Summary

Método para a identificação de molécula pequena inibidores da interacção proteína-proteína entre HCN1 e TRIP8b

Published: November 11, 2016
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Summary

A interacção entre os canais HCN e a sua sub-unidade auxiliar tem sido identificada como um alvo terapêutico em Perturbação Depressiva Major. Aqui, um método baseado em polarização de fluorescência para identificar pequenas moléculas inibidoras desta interacção proteína-proteína, é apresentada.

Abstract

canais fechado nucleótidos cíclicos activada por hiperpolarização (HCN) são expressas ubiquamente em todo o cérebro, onde funcionam para regular a excitabilidade de neurónios. A distribuição sub-celular de estes canais em neurónios piramidais CA1 do hipocampo de área é regulada por tetratricopeptide proteína contendo repetição Rab8b interagindo (TRIP8b), uma sub-unidade auxiliar. nocaute genética de HCN formador de poros, subunidades ou TRIP8b, ambas conduzem a um aumento no comportamento do tipo antidepressivo, sugerindo que a limitação da função dos canais HCN pode ser útil como um tratamento para o transtorno depressivo maior (MDD). Apesar do interesse terapêutico significativo, os canais HCN também são expressos no coração, onde regulam ritmicidade. Para contornar problemas fora do alvo associados com bloqueio dos canais HCN cardíacos, nosso laboratório propôs recentemente visando a interação proteína-proteína entre HCN e TRIP8b, a fim de interromper especificamente função do canal HCN no cérebro.TRIP8b se liga a HCN poros formando subunidades em dois sítios de interação distintas, embora aqui o foco é sobre a interação entre o tetratricopeptide repeat (TPR) domínios de TRIP8b e a cauda do terminal C do HCN1. Neste protocolo, uma descrição expandida de um método para purificar TRIP8b e a execução de uma tela de alto rendimento para identificar inibidores de pequenas moléculas da interacção entre o HCN e TRIP8b, é descrito. O método de rastreio de elevado rendimento utiliza uma polarização de fluorescência (FP) à base de ensaio para monitorar a ligação de um fragmento grande TRIP8b para um onze marcado com fluoróforo amino ácido péptido correspondente à cauda do terminal HCN1 C. Este método permite que compostos "hit" a ser identificado com base na alteração na polarização de luz emitida. Os ensaios de validação são então realizadas para garantir que 'hit' compostos não são artificial.

Introduction

Canais fechado nucleótidos cíclicos activada por hiperpolarização (HCN) são expressos no coração e no sistema nervoso central, onde eles desempenham um papel importante na regulação da excitabilidade da membrana 1. Canais HCN têm sido implicados na patogênese de Transtorno Depressivo Maior (MDD) 2, o que levou vários grupos a propor que a limitação HCN função de canal farmacologicamente pode ser eficaz como um novo tratamento para MDD 3. No entanto, visando directamente os canais HCN não é viável devido ao seu papel importante no potencial de ação cardíaco 4. A ivabradina, a única FDA aprovou antagonista do canal de HCN, é utilizado para o tratamento de insuficiência cardíaca para produzir um efeito bradicárdico 5. Como tal, existe uma necessidade de agentes farmacológicos que limitam a função do canal de HCN exclusivamente no sistema nervoso central.

Tetratricopeptide repetir contendo proteína interagindo Rab8b (TRIP8b) é uma especificidade do cérebroFIC sub-unidade auxiliar de canais HCN que controla a expressão de superfície e localização dos canais HCN 6,7. Nocaute genético de TRIP8b provoca uma redução de canais HCN cerebrais 7 sem afetar a expressão HCN no coração 8. Curiosamente, camundongos knockout TRIP8b gastar menos tempo imóveis na tarefa de natação forçada e suspensão pela cauda tarefa 7, dois testes de triagem comumente utilizados para eficácia antidepressiva 9-11. Estes resultados sugerem que, em vez de ter como alvo directamente canais HCN com uma pequena molécula antagonista da função do canal de HCN, rompendo a interacção entre TRIP8b e HCN pode ser suficiente para produzir um comportamento do tipo antidepressivo.

TRIP8b se liga a HCN em dois locais de ligação distintos. O domínio de ligação de nucleótido cíclico (CNBD) de HCN interage com um domínio conservado de terminal de TRIP8b localizado N para os domínios de TPR TRIP8b 12,13. Embora os resíduos da CNBD que estão envolvidos nesteinteração foram mapeados 14, a região de TRIP8b que está envolvido não foi reduzida além de um-80 amino fragmento de ácido 13. A segunda interação ocorre entre os domínios tetratricopeptide repeat (TPR) do TRIP8b eo tripeptide do terminal C do HCN ( 'SNL' em HCN1, HCN2 e HCN4, mas 'ANM' em HCN3) 3,12. A estrutura cristalina recentemente resolvido 15 desta interação cauda C revelou semelhança estrutural substancial para a interação entre o receptor de importação peroxisomal, peroxin 5 (PEX5), e sua interação parceiros, contendo tipo 1 sequências peroxisomais alvo (PTS1) 16.

Embora ambos os sítios de interacção são necessários para a função do canal de HCN, a interacção entre os domínios de TPR TRIP8b e do tripéptido C-terminal de HCN1 serve como o sítio de ligação dominante e regula a expressão de superfície de HCN. Portanto, esta interacção foi escolhida como o local segmentação neste estudo.Para o restante do manuscrito, quando é feita uma referência à interacção entre TRIP8b e HCN, é essa interação que está sendo referido. Esta interacção, se condensa por um fragmento altamente solúvel de TRIP8b correspondente ao seu terminal C conservada contendo os domínios TPR necessários para a ligação da cauda de terminal C de HCN (resíduos 241-602 da 1a-4 isoformas de TRIP8b) 3.

A fim de desenvolver uma tela de alto rendimento para identificar pequenas moléculas capazes de interromper esta interacção, uma polarização de fluorescência (FP) à base de ensaio foi aplicado 17. Polarização de fluorescência baseia-se na excitação de um ligando marcado com um fluororo com luz polarizada, e a medição do grau de polarização da fluorescência emitida 18. Na presença de um parceiro de ligação, o movimento de rotação do ligando fluorescente é restringida e luz polarizada é emitida 19. Na ausência de um parceiro de ligação, tele o movimento de rotação do ligando leva à emissão de luz despolarizada.

No protocolo em anexo, um método para a purificação de N-terminal etiquetado (6xHis) TRIP8b (241-602) usando ácido nitrilotriacético-níquel (Ni-NTA) grânulos é apresentada. Um protocolo semelhante foi utilizado para purificar a glutationa-S-transferase (GST) tagged terminal C de 40 aminoácidos de HCN1 (C40 HCN1) utilizado no passo 7 do protocolo. Para considerações de espaço, uma descrição detalhada do procedimento que foi omitido.

Nas etapas 2 a 7 do protocolo, um fluxo de trabalho rastreio de alto rendimento é apresentado (ver Figura 1). Interações proteína-proteína são um alvo notoriamente difícil para triagem de alto rendimento e os leitores são aconselhados a procurar recursos adicionais sobre o tema 20.

As etapas 2 e 3 do procedimento caracterizar a afinidade in vitro do TRIP8b purificado (241-602) construir fora isotiocianato de fluoresceína (FITC) tagged onze péptido de aminoácido correspondente à cauda de C terminal de HCN1 (HCN1 FITC). Com base na estrutura de cristal do complexo de HCN TRIP8b-15, este segmento de ácido onze amino é suficiente para produzir ligação com TRIP8b (241-602). No passo 2, a K d da interacção é medida por titulação TRIP8b (241-602) para uma concentração fixa de HCN1 FITC. No passo 3, uma versão não marcado do péptido HCN utilizado no passo 2 é titulada para uma concentração fixa de ambos TRIP8b (241-602) e HCN1 FITC para examinar se a etiqueta FITC interfere com a ligação. Estas experiências são essenciais para a selecção das concentrações adequadas de TRIP8b (241-602) e HCN1 FITC utilizados na tela de alto rendimento.

A premissa de tela de alto rendimento que é uma molécula pequena capaz de impedir a interacção entre TRIP8b (241-602) e HCN1 FITC irá produzir um DECRease em luz polarizada. No passo 4, o factor de Z do ensaio é calculado 21 para uma dada concentração de TRIP8b (241-602) e HCN1 FITC para assegurar que o ensaio é adequado para rastreio de alta (passo 5). Passos 6 e 7 são ensaios de validação para confirmar que os sucessos identificados no ecrã rendimento primário alta estão agindo por perturbar a interação entre TRIP8b (241-602) e HCN1 FITC em vez de através de um mecanismo não específico. No passo 6, carboxitetrametilrodamina (TAMRA) marcado com HCN1 péptido (HCN1 TAMRA) é utilizado num ensaio de polarização de fluorescência de outra forma idêntico ao filtrar os compostos fluorescentes que comprometem o ensaio de FP utilizando a marcação com FITC. Passo 7 utiliza um maior fragmento do terminal HCN1 C (HCN1 C40) e emprega um ensaio de proximidade baseado em talão, que se baseia no "encapsulamento" de um oxigénio singuleto a partir de um cordão de dador para um grânulo aceitador trazida para perto uma da outra por proteínas que interagem 22.

Protocol

1. A purificação do TRIP8b (241-602) Proteína Transformar o plasmídeo contendo TRIP8b (241-602) no vector de expressão da proteína bacteriana pGS21 3 em E. competente coli para a expressão da proteína de acordo com as instruções do fabricante. Placa de 300 ul da cultura em caldo de Luria (LB) -agar com 5 ug / ml de cloranfenicol e ampicilina. Incubar a placa a 37 ° C durante 16 h. No dia seguinte, escolher uma única colónia para inocular 50 ml de LB com 50 u…

Representative Results

Para evitar problemas com direitos de autor nossa publicação anterior, uma sonda marcada com TAMRA HCN1 TAMRA foi usada para gerar Figuras 2 e 3. Note-se que esta substituição não fez uma diferença significativa nos resultados, e os protocolos são idênticos aos descritos acima, com HCN1 FITC. Para avaliar a interacção com HCN1 TAMRA, TRIP8b (241-602) foi titulada numa concentração fixa de HCN1 TAMRA…

Discussion

Devido ao seu potencial como um alvo terapêutico no TDM 24, tem havido um interesse considerável em abordagens farmacológicas que antagonizam a função do canal de HCN no sistema nervoso central 4. No entanto, estes esforços têm sido parado por o importante papel dos canais HCN em pacemaking cardíaca eo risco de arritmia 25. Nós fundamentado que interromper a interação entre HCN e seu sub-unidade auxiliar específica do cérebro, TRIP8b 8, pode ser suficiente para pr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health Grant R21MH104471 and R01MH106511 (D.M.C.), Brain Research Foundation SG 2012-01 (D.M.C.), Northwestern University Clinical and Translational Sciences Institute 8UL1TR000150 (Y.H.), Chicago Biomedical Consortium HTS-004 (Y.H. and D.M.C.), and National Institutes of Health Grant 2T32MH067564 (K.L.). A part of this work was performed by the Northwestern University Medicinal and Synthetic Chemistry Core (ChemCore) at the Center for Molecular Innovation and Drug Discovery (CMIDD), which is funded by the Chicago Biomedical Consortium with support from the Searle Funds at the Chicago Community Trust and Cancer Center Support Grant P30 CA060553 from the National Cancer Institute awarded to the Robert H. Lurie Comprehensive Cancer Center. The high throughput screen work was performed in the High Throughput Analysis Laboratory which is also a core facility of the Robert H. Lurie Comprehensive Cancer Center.

Materials

Ni-NTA agarose  Qiagen 30210
Dialysis cassette  ThermoFisher 66456
Isopropyl b-D-1-thiogalactopyranoside  Sigma-Aldrich I5502-1G
384 Well Black plate  Corning 3820
Proxiplate  Perkin-Elmer  6008289
Anti-GST Acceptor beads  Perkin-Elmer  6760603C
NiChelate Perkin-Elmer  AS101D
pGS21-a Genscript SD0121
PMSF Sigma-Aldrich 10837091001
Coomassie Kit ThermoFisher 23200
Protein concentrator ThermoFisher 88527
Perkin Elmer Enspire Multimode Plate reader Perkin-Elmer  #2300-001M
BL21 (DE3) Competent Cells Agilent 200131

References

  1. Biel, M., Wahl-Schott, C., Michalakis, S., Zong, X. Hyperpolarization-activated cation channels: from genes to function. Physiol Rev. 89 (3), 847-885 (2009).
  2. Shah, M. M. HCN1 channels: a new therapeutic target for depressive disorders?. Sci Signal. 5 (244), pe44 (2012).
  3. Han, Y., et al. Identification of Small-Molecule Inhibitors of Hyperpolarization-Activated Cyclic Nucleotide-Gated Channels. J Biomol Screen. 20 (9), 1124-1131 (2015).
  4. Postea, O., Biel, M. Exploring HCN channels as novel drug targets. Nat Rev Drug Discov. 10 (12), (2011).
  5. Stieber, J., Wieland, K., Stöckl, G., Ludwig, A., Hofmann, F. Bradycardic and proarrhythmic properties of sinus node inhibitors. Mol Pharmacol. 69 (4), 1328-1337 (2006).
  6. Santoro, B., Wainger, B. J., Siegelbaum, S. A. Regulation of HCN channel surface expression by a novel C-terminal protein-protein interaction. J Neurosci. 24 (47), 10750-10762 (2004).
  7. Lewis, A. S., et al. Deletion of the hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channel auxiliary subunit TRIP8b impairs hippocampal Ih localization and function and promotes antidepressant behavior in mice. J Neurosci. 31 (20), 7424-7440 (2011).
  8. Heuermann, R. J., et al. Reduction of thalamic and cortical Ih by deletion of TRIP8b produces a mouse model of human absence epilepsy. Neurobiol Dis. 85, 81-92 (2016).
  9. Steru, L., Chermat, R., Thierry, B., Simon, P. The tail suspension test: A new method for screening antidepressants in mice. Psychopharmacology. 85 (3), 367-370 (1985).
  10. Petit-Demouliere, B., Chenu, F., Bourin, M. Forced swimming test in mice: a review of antidepressant activity. Psychopharmacology. 177 (3), 245-255 (2004).
  11. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: Review of pharmacological and genetic studies in mice. Neurosci Biobehav Rev. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  12. Han, Y., et al. Trafficking and gating of hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channels are regulated by interaction with tetratricopeptide repeat-containing Rab8b-interacting protein (TRIP8b) and cyclic AMP at distinct sites. J Biol Chem. 286 (23), 20823-20834 (2011).
  13. Hu, L., Santoro, B., Saponaro, A., Liu, H., Moroni, A., Siegelbaum, S. Binding of the auxiliary subunit TRIP8b to HCN channels shifts the mode of action of cAMP. J Gen Physiol. 142 (6), 599-612 (2013).
  14. Saponaro, A., et al. Structural basis for the mutual antagonism of cAMP and TRIP8b in regulating HCN channel function. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (40), 14577-14582 (2014).
  15. Bankston, J. R., Camp, S. S., DiMaio, F., Lewis, A. S., Chetkovich, D. M., Zagotta, W. N. Structure and stoichiometry of an accessory subunit TRIP8b interaction with hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channels. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (20), 7899-7904 (2012).
  16. Gatto, G. J., Geisbrecht, B. V., Gould, S. J., Berg, J. M. Peroxisomal targeting signal-1 recognition by the TPR domains of human PEX5. Nat Struct Biol. 7 (12), 1091-1095 (2000).
  17. Owicki, J. C. Fluorescence polarization and anisotropy in high throughput screening: perspectives and primer. J Biomol Screen. 5 (5), 297-306 (2000).
  18. Smith, D. S., Eremin, S. A. Fluorescence polarization immunoassays and related methods for simple, high-throughput screening of small molecules. Anal Bioanal Chem. 391 (5), 1499-1507 (2008).
  19. Roehrl, M. H. A., Wang, J. Y., Wagner, G. A general framework for development and data analysis of competitive high-throughput screens for small-molecule inhibitors of protein-protein interactions by fluorescence polarization. 生物化学. 43 (51), 16056-16066 (2004).
  20. Arkin, M. R., Wells, J. A. Small-molecule inhibitors of protein-protein interactions: progressing towards the dream. Nat Rev Drug Discov. 3 (4), 301-317 (2004).
  21. Zhang, J., Chung, T., Oldenburg, K. A Simple Statistical Parameter for Use in Evaluation and Validation of High Throughput Screening Assays. J Biomol Screen. 4 (2), 67-73 (1999).
  22. Eglen, R. M., et al. The use of AlphaScreen technology in HTS: current status. Curr Cheml Genomics. 1 (1), 2-10 (2008).
  23. Lehninger, A. L., Nelson, D. L., Cox, M. M. . Lehninger Principles of Biochemistry. , (2000).
  24. Kim, C. S., Chang, P. Y., Johnston, D. Enhancement of dorsal hippocampal activity by knockdown of HCN1 channels leads to anxiolytic- and antidepressant-like behaviors. Neuron. 75 (3), 503-516 (2012).
  25. Wahl-Schott, C., Biel, M. HCN channels: structure, cellular regulation and physiological function. Cell Mol Life Sci. 66 (3), 470-494 (2009).
  26. DeBerg, H. A., Bankston, J. R., Rosenbaum, J. C., Brzovic, P. S., Zagotta, W. N., Stoll, S. Structural Mechanism for the Regulation of HCN Ion Channels by the Accessory Protein TRIP8b. Structure. 23 (4), 734-744 (2015).
  27. Weiss, J. N. The Hill equation revisited: uses and misuses. FASEB J. 11 (11), 835-841 (1997).
  28. Prinz, H. Hill coefficients, dose-response curves and allosteric mechanisms. J Chem Biol. 3 (1), 37-44 (2009).
  29. Pollard, T. D. A Guide to Simple and Informative Binding Assays. Mol Biol Cell. 21 (23), 4061-4067 (2010).
  30. Rossi, A. M., Taylor, C. W. Analysis of protein-ligand interactions by fluorescence polarization. Nat Protoc. 6 (3), (2011).
  31. Ryan, A. J., Gray, N. M., Lowe, P. N., Chung, C. -. W. Effect of Detergent on “Promiscuous” Inhibitors. J Med Chem. 46 (16), 3448-3451 (2003).
  32. McGovern, S. L., Caselli, E., Grigorieff, N., Shoichet, B. K. A common mechanism underlying promiscuous inhibitors from virtual and high-throughput screening. J Med Chem. 45 (8), 1712-1722 (2002).
  33. Hertzberg, R. P., Pope, A. J. High-throughput screening: new technology for the 21st century. Curr Opin Chem Biol. 4 (4), 445-451 (2000).
  34. Sundberg, S. A. High-throughput and ultra-high-throughput screening: solution-and cell-based approaches. Curr Opin Biotechnol. 11 (1), (2000).
check_url/cn/54540?article_type=t

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Han, Y., Lyman, K. A., Clutter, M., Schiltz, G. E., Ismail, Q., Cheng, X., Luan, C., Chetkovich, D. M. Method for Identifying Small Molecule Inhibitors of the Protein-protein Interaction Between HCN1 and TRIP8b. J. Vis. Exp. (117), e54540, doi:10.3791/54540 (2016).

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