Summary

TiOを使用して水性環境中のタンパク質や細胞を光パターニング<sub> 2</sub>光触媒

Published: October 26, 2015
doi:

Summary

We describe a protocol for modifying cell affinity of a scaffold surface in aqueous environment. The method takes advantage of titanium dioxide photocatalysis to decompose organic film in the photo-irradiated region. We show that it can be used to create microdomains of scaffolding proteins, both ex situ and in situ.

Abstract

二酸化チタン(TiO 2)の表面に吸着した有機汚染物質は、紫外線(UV)光の下で光触媒により分解することができます。ここでは、局所的に、基板表面の細胞親和性を変化させるためにTiO 2の光触媒を採用した新たなプロトコルを記述します。この実験では、薄膜のTiO 2膜をスパッタコーティングしたカバーガラス上で、TiO 2の表面は、続いて、細胞接着を阻害オクタデシルトリクロロシラン(OTS)に由来するオルガノシラン単層で修飾しました。サンプルは、細胞培養培地中に浸漬し、UV光を八角形の領域に照射された焦点を合わせました。神経細胞株PC12細胞を試料上にプレーティングしたときに、細胞は、UV照射領域に接着しました。我々はさらに、細胞を基板上に成長している場合でも、この表面改質はまた、 例えばその場で行うことができることを示しています。表面の適切な修飾は、細胞外マトリックスpを必要とUV照射時に培地中に存在することが、コラーゲンをrotein。ここに提示された技術は、潜在的に共培養システムを構築するか、任意の培養で細胞を操作するための複数の細胞型のパターン化に用いることができます。

Introduction

半導体リソグラフィプロセスおよびその誘導体- 、フォトリソグラフィ1,2、電子ビームリソグラフィ3-6、および7-10を印刷マイクロコンタクトとしては-今定義された位置と形状に生きた細胞を成長させるために、細胞生物学の確立ツールとなっています。パターニング方法は、非許容バックグラウンドでセル許容コーティングのミクロの島からなる、微細加工された基板の使用に依存しています。このような基板は、パターンセルをするためのテンプレートとして機能します。これらの技術は、私たちの細胞の本質的な特性を抽出すること、及び細胞ベースの薬物スクリーニング11のスループットを高めるために、単一および多細胞レベルでの細胞およびそれらの機能を設計するための新規な方法を提供しています。

テンプレートのパターン形状を、すなわちその場で変更することができれば、細胞がS上で培養されながら、自由度のセルのパターニングでは大きく増加しますurface。これらは大気中または真空中でサンプルを処理するためのパターン形成のための従来の方法は、直接、ここでは適用できません。そのため、様々な新しい表面改質技術はちょうど少数を示すために、光反応性化合物12,13またはレーザーアブレーション5,14に、 例えば 、基になっている、提案されています。提案された方法はうまくチョイ 16と中西17によって、より最近になって。Robertusらによって 15を見直し、されています。

ここでは、この記事では、我々は、二酸化チタン上に有機分子の光触媒分解を利用していますin-situで表面修飾、(TiO 2の)表面18,19の新規のプロトコルを記述します。この方法では、TiO 2のフィルムは、ガラス基板と細胞膜の間に有機インターフェースに挿入され、有機膜が局部的に紫外線(UV)を照射することにより、その場で分解され関心領域(λ<388 nm)での光。新たなプロトコルは、細胞外マトリックスタンパク質および生細胞の両方の現場外そのでの微細パターンを作成するために使用できることを示します。 TiO 2は、細胞培養実験に導入することがフレンドリーになる特徴、そのうちの、生体適合性の化学的に安定し、光学的に透明です。このプロトコルは、細胞培養環境での細胞培養足場を修正するための材料科学ベースの代替手段を提供します。

Protocol

TiO 2の調製は、ガラスカバースリップをコーティングを採用しましたナンバーダイヤモンドスクライバーを使用してカバースリップ。これは、各カバースリップを追跡するためだけでなく、サンプルの正しい側が上を向いていることを確実にするためだけではなく役立ちます。次にピラニア溶液にそれらを浸漬することにより、第一のddH 2 Oを実行して下に、カバーガラスを清…

Representative Results

図2Aは、スパッタ堆積のTiO 2膜の断面の走査型電子顕微鏡(SEM)像を示します。観察から、フィルムの厚さは150nm程度であると推定されました。ここで顕著な堆積のTiO 2膜の平坦性があります。原子間力顕微鏡(AFM)によるさらなる分析は、表面の二乗平均平方根(RMS)粗さは0.2nmで( 図2B)であることが明らかになりました。 <su…

Discussion

我々の現在のプロトコルでは、TiO 2の膜は、RFマグネトロンスパッタ法により形成しました。それは、私たちは再現性のサブnmの粗さと光触媒 TiO 2膜を作製することができますので、我々は、堆積のこの方法を好みます。スパッタ成膜プロセスは材料科学者や電子技術者によく知られているが、それは生物学者に非常にアクセスできないことがあります。その場合には、スピ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Authors thank Mr. Kotaro Okubo for the kind assistance with SEM imaging. This work was supported by the Japan Society for the Promotion of Science Grant-in-Aid for Basic Research (B) (20310069), Grant-in-Aid for Research Activity Start-up (25880021), and by research grants from the Kurata Memorial Hitachi Science and Technology Foundation and the Nippon Sheet Glass Foundation for Materials Science and Engineering.

Materials

Glass coverslip Warner Instruments CS-15R15 15 mm, #1.5 thickness
Diamond scriber Ogura Jewel Industry D-Point Pen
RF sputtering system ANELVA SPC350
TiO2 sputtering target Kojundo Chemical Lab Titanium (IV) oxide, target Purity, 99.9%
Plasma reactor Yamato PR301
n-octadecyltrichlorosilane
(OTS)
Aldrich 104817
Toluene Wako 204-01866
Tissue-culture dish (35 mm) Greiner 627160
Tissue-culture dish (60 mm) BD Falcon 353002
Type-IV collagen Nitta Gelatin Cellmatrix Type IV
D-PBS Gibco 14190-144
Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) Gibco 11885-084
Fetal bovine serum Gibco 12483-020 Heat-inactivate and pass through a 0.22 mm filter before use
Horse serum Gibco 26050-088 Pass through a 0.22 mm filter before use
Penicillin-streptomycin (100x) Nacalai tesque 26253-84
7S nerve growth factor (NGF) Alomone Labs N-130
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A2153
EDTA Dojindo N001 Stock solution in 0.5 M
TiO2 nanoparticle Tayca TKD-701

References

  1. Hughes, M. A., Brennan, P. M., Bunting, A. S., Shipston, M. J., Murray, A. F. Cell Patterning on Photolithographically Defined Parylene-C: SiO2 Substrates. J. Vis. Exp. (85), e50929 (2014).
  2. Kleinfeld, D., Kahler, K. H., Hockberger, P. E. Controlled Outgrowth of Dissociated Neurons on Patterned Substrates. J. Neurosci. 8, 4098-4120 (1988).
  3. Pensen, D., Heinz, W. F., Werbin, J. L., Hoh, J. H., Haviland, D. B. Electron Beam Patterning of Fibronectin Nanodots that Support Focal Adhesion Formation. Soft Matter. 3, 1280-1284 (2007).
  4. Tanii, T., et al. Application of Organosilane Monolayer Template to Quantitative Evaluation of Cancer Cell Adhesive Ability. Jpn. J. Appl. Phys. 50, 06GL01 (2011).
  5. Yamamoto, H., et al. In-Situ Guidance of Individual Neuronal Processes by Wet Femtosecond Laser Processing of Self-Assembled Monolayers. Appl. Phys. Lett. 99, 163701-1610 (2011).
  6. Yamamoto, H., et al. Differential Neurite Outgrowth is Required for Axon Specification by Cultured Hippocampal Neurons. J. Neurochem. 123, 904-910 (2012).
  7. Shen, K., Qi, J., Kam, L. C. Microcontact Printing of Proteins for Cell Biology. J. Vis. Exp. (22), e1065 (2008).
  8. Johnson, D. M., LaFranzo, N. A., Maurer, J. A. Creating Two-Dimensional Patterned Substrates for Protein and Cell Confinement. J. Vis. Exp. (55), e3164 (2011).
  9. Singhvi, R., et al. Engineering Cell Shape and Function. Science. 264, 696-698 (1126).
  10. Chen, C. S., Mrksich, M., Huang, S., Whitesides, G. M., Ingber, D. E. Geometric Control of Cell Life and Death. Science. 276, 1425-1428 (1997).
  11. Degot, S., et al. Improved Visualization and Quantitative Analysis of Drug Effects using Micropatterned Cells. J. Vis. Exp. (46), e2514 (2010).
  12. Nakanishi, J., et al. Photoactivation of a Substrate for Cell Adhesion under Standard Fluorescence Microscopes. J. Am. Chem. Soc. 126, 16314-16315 (2004).
  13. Kim, M., et al. Addressable Micropatterning of Multiple Proteins and Cells by Microscope Projection Photolithography Based on a Protein Friendly Photoresist. Langmuir. 26, 12112-12118 (2010).
  14. Deka, G., Okano, K., Kao, F. -. J. Dynamic Photopatterning of Cells In Situ by Q-Switched Neodymium-Doped Yttrium Ortho-Vanadate. Laser. J. Biomed. Opt. 19, 011012 (2014).
  15. Robertus, J., Browne, W. R., Feringa, B. L. Dynamic Control over Cell Adhesive Properties using Molecular-Based Surface Engineering Strategies. Chem. Soc. Rev. 39, 354-378 (2010).
  16. Choi, I., Yeo, W. -. S. Self-Assembled Monolayers with Dynamicity Stemming from (Bio)chemical Conversions: From Construction to Application. ChemPhysChem. 14, 55-69 (2013).
  17. Nakanishi, J. Switchable Substrates for Analyzing and Engineering Cellular Functions. Chem. Asian J. 9, 406-417 (2014).
  18. Yamamoto, H., et al. In Situ Modification of Cell-Culture Scaffolds by Photocatalytic Decomposition of Organosilane Monolayers. Biofabrication. 6, 035021 (2014).
  19. Sekine, K., Yamamoto, H., Kono, S., Ikeda, T., Kuroda, A., Tanii, T. Surface Modification of Cell Scaffold in Aqueous Solution using TiO2 Photocatalysis and Linker Protein L2 for Patterning Primary Neurons. e-J. Surf. Sci. Nanotech. 13, 213-218 (2015).
  20. Arima, Y., Iwata, H. Effects of Surface Functional Groups on Protein Adsorption and Subsequent Cell Adhesion using Self-Assembled Monolayers. J. Mater. Chem. 17, 4079-4087 (2007).
  21. Fujishima, A., Zhang, X., Tryk, D. A. TiO2 Photocatalysis and Related Surface Phenomena. Surf. Sci. Rep. 63, 515-582 (2008).
  22. Sigal, G. B., Mrksich, M., Whitesides, G. M. Effect of Surface Wettability on the Adsorption of Proteins and Detergents. J. Am. Chem. Soc. 120, 3464-3473 (1998).
  23. Zhang, X., et al. A Transparent and Photo-Patternable Superhydrophobic Film. Chem. Commun. 2007, 4949-4951 (1039).
  24. Kaech, S., Banker, G. Culturing Hippocampal Neurons. Nat. Protoc. 1, 2406-2415 (2006).

Play Video

Cite This Article
Yamamoto, H., Demura, T., Sekine, K., Kono, S., Niwano, M., Hirano-Iwata, A., Tanii, T. Photopatterning Proteins and Cells in Aqueous Environment Using TiO2 Photocatalysis. J. Vis. Exp. (104), e53045, doi:10.3791/53045 (2015).

View Video