Summary

Живой клетки изображений TGF-β/Smad3 сигнализируя Pathway In Vitro и In Vivo с помощью системы репортер аденовирус

Published: July 30, 2018
doi:

Summary

Здесь мы представляем протокол для живых клеток изображений сигнальной деятельности TGF-β/Smad3 с помощью системы репортер аденовируса. Эта система отслеживает транскрипционный анализ активности в режиме реального времени и может быть применен как отдельные клетки в пробирке и в живых животныхмодели.

Abstract

Преобразование сигнализации фактор роста β (TGF-β) регулирует многие важные функции, необходимые для клеточного гомеостаза и обычно встречаются оверэкспрессировали во многих заболеваний, включая рак. TGF-β сильно вовлечен в метастазов во время поздней стадии рака прогрессии, активация подмножество мигрирующих и инвазивные опухолевых клеток. Текущие методы для сигнализации путь анализа сосредоточены на конечной модели, которые часто пытаются измерить сигнализации пост hoc биологических события и не отражает прогрессивный характер болезни. Здесь мы демонстрируем конкретного системы Роман аденовирус репортер на сигнальный путь TGF-β/Smad3, который может обнаружить transcriptional активации в живых клетках. Использование Ad-CAGA12-Td-том репортер, мы можем достичь 100% заболеваемости MDA-MB-231 клеток в течение 24 ч в пробирке. Использование флуоресцентных репортер позволяет для изображений живой одиночных камер в режиме реального времени с прямой идентификации транскрипционно активных клеток. Стимуляция зараженных клеток с TGF-β отображается только подмножество ячеек, которые транскрипционно активны и участвовать в конкретных биологических функций. Этот подход позволяет высокая специфичность и чувствительность на уровне одной ячейки для улучшения понимания биологических функций, связанных с TGF-β сигнализации, в пробирке. Smad3, транскрипционный анализ деятельности также может быть сообщено в естественных условиях в режиме реального времени через применение Ad-CAGA12– Люк репортер. Ad-CAGA12– Люк может быть измерена в так же, как традиционные стабильно transfected Люцифераза клеточных линий. Smad3 транскрипционный анализ активности клеток имплантированных в естественных условиях можно проанализированы через обычные ИВИС изображений и контролировать жить во время прогрессии опухоли, предоставляя уникальную возможность заглянуть в динамике TGF-β сигнальный путь. Наш протокол описывает систему доставки выгодно репортер позволяет для быстрой визуализации высок объём живой клетки, сигнальные пути в пробирке и в естественных условиях. Этот метод может быть расширен спектр изображения на основе анализов и представляет как чувствительных и воспроизводимый подход для базовой биологии и терапевтические развития.

Introduction

Трансформирующий фактор роста β (TGF-β) является важным цитокина, замешанных в развитии человеческого потенциала, что сигналы через гетеродимерная комплекс, состоящий из типа II и I типа рецепторов1. Привязка к типу II рецепторов приводит к вербовки и фосфорилирование типа я рецептор, который в свою очередь фосфорилирует вниз по течению Smad2/3 белки2,3. Эти активирован Smad2/3 белки привязку к Smad4, образуя комплекс, который translocates в ядро и регулирует транскрипцию генов4. В условиях гомеостатических TGF-β/Smad сигнализации жестко регулируется; Однако во многих заболеваний, сигнальный путь является дерегулирование и часто оверэкспрессировали ведет к прогрессированию заболевания5,6,7. Недавние исследования показали, что клеточный ответ на TGF-β разнородные и субпопуляций TGF-β/Smad активные клетки отвечают за биологические функции в обнаруживавшие время8,9. Общий анализ клеточных TGF-β/Smad сигнализации включает в себя использование фиксированной конечной точки анализов, которые предоставляют только снимок клеточную активность и часто quantitate средний эффект TGF-β/Smad10. Однако, эти методы не могут точно представлять молекулярных поведения TGF-β/Smad сигнализации в физиологическом состоянии во время болезни. Анализ на основе изображений живых клеток захватить динамику клеточного и биологических процессов с пространственной и временной понимания.

Нашей целью было разработать чувствительный метод высокой пропускной способностью для живых клеток изображений TGF-β/Smad сигнализацию с помощью реагентов на основе аденовирусы. Здесь мы заражены линии клеток рака молочной железы человека MDA-MB-231 аденовирус, выражая Smad3 CAGA мотив привязки последовательности и Люцифераза (Люк) или Td-томатный (Td-Tom) Репортер ген. Аденовирусных репортер системы обеспечивают быстрый и дешевый метод для плазмида введение, которое может привести к инфекции 100% показатель в рак клеточных линий. Аденовирусных репортер системы также были успешно применены к клеточных линий, которые трудно transfect с обычными плазмида11. В этом протоколе мы будем описывать воспроизводимость и неинвазивной процесс для достижения живой клетки изображений TGFβ/Smad сигнальный путь как в естественных условиях , так и в пробирке.

Protocol

Все эксперименты на животных были утверждены в университете Мельбурна животных по этике. Примечание: Последовательность, строительство и поколение протокол для аденовирусных векторы pAd-ЦМВ-Td-том,Ad-ЦМВ-GFP p и pAd-CAGA12- Люк/Td-том были ранее описанных<sup class="x…

Representative Results

Жить в одну ячейку, изображений в пробирке Чтобы точно оценить активации TGF-β/Smad сигнализации в одиночных клетках с использованием реагентов аденовирус основе, важно сначала определить оптимальную кратность инфекции (МВД) для каждо…

Discussion

Мы разработали технику для в реальном времени изображений TGF-β/Smad3 сигнализации в одном живых клеток. Используя этот новый метод, мы ранее определили суб популяция клеток с динамичной деятельности transcriptional TGF-β/Smad3, который был связан с расширенной вторжения и миграции8. Этот …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана субсидии от национального здравоохранения и медицинских исследований Совета (NHMRC) H-JZ. TMBW является получателем Австралии аспирантов награду от правительства Австралии и Энн Хендерсон Top-Up стипендию от здравоохранения Австралии Ротари в партнере с Ротари Templestowe и пообедать на излечение.

Materials

DMEM ThermoFisher 1881024 Warm in 37 °C waterbath before use
Foetal Bovine Serum Scientifix Life FBS500-S Heat inactivated before use
Recombinant Human TGF-β1 PEPROTECH 100-21 Aliquot in DDW to make final concentration at 10 mg/mL
Hoechst-33258 Tocris Bioscience 5117 Dilute in to PBS to make final concentration at 1 μL/mL
Luciferase Reporter Assay Kit Promega 197897 Dilute 5x in PBS before use
Luminometer Promega 9100-002
Phase contrast fluorescence microscopy OLYMPUS IX50
Centrifuge eppendorf 5810 R
VivoGl Luciferin Promega P1041
IVIS Lumina III In Vivo Imaging System PerkinElmer CLS136334
0.5% Trypsin-EDTA (10x) ThermoFisher 15400-054 Diltue to 0.05% (1x) in PBS
Cell Culture Lysis 5x Reagent Promega E153A Dilute to 1x in DDW
10% Formalin Sigma-Aldrich F5554-4L
HEK 293A ThermoFisher R70507
MDA-MB-231 ATCC CRM-HTB-26
PRKDC-SCID Animal Resources Centre SCIDF6
Matrigel Corning 354234
Isoflurane Zoetis 26675-46-7
Ethanol Chem-supply EA043-10L-P
Refresh Night Time Allergan 1750D Lubricating Eye Ointment
Solution Composition
Phosphate-Buffered Saline (PBS) NaH2PO4.2H2O (4 mM); NaHPO4 (16 mM); NaCl (0.12M)
FBS-DMEM  5% heat inactivated FBS; 10 μg/mL penicillin; 100 μg/mL streptomycin

References

  1. Massague, J., Like, B. Cellular receptors for type beta transforming growth factor. Ligand binding and affinity labeling in human and rodent cell lines. The Journal of biological chemistry. 260, 2636-2645 (1985).
  2. Xu, L., Chen, Y. G., Massague, J. The nuclear import function of Smad2 is masked by SARA and unmasked by TGFbeta-dependent phosphorylation. Nature Cell Biology. 2, 559-562 (2000).
  3. Massague, J. TGFbeta signaling in context. Nature reviews. Molecular cell biology. 13, 616-630 (2012).
  4. Massague, J., Seoane, J., Wotton, D. Smad transcription factors. Genes Development. 19, 2783-2810 (2005).
  5. Blobe, G. C., Schiemann, W. P., Lodish, H. F. Role of transforming growth factor beta in human disease. The New England journal of medicine. , 1350-1358 (2000).
  6. Zhu, H. J., Burgess, A. W. Regulation of transforming growth factor-beta signaling. Molecular cell biology research communications : MCBRC. 4, 321-330 (2001).
  7. Massagué, J. TGFβ in Cancer. Cell. 134, 215-230 (2008).
  8. Luwor, R. B., et al. Single live cell TGF-beta signaling imaging: breast cancer cell motility and migration is driven by sub-populations of cells with dynamic TGF-beta-Smad3 activity. Molecular cancer. 14, 50 (2015).
  9. Clarke, D. C., Liu, X. Decoding the quantitative nature of TGF-beta/Smad signaling. Trends in Cell Biol.ogy. 18, 430-442 (2008).
  10. Zhao, R., Li, N., Xu, J., Li, W., Fang, X. Quantitative single-molecule study of TGF-beta/Smad signaling. Acta Biochimica et Biophysica Sinica (Shanghai). 50, 51-59 (2017).
  11. Luwor, R. B., et al. New reagents for improved in vitro and in vivo examination of TGF-beta signalling. Growth factors. 29, 211-218 (2011).
  12. Dennler, S., et al. Direct binding of Smad3 and Smad4 to critical TGF beta-inducible elements in the promoter of human plasminogen activator inhibitor-type 1 gene. EMBO J. 17, 3091-3100 (1998).
  13. Luwor, R. B., et al. Targeting Stat3 and Smad7 to restore TGF-beta cytostatic regulation of tumor cells in vitro and in vivo. Oncogene. 32, 2433-2441 (2013).
  14. Reed, L. J., Muench, H. A Simple Method of Estimating Fifty Per Cent Endpoints. American Journal of Epidemiology. 27, 493-497 (1938).
  15. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature methods. 9, 671-675 (2012).
  16. Dennler, S., Prunier, C., Ferrand, N., Gauthier, J. M., Atfi, A. c-Jun inhibits transforming growth factor beta-mediated transcription by repressing Smad3 transcriptional activity. The Journal of biological chemistry. 275, 28858-28865 (2000).
  17. Fink, S. P., Mikkola, D., Willson, J. K., Markowitz, S. TGF-beta-induced nuclear localization of Smad2 and Smad3 in Smad4 null cancer cell lines. Oncogene. 22, 1317-1323 (2003).
  18. Zinn, K. R., et al. Noninvasive bioluminescence imaging in small animals. ILAR J. 49, 103-115 (2008).
  19. Kim, T. K., Eberwine, J. H. Mammalian cell transfection: the present and the future. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 397, 3173-3178 (2010).
  20. Russell, W. C. Update on adenovirus and its vectors. Journal of General Virology. 81, 2573-2604 (2000).
  21. Lee, C. S., et al. Adenovirus-Mediated Gene Delivery: Potential Applications for Gene and Cell-Based Therapies in the New Era of Personalized Medicine. Genes & Diseases. 4, 43-63 (2017).
  22. Wang, I. I., Huang, I. I. Adenovirus technology for gene manipulation and functional studies. Drug Discovery Today. 5, 10-16 (2000).
  23. Kochanek, S., et al. A new adenoviral vector: Replacement of all viral coding sequences with 28 kb of DNA independently expressing both full-length dystrophin and beta-galactosidase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93, 5731-5736 (1996).
  24. Wang, Q., Finer, M. H. Second-generation adenovirus vectors. Nature Medicine. 2, 714-716 (1996).
  25. Durham, H. D., et al. Toxicity of replication-defective adenoviral recombinants in dissociated cultures of nervous tissue. Experimental Neurology. 140, 14-20 (1996).
  26. MacKenzie, K. L., Hackett, N. R., Crystal, R. G., Moore, M. A. Adenoviral vector-mediated gene transfer to primitive human hematopoietic progenitor cells: assessment of transduction and toxicity in long-term culture. Blood. 96, 100-108 (2000).
  27. Zhang, W. W., Koch, P. E., Roth, J. A. Detection of wild-type contamination in a recombinant adenoviral preparation by PCR. Biotechniques. 18, 444-447 (1995).
  28. Choi, Y., Chang, J. Viral vectors for vaccine applications. Clinical and Experimental Vaccine Research. 2, 97-105 (2013).
  29. de Cassan, S. C., et al. The requirement for potent adjuvants to enhance the immunogenicity and protective efficacy of protein vaccines can be overcome by prior immunization with a recombinant adenovirus. Journal of immunology. 187, 2602-2616 (2011).
  30. Krasnykh, V. N., Mikheeva, G. V., Douglas, J. T., Curiel, D. T. Generation of recombinant adenovirus vectors with modified fibers for altering viral tropism. Journal of Virology. 70, 6839-6846 (1996).
  31. Wickham, T. J., et al. Increased in vitro and in vivo gene transfer by adenovirus vectors containing chimeric fiber proteins. Journal of Virology. 71, 8221-8229 (1997).
  32. Smith, F., Jacoby, D., Breakefield, X. O. Virus vectors for gene delivery to the nervous system. Restorative neurology and neuroscience. 8, 21-34 (1995).
  33. Zhou, F., et al. Nuclear receptor NR4A1 promotes breast cancer invasion and metastasis by activating TGF-beta signalling. Nature communications. 5, 3388 (2014).
check_url/cn/57926?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chen, H., Ware, T. M., Iaria, J., Zhu, H. Live Cell Imaging of the TGF- β/Smad3 Signaling Pathway In Vitro and In Vivo Using an Adenovirus Reporter System. J. Vis. Exp. (137), e57926, doi:10.3791/57926 (2018).

View Video