co., LTD 10009218
Histocore Multicut lecia 2245
PBS(powder) Maixin Biotechnology Co., Ltd PBS-0061
slide viwer  3D histech Ltd
xylene Sinopharm Group Chemical reagent Co., LTD 10023418

References

  1. Wanleenuwat, P., Iwanowski, P. Metastases to the central nervous system: Molecular basis and clinical considerations. J Neurol Sci. 412, 116755 (2020).
  2. Schoenmaekers, J., Dingemans, A. C., Hendriks, L. E. L. Brain imaging in early stage non-small cell lung cancer: still a controversial topic. J Thorac Dis. 10, S2168-S2171 (2018).
  3. Vilariño, N., Bruna, J., Bosch-Barrera, J., Valiente, M., Nadal, E. Immunotherapy in NSCLC patients with brain metastases. Understanding brain tumor microenvironment and dissecting outcomes from immune checkpoint blockade in the clinic. Cancer Treat Rev. 89, 102067 (2020).
  4. Babar, Q., Saeed, A., Tabish, T. A., Sarwar, M., Thorat, N. D. Targeting the tumor microenvironment: Potential strategy for cancer therapeutics. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1869 (6), 166746 (2023).
  5. Goldberg, S. B., et al. Pembrolizumab for management of patients with NSCLC and brain metastases: long-term results and biomarker analysis from a non-randomised, open-label, phase 2 trial. Lancet Oncol. 21 (5), 655-663 (2020).
  6. Sukswai, N., Khoury, J. D. Immunohistochemistry Innovations for Diagnosis and Tissue-Based Biomarker Detection. Curr Hematol Malig Rep. 14 (5), 368-375 (2019).
  7. Janardhan, K. S., Jensen, H., Clayton, N. P., Herbert, R. A. Immunohistochemistry in Investigative and Toxicologic Pathology. Toxicol Pathol. 46 (5), 488-510 (2018).
  8. Torlakovic, E. E., Nielsen, S., Vyberg, M., Taylor, C. R. Getting controls under control: the time is now for immunohistochemistry. J Clin Pathol. 68 (11), 879-882 (2015).
  9. Tan, W. C. C., et al. Overview of multiplex immunohistochemistry/immunofluorescence techniques in the era of cancer immunotherapy. Cancer Commun (Lond). 40 (4), 135-153 (2020).
  10. Wong, P. F., et al. Multiplex quantitative analysis of tumor-infiltrating lymphocytes and immunotherapy outcome in metastatic melanoma. Clin Cancer Res. 25 (8), 2442-2449 (2019).
  11. Sanchez, K., et al. Multiplex immunofluorescence to measure dynamic changes in tumor-infiltrating lymphocytes and PD-L1 in early-stage breast cancer. Breast Cancer Res. 23 (1), 2 (2021).
  12. Zhang, W., et al. Multiplex immunohistochemistry indicates biomarkers in colorectal cancer. Neoplasma. 68 (6), 1272-1282 (2021).
  13. Salameh, S., Nouel, D., Flores, C., Hoops, D. An optimized immunohistochemistry protocol for detecting the guidance cue Netrin-1 in neural tissue. MethodsX. 5, 1-7 (2018).
  14. McClellan, P., Jacquet, R., Yu, Q., Landis, W. J. A Method for the immunohistochemical identification and localization of Osterix in periosteum-wrapped constructs for tissue engineering of bone. J Histochem Cytochem. 65 (7), 407-420 (2017).
  15. Sun, Y., et al. Sudan black B reduces autofluorescence in murine renal tissue. Arch Pathol Lab Med. 135 (10), 1335-1342 (2011).
  16. Taube, J. M., et al. The Society for Immunotherapy of Cancer statement on best practices for multiplex immunohistochemistry (IHC) and immunofluorescence (IF) staining and validation. J Immunother Cancer. 8 (1), 000155 (2020).
  17. Clarke, G. M., et al. A novel, automated technology for multiplex biomarker imaging and application to breast cancer. Histopathology. 64 (2), 242-255 (2014).
  18. Oliveira, V. C., et al. Sudan Black B treatment reduces autofluorescence and improves resolution of in situ hybridization specific fluorescent signals of brain sections. Histol Histopathol. 25 (8), 1017-1024 (2010).
  19. Ahrens, M. J., Dudley, A. T. Chemical pretreatment of growth plate cartilage increases immunofluorescence sensitivity. J Histochem Cytochem. 59 (4), 408-418 (2011).
  20. Zhang, Y., et al. Spectral characteristics of autofluorescence in renal tissue and methods for reducing fluorescence background in confocal laser scanning microscopy. J Fluoresc. 28 (2), 561-572 (2018).
check_url/66136?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chen, Y., Zhang, H., Fan, Y., Yang, L., Dong, Y. Multiplex Cyclic Fluorescent Immunohistochemistry. J. Vis. Exp. (203), e66136, doi:10.3791/66136 (2024).

View Video