Summary

في المختبر تقييم إعادة برمجة القلب عن طريق قياس تدفق الكالسيوم القلب محددة مع مراسل GCaMP3

Published: February 22, 2022
doi:

Summary

نحن نصف هنا، إنشاء وتطبيق TG (Myh6-cre)1Jmk/J /Gt(ROSA)26Sortm38 (CAG-GCaMP3)Hze/J (يشار إليه باسم αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 أدناه) خط مراسل الماوس لتقييم إعادة برمجة القلب. يتم تحويل الخلايا الليفية القلبية الوليدية (NCFs) المعزولة عن سلالة الماوس إلى خلايا قلبية مستحثة (iCMs) ، مما يسمح بتقييم مناسب وفعال لكفاءة إعادة البرمجة والنضج الوظيفي ل iCMs عن طريق تدفق الكالسيوم (Ca2+).

Abstract

أصبحت إعادة برمجة القلب علاجا واعدا لإصلاح القلب التالف. من خلال إدخال عوامل نسخ متعددة ، بما في ذلك Mef2c ، Gata4 ، Tbx5 (MGT) ، يمكن إعادة برمجة الخلايا الليفية في خلايا القلب المستحثة (iCMs). هذه iCMs، عندما ولدت في الموقع في قلب متشح، ودمج كهربائيا وميكانيا مع عضلة القلب المحيطة بها، مما يؤدي إلى انخفاض في حجم ندبة وتحسين في وظيفة القلب. ونظرا للانخفاض النسبي في كفاءة إعادة البرمجة ونقاوتها وجودتها، فإن توصيف الأجهزة iCMs يظل تحديا. تركز الأساليب المستخدمة حاليا في هذا المجال، بما في ذلك قياس التدفق الخلوي والكيمياء المناعية وqPCR، بشكل رئيسي على التعبير الجيني والبروتيني الخاص بالقلب ولكن ليس على النضج الوظيفي ل iCMs. يؤدي فتح قنوات الكالسيوم ذات بوابات الجهد في خلايا القلب إلى تدفق سريع للكالسيوم إلى الخلية بسبب إمكانات العمل. لذلك ، فإن تحديد معدل تدفق الكالسيوم هو طريقة واعدة لتقييم وظيفة القلب. هنا، يقدم البروتوكول طريقة لتقييم وظيفة iCM عن طريق تدفق الكالسيوم (Ca2+). تم تأسيس سلالة ماوس αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 من خلال عبور Tg (Myh6-cre)1Jmk/J (يشار إليه باسم Myh6-Cre أدناه) مع Gt(ROSA)26Sortm38 (CAG-GCaMP3)Hze/J (يشار إليها باسم Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 أدناه) الفئران. تم عزل الخلايا الليفية القلبية الوليدية (NCFs) من فئران حديثي الولادة P0-P2 واستزراعها في المختبر ، وتم إدخال بناء متعدد الحسابات ل MGT إلى NCFs ، مما أدى إلى إعادة برمجتها إلى iCMs. لأن فقط إعادة برمجة iCMs بنجاح سوف تعبر عن مراسل GCaMP3، يمكن تقييم النضج الوظيفي لل iCMs بصريا من خلال تدفق Ca2+ مع المجهر الفلوري. وبالمقارنة مع الصناديق غير المبرمجة، أظهرت NCF-iCMs تدفقا عابرا كبيرا للكالسيوم وانكماشا عفويا، على غرار CMs. يصف هذا البروتوكول بالتفصيل إنشاء سلالة الماوس وعزل واختيار قلوب الفئران الوليدية وعزلة NCF وإنتاج الفيروس الرجعية لإعادة برمجة القلب ، وحث iCM ، وتقييم تدفق iCM Ca2 + باستخدام خط المراسل الخاص بنا ، والتحليل الإحصائي ذي الصلة وعرض البيانات. ومن المتوقع أن توفر الأساليب الموصوفة هنا منصة قيمة لتقييم النضج الوظيفي ل iCMs لدراسات إعادة برمجة القلب.

Introduction

احتشاء عضلة القلب (MI) هو مرض شديد في جميع أنحاء العالم. أمراض القلب والأوعية الدموية (CVDs) هي السبب الرئيسي للوفاة في جميع أنحاء العالم وتسبب ما يقرب من 18.6 مليون حالة وفاة في عام 20191،2. وقد انخفض مجموع الوفيات الناجمة عن الأمراض القلبية الوعائية خلال نصف القرن الماضي. ومع ذلك، تباطأ هذا الاتجاه أو حتى انعكس في بعض البلدان غير المتطورة1، مما يدعو إلى علاجات أكثر فعالية للأمراض القلبية الوعائية. باعتبارها واحدة من المظاهر القاتلة للأمراض القلبية الوعائية، يمثل MI حوالي نصف جميع الوفيات المنسوبة إلى الأمراض القلبية الوعائية في الولايات المتحدة2. خلال نقص التروية ، مع انسداد الشرايين التاجية والعرض المحدود لكل من العناصر الغذائية والأوكسجين ، يعاني عضلة القلب من تغيرات استقلابية حادة ، ويضعف الوظيفة الانقباضية لخلايا القلب (CMs) ، ويؤدي إلى موت CM3. وقد تم استكشاف العديد من النهج في أبحاث القلب والأوعية الدموية لإصلاح إصابة القلب واستعادة وظيفة القلب المصاب4. ظهرت إعادة برمجة القلب المباشرة كاستراتيجية واعدة لإصلاح القلب التالف واستعادة وظيفته5،6. من خلال إدخال Mef2c، Gata4، Tbx5 (MGT)، يمكن إعادة برمجة الخلايا الليفية إلى iCMs في المختبر وفي الجسم الحي، ويمكن لتلك iCMs تقليل منطقة ندبة وتحسين وظيفة القلب7،8.

على الرغم من أن إعادة برمجة القلب هي استراتيجية واعدة لعلاج MI ، لا يزال هناك عدد من التحديات. أولا، كفاءة إعادة البرمجة، والنقاء، والجودة ليست دائما عالية كما هو متوقع. يمكن أن يحقق إغراء MGT 8.4٪ فقط (cTnT+) أو 24.7٪ (αMHC-GFP+) من إجمالي CFs التي سيتم إعادة برمجتها على iCMs في المختبر7 ، أو ما يصل إلى 35٪ في vivo8 ، مما يحد من تطبيقها. حتى مع وجود المزيد من العوامل المستحثة في النظام ، مثل Hand29 أو Akt1 /PKB10 ، فإن كفاءة إعادة البرمجة لا تزال مرضية بالكاد لاستخدامها في بيئة سريرية. ومن ثم، يلزم إجراء المزيد من الدراسات التي تركز على تحسين كفاءة إعادة البرمجة في هذا المجال. ثانيا، تعتبر خصائص السلامة الكهربائية والانكماش لأجهزة iCMs مهمة لتحسين كفاءة وظائف القلب، ومع ذلك فإن تقييمها صعب. وفي الوقت الراهن، تركز أساليب التقييم المستخدمة على نطاق واسع في هذا المجال، بما في ذلك قياس التدفق الخلوي، والكيمياء المناعية، وqPCR لبعض التعبيرات الرئيسية لجينات CMs، على تشابه ال iCMs و CMs، ولكنها لا ترتبط مباشرة بالخصائص الوظيفية ل iCMs. وعلاوة على ذلك، فإن هذه الأساليب لها إجراءات معقدة نسبيا وتستغرق وقتا طويلا. في حين أن دراسات إعادة البرمجة عادة ما تنطوي على فحص لعوامل إعادة البرمجة المحتملة التي تعزز نضوج iCMs11 ، تتطلب إعادة برمجة القلب طريقة سريعة ومريحة استنادا إلى وظيفة iCMs.

CMs فتح قنوات أيونات الكالسيوم ذات بوابات الجهد على السيتوميمبران خلال كل دورة التعاقد، مما يؤدي إلى تدفق عابر من أيون الكالسيوم (Ca2+) من السائل بين الخلايا إلى السيتوبلازم للمشاركة في انكماش myofilament. مثل هذا التدفق Ca2 + ودورة اللوكس هو السمة الأساسية للانكماش عضلة القلب ويشكل وظيفة طبيعية من CMs12. وبالتالي، فإن الطريقة التي تكتشف تدفق Ca2+ يمكن أن تكون طريقة محتملة لقياس وظيفة CMs والخلايا الشبيهة ب CM، بما في ذلك iCMs. وعلاوة على ذلك، بالنسبة لأجهزة iCMs، توفر هذه الطريقة طريقة أخرى لتقييم كفاءة إعادة البرمجة.

تم تطوير مؤشرات الكالسيوم المشفرة وراثيا (GECIs) واستخدامها على نطاق واسع للإشارة إلى أنشطة الخلية، وخاصة إمكانات العمل. عموما، GECIs تتكون من مجال ربط Ca2 + مثل كالمودولين، ومجال الفلورسنت مثل GFP، وGCaMP3 هو واحد مع تقارب عالية وكثافة مضان. سيتم تنشيط مجال الفلورسينس GCaMP3 عند تغيير تركيز الكالسيوم المحلي13. في هذه الورقة، يتم وصف سلالة الماوس التي تعبر على وجه التحديد مراسل GCaMP3 في خلايا Myh6+. من خلال إدخال MGT إلى NCFs المعزولة من حديثي الولادة من هذه السلالة ، يمكن مراقبة إعادة البرمجة عن طريق الفلور ، والتي سيتم عرضها بنجاح iCMs المبرمجة. مثل هذه السلالة الماوس وطريقة سوف توفر منصة قيمة للتحقيق في إعادة برمجة القلب.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الإجراءات والممارسات التجريبية التي تنطوي على الحيوانات من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في جامعة ميشيغان. يجب أن يتم تنفيذ جميع الإجراءات والممارسات التجريبية التي تنطوي على زراعة الخلايا BSL2 خزانة السلامة البيولوجية في ظل ظروف معقمة. وفيما يتعل?…

Representative Results

ويظهر في الشكل 1 سير العمل التجريبي لتوليد Myh6-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3 سلالة الفئران والبنية الجينية للفئران المعدلة وراثيا. في حين يتم تأسيس سلالة الماوس ، تم عزل قلوب الجراء ومراقبتها تحت مجهر مضان عكسي لتأكيد النمط الجيني. قلوب مع النمط الجيني الصحيح تظهر Ca2 + تدفق متزامن…

Discussion

تقييم وظيفة iCMs ضروري لحقل إعادة برمجة القلب. في هذه المخطوطة، يصف البروتوكول سلالة TG (Myh6-cre)1Jmk/J/Gt(ROSA)26Sortm38 (CAG-GCaMP3)Hze/J Mouse التي تم إنشاؤها، وكيفية استخدام NCFs المعزولة عن الفئران الوليدية في هذه السلالة لإعادة برمجتها على iCMs، وتقييم وظيفة iCMs بواسطة تدفق Ca2+ . هذه طريقة de novo لتقيي?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نقدر جهود ليو جناتوفسكي في تحرير النص الإنجليزي لهذه المخطوطة. تم إنشاء الشكل 1 مع BioRender.com. وقد دعمت هذه الدراسة من قبل المعاهد الوطنية للصحة (NIH) في الولايات المتحدة (1R01HL109054) منحة للدكتور وانغ.

Materials

15 mL Conical Centrifuge Tubes Thermo Fisher Scientific 14-959-70C
50mL Conical Centrifuge Tubes Thermo Fisher Scientific 14-959-49A
6 Well Cell Culture Plates Alkali Scientific TP9006
A83-01 Stemgent 04–0014
All-in-One Fluorescence Microscope Keyence BZ-X800E Inverted fluorescence microscope
B-27 Supplement (50X), serum free Thermo Fisher Scientific 17504044
Blasticidin S HCl (10 mg/mL) Thermo Fisher Scientific A1113903
Bovine Serum Albumin (BSA) DNase- and Protease-free Powder Thermo Fisher Scientific BP9706100
CD90.2 MicroBeads, mouse Miltenyi Biotec 130-049-101 Thy1.2 microbeads
Collagenase, Type 2 Thermo Fisher Scientific NC9693955
Counting Chamber Thermo Fisher Scientific 02-671-51B Hemocytometer
DMEM, high glucose, no glutamine Thermo Fisher Scientific 11960069
DPBS, calcium, magnesium Thermo Fisher Scientific 14-040-133
Ethanol, 200 proof (100%) Thermo Fisher Scientific 04-355-451
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (Certified ACS) Thermo Fisher Scientific E478-500
Fetal Bovine Serum Corning 35-010-CV
HBSS, calcium, magnesium, no phenol red Thermo Fisher Scientific 14025092
IMDM media Thermo Fisher Scientific 12440053
IX73 Inverted Microscope Olympus IX73P2F Inverted fluorescence microscope
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent Thermo Fisher Scientific 11-668-019
LS Columns Miltenyi Biotec 130-042-401
Medium 199, Earle's Salts Thermo Fisher Scientific 11150059
MidiMACS Separator and Starting Kits Miltenyi Biotec 130-042-302
Millex-HV Syringe Filter Unit, 0.45 µm, PVDF, 33 mm, gamma sterilized Millipore Sigma SLHV033RB
MM589 Obtained from Dr. Shaomeng Wang’s lab in University of Michigan
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31-985-070
PBS, pH 7.4 Thermo Fisher Scientific 10-010-049
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo Fisher Scientific 15140122
Platinum-E (Plat-E) Retroviral Packaging Cell Line Cell Biolabs RV-101
pMx-puro-MGT Addgene 111809
Poly(ethylene glycol) Millipore Sigma P5413-1KG PEG8000
Polybrene Infection / Transfection Reagent Millipore Sigma TR-1003-G
PTC-209 Sigma SML1143–5MG
Puromycin Dihydrochloride Thermo Fisher Scientific A1113803
Recombinant Human IGF-I Peprotech 100-11
RPMI 1640 Medium Thermo Fisher Scientific 11875093
ST 16 Centrifuge Series Thermo Fisher Scientific 75-004-381
Sterile Cell Strainers Thermo Fisher Scientific 22-363-547 40 µm strainer
Surface Treated Tissue Culture Dishes Thermo Fisher Scientific FB012921
TE Buffer Thermo Fisher Scientific 12090015
Trypan Blue solution Millipore Sigma T8154
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Thermo Fisher Scientific 25300054
Vortex Mixer Thermo Fisher Scientific 02215365

References

  1. Vos, T., et al. Global burden of 369 diseases and injuries in 204 countries and territories, 1990-2019: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2019. The Lancet. 396 (10258), 1204-1222 (2020).
  2. Virani, S., et al. Heart disease and stroke statistics-2021 update: A report from the american heart association. Circulation. 143 (8), e254-e743 (2021).
  3. Frangogiannis, N. G. Pathophysiology of myocardial infarction. Comprehensive Physiology. 5 (4), 1841-1875 (2015).
  4. Tian, S., et al. HDAC inhibitor valproic acid protects heart function through Foxm1 pathway after acute myocardial infarction. EBioMedicine. 39, 83-94 (2019).
  5. Mohamed, T. M., et al. Chemical enhancement of in vitro and in vivo direct cardiac reprogramming. Circulation. 135 (10), 978-995 (2017).
  6. Liu, L., Lei, I., Wang, Z. Improving cardiac reprogramming for heart regeneration. Current Opinion in Organ Transplantation. 21 (6), 588-594 (2016).
  7. Ieda, M., et al. Direct reprogramming of fibroblasts into functional cardiomyocytes by defined factors. Cell. 142 (3), 375-386 (2010).
  8. Qian, L., et al. In vivo reprogramming of murine cardiac fibroblasts into induced cardiomyocytes. Nature. 485 (7400), 593-598 (2012).
  9. Song, K., et al. Heart repair by reprogramming non-myocytes with cardiac transcription factors. Nature. 485 (7400), 599-604 (2012).
  10. Zhou, H., Dickson, M. E., Kim, M. S., Bassel-Duby, R., Olson, E. N. Akt1/protein kinase B enhances transcriptional reprogramming of fibroblasts to functional cardiomyocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (38), 11864-11869 (2015).
  11. Liu, L., et al. Targeting Mll1 H3K4 methyltransferase activity to guide cardiac lineage specific reprogramming of fibroblasts. Cell Discovery. 2, 16036 (2016).
  12. Grant, A. O. Cardiac ion channels. Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology. 2 (2), 185-194 (2009).
  13. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nature Methods. 6 (12), 875-881 (2009).
  14. Wang, L., et al. Improved Generation of Induced Cardiomyocytes Using a Polycistronic Construct Expressing Optimal Ratio of Gata4, Mef2c and Tbx5. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (105), e53426 (2015).
  15. Guo, Y., et al. Chemical suppression of specific C-C chemokine signaling pathways enhances cardiac reprogramming. Journal of Biological Chemistry. 294 (23), 9134-9146 (2019).
  16. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP calcium indicator for neural activity imaging. The Journal of Neuroscience. 32 (40), 13819-13840 (2012).
  17. Stevenson, A. J., et al. Multiscale imaging of basal cell dynamics in the functionally mature mammary gland. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (43), 26822-26832 (2020).
  18. Ikeda, K., et al. UCP1-independent signaling involving SERCA2b-mediated calcium cycling regulates beige fat thermogenesis and systemic glucose homeostasis. Nature Medicine. 23 (12), 1454-1465 (2017).
  19. Golebiewska, U., Scarlata, S. Measuring fast calcium fluxes in cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (57), e3505 (2011).
  20. Eng, G., et al. Autonomous beating rate adaptation in human stem cell-derived cardiomyocytes. Nature Communications. 7, 10312 (2016).
check_url/cn/62643?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Li, Z., Liu, L., Wang, Z. In vitro Assessment of Cardiac Reprogramming by Measuring Cardiac Specific Calcium Flux with a GCaMP3 Reporter. J. Vis. Exp. (180), e62643, doi:10.3791/62643 (2022).

View Video