Summary

Op elektroporatie gebaseerde genetische modificatie van primaire menselijke pigmentepitheelcellen met behulp van het Sleeping Beauty Transposon-systeem

Published: February 04, 2021
doi:

Summary

We hebben een protocol ontwikkeld om primaire menselijke pigmentepitheelcellen te transfecteren door elektroporatie met het gen dat codeert voor pigmentepitheel-afgeleide factor (PEDF) met behulp van het Transposon-systeem van Doornroosje (SB). Succesvolle transfectie werd aangetoond door kwantitatieve polymerasekettingreactie (qPCR), immunoblotting en enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA).

Abstract

Onze steeds ouder wordende samenleving leidt tot een groeiende incidentie van neurodegeneratieve ziekten. Tot nu toe zijn de pathologische mechanismen onvoldoende begrepen, waardoor de vaststelling van gedefinieerde behandelingen wordt belemmerd. Celgebaseerde additieve gentherapieën voor de verhoogde expressie van een beschermende factor worden beschouwd als een veelbelovende optie om neurodegeneratieve ziekten, zoals leeftijdsgebonden maculaire degeneratie (AMD), te mediteren. We hebben een methode ontwikkeld voor de stabiele expressie van het gen dat codeert voor pigmentepitheel-afgeleide factor (PEDF), die wordt gekenmerkt als een neuroprotectief en anti-angiogeen eiwit in het zenuwstelsel, in het genoom van primaire menselijke pigmentepitheelcellen (PE) met behulp van het Transposon-systeem van Doornroosje (SB). Primaire PE-cellen werden geïsoleerd uit menselijke donorogen en in cultuur gehouden. Na het bereiken van confluence werden 1 x 104 cellen gesuspendeerd in 11 μL resuspensiebuffer en gecombineerd met 2 μL van een gezuiverde oplossing met 30 ng hyperactief SB (SB100X) transposaseplasmide en 470 ng PEDF transposonplasmide. Genetische modificatie werd uitgevoerd met een capillair elektroporatiesysteem met behulp van de volgende parameters: twee pulsen met een spanning van 1.100 V en een breedte van 20 ms. Getransfecteerde cellen werden overgebracht in kweekplaten met medium aangevuld met foetaal runderserum; antibiotica en antimycotica werden toegevoegd met de eerste medium uitwisseling. Succesvolle transfectie werd aangetoond in onafhankelijk uitgevoerde experimenten. Kwantitatieve polymerasekettingreactie (qPCR) toonde de verhoogde expressie van het PEDF-transgen . PEDF-secretie was significant verhoogd en bleef stabiel, zoals geëvalueerd door immunoblotting en gekwantificeerd door enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). SB100X-gemedieerde overdracht zorgde voor een stabiele PEDF-genintegratie in het genoom van PE-cellen en zorgde voor de continue afscheiding van PEDF, wat van cruciaal belang is voor de ontwikkeling van een celgebaseerde gentoevoegingstherapie voor de behandeling van AMD of andere retinale degeneratieve ziekten. Bovendien wees analyse van het integratieprofiel van het PEDF-transposon in menselijke PE-cellen op een bijna willekeurige genomische verdeling.

Introduction

Gevorderde leeftijd wordt beschreven als het belangrijkste risico voor neurodegeneratieve ziekten. Leeftijdsgebonden maculaire degeneratie (AMD), een polygene ziekte die leidt tot ernstig verlies van het gezichtsvermogen bij patiënten ouder dan 60 jaar, behoort tot de vier meest voorkomende oorzaken van blindheid en slechtziendheid1 en zal naar verwachting toenemen tot 288 miljoen mensen in 20402. Disfuncties van het retinale pigmentepitheel (RPE), een enkele laag dicht opeengepakte cellen tussen de choriocapillaris en de retinale fotoreceptoren, dragen bij aan de pathogenese van AMD. De RPE vervult meerdere taken die essentieel zijn voor een normale retinale functie3 en scheidt een verscheidenheid aan groeifactoren en factoren af die essentieel zijn om de structurele integriteit van het netvlies en de choriocapillaris te behouden, waardoor de overleving van de fotoreceptor wordt ondersteund en een basis wordt gelegd voor de circulatie en de toevoer van voedingsstoffen.

In gezonde ogen is pigmentepitheel-afgeleide factor (PEDF) verantwoordelijk voor het balanceren van de effecten van vasculaire endotheelgroeifactor (VEGF) en beschermt neuronen tegen apoptose, voorkomt proliferatie van endotheelcellen en stabiliseert het capillaire endotheel. Een verschoven VEGF-pedf-verhouding is gerelateerd aan oculaire neovascularisatie, die werd waargenomen in diermodellen 4,5 en in monsters van patiënten met choroïdale neovascularisatie (CNV) als gevolg van AMD en proliferatieve diabetische retinopathie 6,7,8,9,10 . De verhoogde VEGF-concentratie is het doel voor de huidige standaardbehandeling. De anti-VEGF-geneesmiddelen bevacizumab, ranibizumab, aflibercept en, meest recent, brolucizumab verbeteren de gezichtsscherpte bij ongeveer een derde van de CNV-patiënten of stabiliseren het gezichtsvermogen in 90% van de gevallen 11,12,13. De frequente, vaak maandelijkse, intravitreale injecties dragen echter het risico op bijwerkingen14, tasten de therapietrouw van de patiënt aan en vormen een aanzienlijke economische last voor de gezondheidszorgstelsels15. Bovendien reageert een bepaald percentage van de patiënten (2%-20%) niet of slechts slecht op de anti-VEGF-therapie 16,17,18,19. Deze negatieve gelijktijdige factoren vereisen de ontwikkeling van alternatieve behandelingen, bijvoorbeeld intraoculaire implantaten, cel- en/of gentherapeutische benaderingen.

Gentherapie is geëvolueerd als veelbelovende behandeling voor erfelijke en niet-erfelijke ziekten en is bedoeld om niet-functionele gensequenties te herstellen of slecht functionerende te onderdrukken. Voor polygene ziekten, waarbij identificatie en vervanging van de oorzakelijke factoren nauwelijks mogelijk is, streven strategieën naar de continue levering van een beschermende factor. In het geval van AMD zijn verschillende additieve therapieën ontwikkeld, zoals de stabiele expressie van endostatine en angiostatine20, de VEGF-antagonist oplosbare fms-achtige tyrosinekinase-1 (sFLT-1)21,22, het complementregulerende eiwitcluster van differentiatie 59 (CD59)23 of PEDF24,25 . Het oog, en vooral het netvlies, is een uitstekend doelwit voor een op genen gebaseerd medicijn vanwege de gesloten structuur, goede toegankelijkheid, kleine omvang en immuunprivilege, waardoor een gelokaliseerde levering van lage therapeutische doses mogelijk is en transplantaties minder vatbaar zijn voor afstoting. Bovendien maakt het oog niet-invasieve monitoring mogelijk en kan het netvlies worden onderzocht met verschillende beeldvormingstechnieken.

Virale vectoren zijn, vanwege hun hoge transductie-efficiëntie, het belangrijkste voertuig om therapeutische genen in doelcellen af te leveren. Afhankelijk van de gebruikte virale vector zijn echter verschillende bijwerkingen beschreven, zoals immuun- en ontstekingsreacties26, mutagene en oncogene effecten27,28 of verspreiding in andere weefsels29. Praktische beperkingen zijn onder meer een beperkte verpakkingsgrootte30 en moeilijkheden en kosten in verband met de productie van partijen31,32 van klinische kwaliteit. Deze nadelen hebben de verdere ontwikkeling bevorderd van niet-virale, op plasmide gebaseerde vectoren die worden overgedragen via lipo-/polyplexen, echografie of elektroporatie. Genomische integratie van het transgen in het gastheergenoom wordt echter meestal niet bevorderd met plasmidevectoren, wat resulteert in een voorbijgaande expressie.

Transposons zijn natuurlijk voorkomende DNA-fragmenten die hun positie in het genoom veranderen, een kenmerk dat is aangenomen voor gentherapie. Dankzij een actief integratiemechanisme zorgen transposon-gebaseerde vectorsystemen voor een continue en constante expressie van het ingebrachte transgen. Het Sleeping Beauty (SB) transposon, gereconstitueerd uit een oud Tc1/mariner-type transposon gevonden in vis33 en verder verbeterd door moleculaire evolutie resulterend in de hyperactieve variant SB100X34, maakte efficiënte transpositie in verschillende primaire cellen mogelijk en werd gebruikt voor de fenotypische correctie in verschillende ziektemodellen35. Op dit moment zijn 13 klinische onderzoeken gestart met behulp van het SB transposon systeem. Het SB100X transposon systeem bestaat uit twee componenten: het transposon, dat bestaat uit het gen van belang geflankeerd door terminale inverted repeats (TIRs), en het transposase, dat het transposon mobiliseert. Na plasmide-DNA-levering aan de cellen bindt het transposase de TIRs en katalyseert het de excisie en integratie van het transposon in het genoom van de cel.

We hebben een niet-virale celgebaseerde additieve therapie ontwikkeld voor de behandeling van neovasculaire LMD. De aanpak omvat de op elektroporatie gebaseerde insertie van het PEDF-gen in primaire pigmentepitheelcellen (PE) door middel van het SB100X transposonsysteem 36,37,38. De genetische informatie van de transposase en PEDF wordt verstrekt op afzonderlijke plasmiden, waardoor de ideale SB100X-PEDF-transposonverhouding kan worden aangepast. Elektroporatie wordt uitgevoerd met behulp van een op pipet gebaseerd capillair transfectiesysteem dat wordt gekenmerkt door een maximale spleetgrootte tussen de elektroden terwijl hun oppervlak wordt geminimaliseerd. Het apparaat bleek uitstekende transfectiesnelheden te bereiken in een breed scala van zoogdiercellen 39,40,41. Het kleine elektrodeoppervlak zorgt voor een uniform elektrisch veld en vermindert de verschillende bijwerkingen van elektrolyse42.

De anti-angiogene functionaliteit van PEDF uitgescheiden door getransfecteerde pigmentepitheelcellen werd aangetoond in verschillende in vitro experimenten die het kiemen, migreren en apoptose van menselijke navelstrenga-endotheelcellen analyseerden43. Bovendien vertoonde transplantatie van PEDF-getransfecteerde cellen in een konijnenmodel van cornea-neovascularisatie44 en een rattenmodel van CNV 43,45,46 een afname van neovascularisatie.

Hier beschrijven we een gedetailleerd protocol voor de stabiele insertie van het PEDF-gen in primaire menselijke RPE-cellen via het SB100X-transposonsysteem met behulp van een capillair transfectiesysteem. De getransfecteerde cellen werden gedurende 21 dagen in cultuur gehouden en vervolgens geanalyseerd in termen van PEDF-genexpressie door kwantitatieve polymerasekettingreactie (qPCR) en in termen van PEDF-eiwitsecretie door immunoblotting en enzymgebonden immunosorbenttest (ELISA, figuur 1).

Protocol

Menselijke donorogen werden verkregen van de Aachen Cornea Bank van de afdeling Oogheelkunde (Universitair Ziekenhuis RWTH Aachen) na het verkrijgen van geïnformeerde toestemming in overeenstemming met de Protocollen van de Verklaring van Helsinki. Procedures voor het verzamelen en gebruiken van menselijke monsters zijn goedgekeurd door de institutionele ethische commissie. 1. Isolatie van primaire menselijke RPE-cellen Leg steriele beschermende kleding en handschoenen neer. Plaats …

Representative Results

Teelt en elektroporatie van primaire menselijke RPE-cellenWe hebben aangetoond dat het zaaien van een voldoende aantal primaire RPE-cellen van dierlijke oorsprong de teelt en groei mogelijk maakt tot een geïntegreerde monolaag van gepigmenteerde, zeshoekig gevormde cellen 36,37,48. Hun vermogen om tight junctions te vormen, fagocytische activiteit te vertonen en specifieke m…

Discussion

In ons project streven we naar de niet-virale productie van genetisch gemodificeerde primaire menselijke RPE-cellen die voortdurend overexpressie en afscheiding van een effectieve factor om de getransfecteerde cellen te gebruiken als langetermijntherapeutisch middel voor het creëren en onderhouden van een beschermende omgeving. We hebben de introductie vastgesteld van het gen dat codeert voor PEDF, een alomtegenwoordig tot expressie gebracht multifunctioneel eiwit met anti-angiogene en neuroprotectieve functies. Het hie…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door het zevende kaderprogramma van de Europese Unie voor onderzoek, technologische ontwikkeling en demonstratie, subsidieovereenkomst nr. 305134. Zsuzsanna Izsvák werd gefinancierd door de European Research Council, ERC Advanced (ERC-2011-ADG 294742). De auteurs willen Anna Dobias en Antje Schiefer (afdeling Oogheelkunde, Universitair Ziekenhuis RWTH Aachen) bedanken voor uitstekende technische ondersteuning, en de Aachen Cornea Bank (Afdeling Oogheelkunde, Universitair Ziekenhuis RWTH Aachen) voor het verstrekken van de menselijke donorogen.

Materials

Isolation of primary human RPE cells
24-Well Cell Culture Plate Eppendorf, Hamburg, Germany 0030722019
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Colibri Forceps Geuder, Heidelberg, Germany G-18950
Curved Iris Forceps  Geuder, Heidelberg, Germany G-18856
Disposable Scalpel (No. 11) Feather, Osaka, Japan
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Extra Fine Pointed Eye Scissor  Geuder, Heidelberg, Germany G-19405
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Glass Pasteur Pipettes Brand, Wertheim, Germany 747715
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Sterile Drape Lohmann & Rauscher, Rengsdorf, Germany
Sterile Gauze Compress  Fink-Walter, Merchweiler, Germany 321063
Sterile Gloves Sempermed, Wien, Austria
Sterile Petri Dish (Falcon 60 mm x 15 mm) Corning, Corning, NY 351007
Sterile Surgical Gown Halyard Health, Alpharetta, GA
Straight Iris Forceps  Geuder, Heidelberg, Germany G-18855
Electroporation of primary human RPE cells
10 mM Tris-HCl (pH 8.5)
12-Well Cell Culture Plate Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 150628
24-Well Cell Culture Plate Eppendorf, Hamburg, Germany 0030722019
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (1.5 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Inverted Microscope Leica Mikrosysteme, Wetzlar, Germany Leica DMi8
Microvolume Spectrophotometer (NanoDrop Spectrophotometer) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA
Capillary Transfection System (Neon Transfection System) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA MPK5000
Neon Transfection System 10 µL Kit Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA MPK1096
Hemocytometer (Neubauer Chamber) Paul Marienfeld, Lauda-Königshofen, Germany 0640110
PBS Dulbecco w/o Ca2+ w/o Mg2+ Biochrom, Berlin, Germany L182-50
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (10 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (200 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Plasmid Maxi Kit Qiagen, Hilden, Germany 12163
Single Channel Pipette (0.1-10 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (10-200 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Trypan Blue Solution Merck, Darmstadt, Germany T8154
Trypsin-EDTA (0,05 %) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 25300054
Analyses of transfected primary human RPE cells
10% SDS-Polyacrylamide Gel
1x Incubation Buffer (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 10 mM imidazole, pH 8.0)
2x SDS Sample Buffer
4x Incubation Buffer (200 mM NaH2PO4, 1.2 M NaCl, 40 mM imidazole, pH 8.0)
Amersham Protran Supported 0.2 µm Nitrocellulose Blotting Membrane Cytiva, Marlborough, MA 10600015
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Anti-PEDF Antibodies (Rabbit Polyclonal) BioProducts, Middletown, MD AB-PEDF1
Anti-Penta-His Antibodies (Mouse Monoclonal) Qiagen, Hilden, Germany 34660
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Elution Buffer (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 250 mM imidazole, pH 8.0) 
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Hemocytometer (Neubauer Chamber) Paul Marienfeld, Lauda-Königshofen, Germany 0640110
Horseradish Peroxidase-Conjugated Anti-Mouse Antibodies (Rabbit Polyclonal) Agilent Dako, Santa Clara, CA P0260
Horseradish Peroxidase-Conjugated Anti-Rabbit Antibodies (Goat Polyclonal) Abcam, Cambridge, United Kingdom ab6721
Human PEDF ELISA Kit  BioProducts, Middletown, MD PED613
LAS-3000 Imaging System Fujifilm, Minato, Japan
LightCycler 1.2 Instrument Roche Life Science, Penzberg, Germany
LightCycler FastStart DNA Master SYBR Green I Roche Life Science, Penzberg, Germany 12239264001
LightCycler Capillaries (20 μl) Roche Life Science, Penzberg, Germany 4929292001
Microvolume Spectrophotometer (NanoDrop Spectrophotometer) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA
Mini-PROTEAN Tetra Cell Casting Module Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1658015
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoresis Cell for Mini Precast Gels, 4-gel Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1658004
Ni-NTA Superflow Qiagen, Hilden, Germany 30410
PageRuler Prestained Protein Ladder Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 26616
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (10 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (200 µL) Starlab, Hamburg, Germany
PowerPac Basic Power Supply Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1645050
QIAamp DNA Mini Kit Qiagen, Hilden, Germany 51304
Reverse Transcription System  Promega, Madison, WI A3500
RNase-Free DNase Set Qiagen, Hilden, Germany 79254
RNeasy Mini Kit  Qiagen, Hilden, Germany 74104
Rocking Shaker Cole-Parmer, Staffordshire, United Kingdom SSM3
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (1.5 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (2.0 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (0.1-10 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (10-200 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Trans-Blot Turbo Transfer System Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1704150
Trypan Blue Solution Merck, Darmstadt, Germany T8154
Trypsin-EDTA (0,05 %) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 25300054

References

  1. James, S. L., et al. national incidence, prevalence, and years lived with disability for 354 diseases and injuries for 195 countries and territories, 1990-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. 392 (10159), 1789-1858 (2018).
  2. Wong, W. L., et al. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Global Health. 2 (2), 106-116 (2014).
  3. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiological Reviews. 85 (3), 845-881 (2005).
  4. Chan, C. K., et al. Differential expression of pro- and antiangiogenic factors in mouse strain-dependent hypoxia-induced retinal neovascularization. Laboratory Investigation. 85 (6), 721-733 (2005).
  5. Gao, G., et al. Unbalanced expression of VEGF and PEDF in ischemia-induced retinal neovascularization. FEBS Letters. 489 (2-3), 270-276 (2001).
  6. Bhutto, I. A., et al. Pigment epithelium-derived factor (PEDF) and vascular endothelial growth factor (VEGF) in aged human choroid and eyes with age-related macular degeneration. Experimental Eye Research. 82 (1), 99-110 (2006).
  7. Holekamp, N. M., Bouck, N., Volpert, O. Pigment epithelium-derived factor is deficient in the vitreous of patients with choroidal neovascularization due to age-related macular degeneration. American Journal of Ophthalmology. 134 (2), 220-227 (2002).
  8. Kolomeyer, A. M., Sugino, I. K., Zarbin, M. A. Characterization of conditioned media collected from aged versus young human eye cups. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (8), 5963-5972 (2011).
  9. Li, X., et al. The significance of the increased expression of phosphorylated MeCP2 in the membranes from patients with proliferative diabetic retinopathy. Scientific Reports. 6, 32850 (2016).
  10. Mohan, N., Monickaraj, F., Balasubramanyam, M., Rema, M., Mohan, V. Imbalanced levels of angiogenic and angiostatic factors in vitreous, plasma and postmortem retinal tissue of patients with proliferative diabetic retinopathy. Journal of Diabetes and its Complications. 26 (5), 435-441 (2012).
  11. Empeslidis, T., et al. How successful is switching from Bevacizumab or Ranibizumab to Aflibercept in Age-Related Macular Degeneration? A systematic overview. Advances in Therapy. 36 (7), 1532-1548 (2019).
  12. Solomon, S. D., Lindsley, K., Vedula, S. S., Krzystolik, M. G., Hawkins, B. S. Anti-vascular endothelial growth factor for neovascular age-related macular degeneration. Cochrane Database of Systematic Reviews. 3, (2019).
  13. Dugel, P. U., et al. phase 3, multicenter, randomized, double-masked trials of brolucizumab for neovascular age-related macular degeneration. Ophthalmology. 127 (1), 72-84 (2020).
  14. Falavarjani, K. G., Nguyen, Q. D. Adverse events and complications associated with intravitreal injection of anti-VEGF agents: a review of literature. Eye. 27 (7), 787-794 (2013).
  15. Jaffe, D. H., Chan, W., Bezlyak, V., Skelly, A. The economic and humanistic burden of patients in receipt of current available therapies for nAMD. Journal of Comparative Effectiveness Research. 7 (11), 1125-1132 (2018).
  16. Eghoj, M. S., Sorensen, T. L. Tachyphylaxis during treatment of exudative age-related macular degeneration with ranibizumab. British Journal of Ophthalmology. 96 (1), 21-23 (2012).
  17. Forooghian, F., Cukras, C., Meyerle, C. B., Chew, E. Y., Wong, W. T. Tachyphylaxis after intravitreal bevacizumab for exudative age-related macular degeneration. Retina – The Journal of Retinal and Vitreous Diseases. 29 (6), 723-731 (2009).
  18. Otsuji, T., et al. Initial non-responders to ranibizumab in the treatment of age-related macular degeneration (AMD). Clinical Ophthalmology. 7, 1487-1490 (2013).
  19. Zuber-Laskawiec, K., Kubicka-Trzaska, A., Karska-Basta, I., Pociej-Marciak, W., Romanowska-Dixon, B. Non-responsiveness and tachyphylaxis to anti-vascular endothelial growth factor treatment in naive patients with exudative age-related macular degeneration. Journal of Physiology and Pharmacology. 70 (5), (2019).
  20. Campochiaro, P. A., et al. Lentiviral vector gene transfer of endostatin/angiostatin for macular degeneration (GEM) study. Human Gene Therapy. 28 (1), 99-111 (2017).
  21. Constable, I. J., et al. Phase 2a randomized clinical trial: safety and post hoc analysis of subretinal rAAV.sFLT-1 for wet age-related macular degeneration. EBioMedicine. 14, 168-175 (2016).
  22. Rakoczy, E. P., et al. Three-year follow-up of phase 1 and 2a rAAV.sFLT-1 subretinal gene therapy trials for exudative age-related macular degeneration. American Journal of Ophthalmology. 204, 113-123 (2019).
  23. Kumar-Singh, R. The role of complement membrane attack complex in dry and wet AMD – from hypothesis to clinical trials. Experimental Eye Research. 184, 266-277 (2019).
  24. Campochiaro, P. A., et al. Adenoviral vector-delivered pigment epithelium-derived factor for neovascular age-related macular degeneration: results of a phase I clinical trial. Human Gene Therapy. 17 (2), 167-176 (2006).
  25. Campochiaro, P. A. Gene transfer for neovascular age-related macular degeneration. Human Gene Therapy. 22 (5), 523-529 (2011).
  26. Ahi, Y. S., Bangari, D. S., Mittal, S. K. Adenoviral vector immunity: its implications and circumvention strategies. Current Gene Therapy. 11 (4), 307-320 (2011).
  27. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. New England Journal of Medicine. 363 (4), 355-364 (2010).
  28. Howe, S. J., et al. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. Journal of Clinical Investigation. 118 (9), 3143-3150 (2008).
  29. Stieger, K., et al. Subretinal delivery of recombinant AAV serotype 8 vector in dogs results in gene transfer to neurons in the brain. Molecular Therapy. 16 (5), 916-923 (2008).
  30. Tornabene, P., Trapani, I. Can adeno-associated viral vectors deliver effectively large genes. Human Gene Therapy. 31 (1-2), 47-56 (2020).
  31. Ayuso, E. Manufacturing of recombinant adeno-associated viral vectors: new technologies are welcome. Molecular Therapy – Methods & Clinical Development. 3, 15049 (2016).
  32. van der Loo, J. C., Wright, J. F. Progress and challenges in viral vector manufacturing. Human Molecular Genetics. 25, 42-52 (2016).
  33. Ivics, Z., Hackett, P. B., Plasterk, R. H., Izsvak, Z. Molecular reconstruction of Sleeping Beauty, a Tc1-like transposon from fish, and its transposition in human cells. Cell. 91 (4), 501-510 (1997).
  34. Mates, L., et al. Molecular evolution of a novel hyperactive Sleeping Beauty transposase enables robust stable gene transfer in vertebrates. Nature Genetics. 41 (6), 753-761 (2009).
  35. Izsvak, Z., Hackett, P. B., Cooper, L. J., Ivics, Z. Translating Sleeping Beauty transposition into cellular therapies: victories and challenges. Bioessays. 32 (9), 756-767 (2010).
  36. Thumann, G., et al. High efficiency non-viral transfection of retinal and iris pigment epithelial cells with pigment epithelium-derived factor. Gene Therapy. 17 (2), 181-189 (2010).
  37. Johnen, S., et al. Sleeping Beauty transposon-mediated transfection of retinal and iris pigment epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (8), 4787-4796 (2012).
  38. Thumann, G., et al. Engineering of PEDF-expressing primary pigment epithelial cells by the SB transposon system delivered by pFAR4 plasmids. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 6, 302-314 (2017).
  39. Abdul Halim, N. S., Fakiruddin, K. S., Ali, S. A., Yahaya, B. H. A comparative study of non-viral gene delivery techniques to human adipose-derived mesenchymal stem cell. International Journal of Molecular Sciences. 15 (9), 15044-15060 (2014).
  40. Ahlemeyer, B., Vogt, J. F., Michel, V., Hahn-Kohlberger, P., Baumgart-Vogt, E. Microporation is an efficient method for siRNA-induced knockdown of PEX5 in HepG2 cells: evaluation of the transfection efficiency, the PEX5 mRNA and protein levels and induction of peroxisomal deficiency. Histochemistry and Cell Biology. 142 (5), 577-591 (2014).
  41. May, R. D., et al. Efficient nonviral transfection of primary intervertebral disc cells by electroporation for tissue engineering application. Tissue Engineering Part C – Methods. 23 (1), 30-37 (2017).
  42. Kim, J. A., et al. A novel electroporation method using a capillary and wire-type electrode. Biosensors & Bioelectronics. 23 (9), 1353-1360 (2008).
  43. Johnen, S., et al. Antiangiogenic and neurogenic activities of Sleeping Beauty-mediated PEDF-transfected RPE cells in vitro and in vivo. Biomed Research International. 2015, 863845 (2015).
  44. Kuerten, D., et al. Transplantation of PEDF-transfected pigment epithelial cells inhibits corneal neovascularization in a rabbit model. Graefes Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 253 (7), 1061-1069 (2015).
  45. Garcia-Garcia, L., et al. Long-term PEDF release in rat iris and retinal epithelial cells after Sleeping Beauty transposon-mediated gene delivery. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 9, 1-11 (2017).
  46. Hernandez, M., et al. Preclinical evaluation of a cell-based gene therapy using the Sleeping Beauty transposon system in choroidal neovascularization. Molecular Therapy – Methods & Clinical Development. 15, 403-417 (2019).
  47. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  48. Johnen, S., et al. Presence of xenogenic mouse RNA in RPE and IPE cells cultured on mitotically inhibited 3T3 fibroblasts. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (5), 2817-2824 (2011).
  49. Gogol-Doring, A., et al. Genome-wide profiling reveals remarkable parallels between insertion site selection properties of the MLV retrovirus and the piggyBac transposon in primary human CD4(+) T cells. Molecular Therapy. 24 (3), 592-606 (2016).
  50. Holstein, M., et al. Efficient non-viral gene delivery into human hematopoietic stem cells by minicircle Sleeping Beauty transposon vectors. Molecular Therapy. 26 (4), 1137-1153 (2018).
  51. Moldt, B., et al. Comparative genomic integration profiling of Sleeping Beauty transposons mobilized with high efficacy from integrase-defective lentiviral vectors in primary human cells. Molecular Therapy. 19 (8), 1499-1510 (2011).
  52. Yant, S. R., et al. High-resolution genome-wide mapping of transposon integration in mammals. Molecular and Cellular Biology. 25 (6), 2085-2094 (2005).
  53. Grabundzija, I., et al. Comparative analysis of transposable element vector systems in human cells. Molecular Therapy. 18 (6), 1200-1209 (2010).
  54. Dunn, K. C., Aotaki-Keen, A. E., Putkey, F. R., Hjelmeland, L. M. ARPE-19, a human retinal pigment epithelial cell line with differentiated properties. Experimental Eye Research. 62 (2), 155-169 (1996).
  55. Chang, L., et al. Micro-/nanoscale electroporation. Lab on a Chip. 16 (21), 4047-4062 (2016).
  56. Shi, J., et al. A review on electroporation-based intracellular delivery. Molecules. 23 (11), (2018).
  57. Johnen, S., et al. Endogenic regulation of proliferation and zinc transporters by pigment epithelial cells nonvirally transfected with PEDF. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (8), 5400-5407 (2011).
  58. Pastor, M., et al. The antibiotic-free pFAR4 vector paired with the Sleeping Beauty transposon system mediates efficient transgene delivery in human cells. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 11, 57-67 (2018).
check_url/cn/61987?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Johnen, S., Harmening, N., Marie, C., Scherman, D., Izsvák, Z., Ivics, Z., Walter, P., Thumann, G. Electroporation-Based Genetic Modification of Primary Human Pigment Epithelial Cells Using the Sleeping Beauty Transposon System. J. Vis. Exp. (168), e61987, doi:10.3791/61987 (2021).

View Video