Summary

Бесклеточной и клеточных легких модель для изучения метастазов опухоли

Published: August 19, 2018
doi:

Summary

Здесь мы представляем собой протокол для ex vivo легких Рак модель, которая имитирует шаги прогрессии опухоли и помогает изолировать первичной опухоли, циркулирующих клеток опухоли и метастатического поражения.

Abstract

Это сложно изолировать опухолевых клеток в различных точках прогрессии опухоли. Мы создали ex vivo легких модель, которая может показать взаимодействие опухолевых клеток с естественным матрицы и постоянный поток питательных веществ, а также модель, которая показывает взаимодействие опухолевых клеток с нормальной клеточных компонентов и природные матрицы. Бесклеточной ex vivo легких модель создается путем изоляции блока легочное сердце крысы и удаления всех клеток, с помощью процесса decellularization. Правого главного бронха связана с и опухолевые клетки помещаются в трахею шприца. Клетки двигаться и заполнения левого легкого. Легких затем помещается в биореакторе, где легочной артерии получает постоянный поток средств массовой информации в замкнутом контуре. Опухоль, выращенных на левого легкого является первичной опухоли. Опухолевые клетки, которые изолированы в оборотных средствах циркулируют опухолевые клетки и клетки тумора в правом легком, метастатического поражения. Легких сотовой ex vivo модель создается путем пропуска decellularization процесса. Каждая модель может использоваться для ответа на вопросы различных исследований.

Introduction

Метастазами рака является виновником за большинство случаев смерти, связанных с раком и создает конечной задачей в усилиях по борьбе с раком. Общая цель этого метода заключается в разработке протокола для четырехмерное (4-D) ячейку культуры, которая имеет измерение потока, помимо роста трехмерной (3-D) клеток. Он представляет собой три этапа процесса метастазы [т.е., первичной опухоли, циркулирующих клеток опухоли (CTCs) и метастатические поражения].

За последние три десятилетия ученые всего мира дали беспрецедентную богатство информации, чтобы понять механизмы, лежащие в основе метастатическим прогрессии в другой раках, которые улучшили перспективы лечения или выживаемости без прогрессирования. Клиническое ведение некоторых видов рака, таких как рак молочной железы, значительно улучшились1; Однако некоторые виды рака, таких как рак легких, еще бедными выживания2. In vitro и in vivo Животные модели играют важную роль в создании новых понимание механизмов, лежащих в основе развития болезни. В последние несколько лет мобильный линии производные ксенотрасплантатов (CDX) и пациент производные ксенотрасплантатов (PDX) были больше интереса, как они сохраняют многие соответствующие особенности первичной опухоли человека3, например Кинетика роста, гистологические особенности, поведенческих характеристики и ответ на терапию. Однако каждая модель имеет свои ограничения, чтобы понять механизм формирования КТК и метастазов в далекой орган4,5,6.

Недавно мы разработали модель 4-D ex vivo рака легких, используя понятие органа реинжиниринга и на основе перфузии клеточной культуры. Она имитирует рост рака легких человека путем формирования конкреций perfusable опухоли, которые растут с течением времени с аналогичных человека рак выделяется белка производство7. Он представляет собой подпись выражение гена, которая предсказывает плохой выживаемости у пациентов с раком, а также показывает терапевтические реакции к регрессии опухоли после лечения цисплатином8,9. Далее модель легких была изменена таким образом, чтобы он может образовать метастатического поражения. ЦОК развиваются от первичной опухоли и intravasate в сосудистую и extravasate в контралатерального легкого сформировать метастатического поражения10. Ген выражение исследования показывают собственный выражение профиль первичной опухоли, ЦОК и метастатических поражений и upregulation подмножество генов, необходимых для фенотип10. Этот метастатического процесса происходит из-за присутствия биологических условий, видел у пациентов с раком. Преимуществом этой модели является наличие естественных матрицы и архитектуры и перфузии питательных веществ, что приводит к образованию опухоли конкреций. Кроме того он также предоставляет возможность для изучения воздействия различных компонентов микроокружения опухоли или наркотиков на опухолевой прогрессии с течением времени. Эта модель может использоваться для расти диапазон клеток рака (рак легких, рак молочной железы, саркомы и т.д.) в лаборатории set-up.

Protocol

Протоколы для экспериментов на животных были утверждены институциональный уход животных и использования Комитетом на Хьюстон методист научно-исследовательский институт и осуществляется в соответствии с все правила, применимые законы, руководящие принципы и политику. 1…

Representative Results

Легких, добываемых из крыса сохраняет нетронутыми сосудистую и альвеолы11 (Рисунок 3А и 3Б). После decellularization компоненты внеклеточного матрикса бесклеточной легких, таких как коллаген, фибронектин и эластина, сохранились11</…

Discussion

4-D ex vivo легких предоставляет возможность для изучения роста опухоли и метастазов в лаборатории set-up. Родной легких матрица представляет собой сложную систему, которая обеспечивает поддержку для нормальной ткани и поддерживает ячеек взаимодействия, взаимодействие клеток матрица, ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

P. мин Ким получил грантовую поддержку от второй Джон W. Kirklin исследований стипендии, Американская ассоциация грудной хирургии, Грэм исследовательский фонд, Хьюстон методистской специальности врач группы Грант и Майкл м. и Джоанн H. конуса исследований премии. Мы благодарим Энн Сайкин за редактирование язык рукописи.

Materials

Sprague Dowley rat Harlan 206M Male
Chlorhexidine swab Prevantics, NY, USA NDC 10819-1080-1
Heparin Sagent Pharmaceuticals, Schaumburg, IL, USA NDC 25021-400-10
18-gauge needle McMaster Carr, USA 75165A249
2-0 silk tie Ethicon, San Angelo, TX, USA A305H
Masterflex L/S pump Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA EW-07554-80
Masterflex L/S pump head Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA EW-07519-05
Masterflex L/S pump cartridge Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA EW-07519-70
Tygon Tube Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 14171211
MasterFlex Pump tube Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 06598-16
Female luer lock connectors Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 45508-34 75165A249
Male luer lock connectors Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 45513-04
black nylon ring Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA EW-45509-04
Intravenous set CareFusion 41134E
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Fisher Scientific CAS151-21-3
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100-1L
Antibiotics Gibco 15240-062
Silicone oxygenator Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA ABW00011 Saint-GoBain-
Wire mesh 1164610105 Lowes New York Wire
Female luer Lug Style TEE Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 45508-56
Male luer integral lock ring to 200series Barb Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 45518-08
Female luer thread style coupler Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 45508-22
Clave connector ICU Medical 11956
Hi-Flo ™4-way Stopcock w/swivel male luer lock smith Medical MX9341L
MasterFlex Pump tube Cole-Parmer, Vernon Hills, IL, USA 06598-13 for cannula

References

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer Statistics, 2017. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 67 (1), 7-30 (2017).
  2. Torre, L. A., Siegel, R. L., Jemal, A. Lung Cancer Statistics. Advances in Experimental Medicine and Biology. 893, 1-19 (2016).
  3. Lallo, A., Schenk, M. W., Frese, K. K., Blackhall, F., Dive, C. Circulating tumor cells and CDX models as a tool for preclinical drug development. Translational Lung Cancer Research. 6 (4), 397-408 (2017).
  4. Yang, S., Zhang, J. J., Huang, X. Y. Mouse models for tumor metastasis. Methods in Molecular Biology. 928, 221-228 (2012).
  5. Bissell, M. J., Hines, W. C. Why don’t we get more cancer? A proposed role of the microenvironment in restraining cancer progression. Nature Medicine. 17 (3), 320-329 (2011).
  6. Francia, G., Cruz-Munoz, W., Man, S., Xu, P., Kerbel, R. S. Mouse models of advanced spontaneous metastasis for experimental therapeutics. Nature Reviews Cancer. 11 (2), 135-141 (2011).
  7. Mishra, D. K., et al. Human lung cancer cells grown in an ex vivo 3D lung model produce matrix metalloproteinases not produced in 2D culture. PloS One. 7 (9), e45308 (2012).
  8. Vishnoi, M., Mishra, D. K., Thrall, M. J., Kurie, J. M., Kim, M. P. Circulating tumor cells from a 4-dimensional lung cancer model are resistant to cisplatin. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 148 (3), 1056-1063 (2014).
  9. Mishra, D. K., et al. Gene expression profile of A549 cells from tissue of 4D model predicts poor prognosis in lung cancer patients. International Journal of Cancer. Journal International du Cancer. , (2013).
  10. Mishra, D. K., et al. Ex vivo four-dimensional lung cancer model mimics metastasis. The Annals of Thoracic Surgery. 99 (4), 1149-1156 (2015).
  11. Mishra, D. K., et al. Human lung cancer cells grown on acellular rat lung matrix create perfusable tumor nodules. The Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1075-1081 (2012).
  12. Pence, K. A., Mishra, D. K., Thrall, M., Dave, B., Kim, M. P. Breast cancer cells form primary tumors on ex vivo four-dimensional lung model. Journal of Surgical Research. 210, 181-187 (2017).
  13. Mishra, D. K., et al. Human Lung Fibroblasts Inhibit Non-Small Cell Lung Cancer Metastasis in Ex Vivo 4D Model. The Annals of Thoracic Surgery. 100 (4), 1167-1174 (2015).
  14. Mishra, D. K., Miller, R. A., Pence, K. A., Kim, M. P. Small cell and non small cell lung cancer form metastasis on cellular 4D lung model. BMC Cancer. 18 (1), 441 (2018).
check_url/cn/58145?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mishra, D. K., Kim, M. P. Acellular and Cellular Lung Model to Study Tumor Metastasis. J. Vis. Exp. (138), e58145, doi:10.3791/58145 (2018).

View Video