Summary

Isolatie en Cultuur van Post-Natal Mouse Cerebellaire Korrel Neuron progenitor cellen en Neuronen

Published: January 16, 2009
doi:

Summary

Hier presenteren wij een methode om te isoleren en cultuur cerebellaire granule neuron progenitor cellen en cerebellaire korrel neuronen van postnatale muis.

Abstract

De cerebellaire cortex is een goed beschreven structuur die unieke kansen voor het bestuderen van neuronale eigenschappen en ontwikkeling 1,2 biedt. Van de cerebellaire neuronale types (granule cellen, Purkinje cellen en remmende interneuronen), granulaat neuronen zijn veruit de meest talrijke en zijn de meest voorkomende vorm van neuronen in de hersenen van zoogdieren. Bij knaagdieren, zijn de kleine hersenen korrel neuronen die tijdens de eerste twee postnatale week van progenitor cellen in de buitenste laag van de cerebellaire cortex, de externe korrel laag (EGL). Het protocol beschrijft hier gepresenteerde technieken te verrijken en cultuur korrel neuronen en hun stamcellen uit post-natale muis cerebellum. We beschrijven de procedures aan culturen van toenemende zuiverheid 3,4, die kan worden gebruikt om de differentiatie van prolifererende progenitorcellen in de granule neuronen 5,6 studie te verkrijgen. Zodra de progenitor cellen differentiëren, de culturen ook een homogene populatie van korrel neuronen zorgen voor experimentele manipulatie en karakterisering van fenomenen zoals synaptogenese, glutamaat receptor functie 7, interactie met andere gezuiverde cerebellaire cellen 8,9 of celdood 7.

Protocol

Deel 1: Het opzetten van (1-2 dagen vóór versnijding) (niet getoond op de video) VOORBEREIDEN CULTUUR OPLOSSINGEN EN MEDIA: 4X CMF-PBS-EDTA (calcium en magnesium vrij-fosfaat gebufferde zoutoplossing-EDTA voor Percoll verdunningen): per liter, voeg 32 g NaCl, 1,2 g KCl, 8 g glucose, 2 g NaH 2 PO 4, 1 g KH 2 PO 4, 8 ml 2% NaHCO 3 voorraad, 10 ml 1 M EDTA (pH 8,0) om gedestilleerd / gedemineraliseerd water. Zet het volume op 1 liter en de pH op 7,…

Discussion

Dit protocol is gebaseerd op de wijzigingen van de procedures die zijn beschreven in het verleden 3,7,11. Er zijn een aantal belangrijke punten om op te merken, zoals hieronder besproken.

De korrel neuronen en progenitor cellen zich binnen 2 uur in de platen. Gezonde cellen hebben een ronde morfologie onder de fase-contrast microscoop 4. Binnen 24 uur na plating, zullen gezonde cellen verspreid over heel de dekglaasjes of het plastic goed en vormt processen. Op het moment van het eerste medium te veranderen, na…

Acknowledgements

Wij danken Barbara Carletti en Anna Marie Kenney voor waardevolle suggesties. HYL wordt ondersteund door de Training Grant "Hormonen: Biochemie en Moleculaire Biologie ', DK07328. Mede ondersteund door NIH subsidie ​​5R01 NS16951 (CAM).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Cell strainer with 70μm mesh pore   BD Biosciences 352350  
Spinal Needle   BD 405182 20G x 3-1/2 inches
Poly-D-Lysine mol wt>300,000   Sigma P1024 Each new batch of Poly-D-Lysine must be tested.
Percoll   Sigma P-1644  
Penicillin-Streptomycin (100X)   Sigma P4333  
HBSS   Invitrogen 14175-103 Must be calcium and magnesium free.
Neurobasal A-Medium   Invitrogen 10888-022  
Glutamax I supplement   Invitrogen 35050-061  
B-27 Serum Free Supplement (50x)   Invitrogen 17504-044  
12-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3029 These are made in Germany by Deckgluder.
25-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3037 These are made in Germany by Deckgluder.
Papain Dissociation System   Worthington Biochemical Corporation LK 003150 Kit is good for five isolations.
Permaset scissors   Roboz RS6782  
Dumont #5 (Dumostar)   Roboz RS4978  
4-well culture dish   Nunc 176740  
6-well culture dish   Nunc 140685  

References

  1. Altman, J., Bayer, S. A. . Development of the cerebellar system: in relation to its evolution, structure, and functions. , (1997).
  2. Hatten, M. E., Heintz, N. . Annual Review of Neuroscience. 18, 385-285 (1995).
  3. Hatten, M. E., Gao, W. -. Q., Morrison, M. E., Banker, G., Goslin, K. . in Culturing Nerve Cells. , 419-419 (1998).
  4. Hatten, M. E. . The Journal of Cell Biology. 100 (2), 384-384 (1985).
  5. Carletti, B., Rossi, F. . Neuroscientist. 14 (1), 91-91 (2008).
  6. Knoepfler, P. S., Kenney, A. M. . Cell Cycle. 5 (1), 47-47 (2006).
  7. Manzini, M. C., Joseph, D. J., MacDermott, A. B. . Molecular and Cellular Neuroscience. 35 (2), 328-328 (2007).
  8. Manzini, M. C., Ward, M. S., Zhang, Q. . Journal of Neuroscience. 26 (22), 6040-6040 (2006).
  9. Baptista, C. A., Hatten, M. E., Blazeski, R. . Neuron. 12 (2), 243-243 (1994).
  10. Palay, S. L., Chan-Palay, V. . Cerebellar Cortex: Cytology and Organization. , (1974).
  11. Messer, A. . Brain Research. 130 (1), 1-1 (1977).
  12. Ruiz I Altaba, A. . Development. 126, 3205-3205 (1999).
  13. Wallace, V. A. . Current Biology. 9 (8), 445-445 (1999).
  14. Wechsler-Reya, R. J., Scott, M. P. . Neuron. 22 (1), 103-103 (1999).
  15. Solecki, D. J., Liu, X. L., Tomoda, T. . Neuron. 31 (4), 557-557 (2001).
  16. Powell, S. K., Williams, C. C., Nomizu, M. . Journal of Neuroscience Research. 54 (2), 233-233 (1998).
  17. Lander, A. D., Fujii, D. K., Reichardt, L. F. . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (7), 2183-2183 (1985).
  18. Kenney, A. M., Rowitch, D. H. . Molecular and Cellular Biology. 20 (23), 9055-9055 (2000).
  19. Kenney, A. M., Cole, M. D., Rowitch, D. H. . Development. 130 (1), 15-15 (2003).
  20. Pons, S., Trejo, J. L., Martinez-Morales, J. R. . Development. 128, 1481-1481 (2001).
check_url/990?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lee, H. Y., Greene, L. A., Mason, C. A., Manzini, M. C. Isolation and Culture of Post-Natal Mouse Cerebellar Granule Neuron Progenitor Cells and Neurons . J. Vis. Exp. (23), e990, doi:10.3791/990 (2009).

View Video