Summary

Live Cell Imaging von Pilzzellen Modi des Eintrags und subzelluläre Lokalisation der antimykotische Pflanze Defensine zu untersuchen

Published: December 24, 2017
doi:

Summary

Pflanzlichen Defensine spielen eine wichtige Rolle in der Verteidigung der Pflanze gegen Krankheitserreger. Für effektive Nutzung dieser antimykotische Peptide als Antimykotika, verstehen ihre Wirkungsweisen (MOA) entscheidend ist. Hier ist eine live-Cell-imaging-Methode beschrieben, um kritische Aspekte der MOA dieser Peptide zu studieren.

Abstract

Kleinen Cystein-reiche Defensine sind eine der größten Gruppen von Host Verteidigung Peptiden in allen Pflanzen vorhanden. Viele pflanzlichen Defensine potente in Vitro antimykotische Aktivität gegen ein Breitspektrum Pilzerreger auszustellen und haben daher das Potenzial, als Antimykotika in transgenen Pflanzen verwendet werden. Um das volle Potenzial der Pflanze Defensine für Krankheiten Kontrolle zu erschließen, ist es wichtig, ihre Wirkmechanismen (MOA) aufzuklären. Mit dem Aufkommen der modernen Mikroskopiertechniken ist live Cell Imaging ein leistungsfähiges Werkzeug für das Verständnis der Dynamik von Antimykotika MOA von pflanzlichen Defensine geworden. Hier wird ein konfokalen Mikroskopie basierend live-Cell imaging Verfahren beschrieben mit zwei Eindringmittel bezeichnete Pflanze Defensine (MtDef4 und MtDef5) in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen. Diese Technik ermöglicht Echtzeit-Visualisierung und Analyse der dynamischen Ereignisse der MtDef4 und MtDef5 Internalisierung in Pilzzellen. Wichtig ist, erzeugt dieser Assay eine Fülle von Informationen, einschließlich der Internalisierung Kinetik, Modus für die Einreise und subzelluläre Lokalisation dieser Peptide. Zusammen mit anderen biologischen Zelle-Tools haben diese Methoden kritische Einblicke in die Dynamik und Komplexität der MOA dieser Peptide zur Verfügung gestellt. Diese Tools können auch verwendet werden, die MOA dieser Peptide gegen verschiedene Pilze zu vergleichen.

Introduction

Pflanzen haben eine anspruchsvolle angeborene Immunsystem zur Abwehr der mikrobiellen Werk Krankheitserreger1entwickelt. Sie äußern zahlreiche Gen kodiert Host Verteidigung Peptide mit vermeintlichen antimikrobielle Aktivität2. In der Tat, viele dieser Peptide antimikrobielle Aktivität in Vitro3anzeigen Defensine bilden eine der größten Gruppen von Host Verteidigung Peptiden in der Pflanze Königreich4. Diese reich an Cystein, kationischen Peptide zeigen starkes Wachstum hemmende Aktivität gegen Pilz- und Eipilz Krankheitserreger in mikromolaren Konzentrationen und repräsentieren eine der ersten Linien der Verteidigung gegen diese Erreger5,6. Wegen ihrer starken antimykotische Aktivität kann Defensine ausgenutzt werden, in Agribiotechnological Anwendungen um Krankheiten resistente Pflanzen zu erzeugen. Konstitutive Überexpression von mehreren pflanzlichen Defensine hat sich gezeigt, Resistenz gegen Krankheiten in Gewächshaus und Freiland-Tests von transgenen Pflanzen6zu verbessern. Es ist wichtig, die Mechanismen der Wirkung (MOA) dieser antimykotische Peptide zu entwirren, um ihr Potenzial voll und ganz als wirksame Instrumente für den Pflanzenschutz zu erschließen. Die MOA diese Pflanze Defensine sind jedoch kaum erforscht. Aktuelle Hinweise darauf, dass sie verschiedene MOA5,6,7,8aufweisen. Einige Defensine wirken extrazellulär auf Pilze und gezielt bestimmte Zellwand/Plasma Membran resident Sphingolipide, Membran Integrität stören und aktivieren zelluläre Toxizität Wege9,10,11. Jedoch vor kurzem, wurden antimykotische Defensine, die in Pilzzellen translozieren entdeckten12,13,14. Einige von diesen Defensine binden an Membran-Resident bioaktive Phospholipide, bilden Oligomere komplexe und Plasmamembranen15,16,17permeabilize. So haben einige Aspekte des MOA von pflanzlichen Defensine aufgeklärt. Allerdings beinhalten die MOA von pflanzlichen Defensine wahrscheinlich eine komplexe Reihe von Ereignissen, die noch nicht identifiziert und in ein umfassendes Modell integriert wurden. Insbesondere bleibt eine große Lücke in unserem Verständnis der zellulären Ziele dieser Peptide.

Mit jüngsten Fortschritte in der Mikroskopie-Technologien und die Entwicklung von neuen fluoreszierende Sonden sind Leben-Zelle bildgebende Verfahren jetzt häufig verwendet, um die MOA antimikrobielle Peptide (AMPs) zu studieren. Diese Techniken ergänzen verbreitete Methoden wie Immunolocalization, Elektronenmikroskopie, Rasterkraftmikroskopie oder Röntgen-Tomographie18, die angewandt wurden, vor allem auf die Auswirkungen von Antimykotika Peptiden auf die Morphologie zu analysieren und Wachstum von Pilzzellen einschließlich der Untersuchung der Zellwand Integrität, Veränderungen in der Zelle Wachstum/Verzweigung Muster sowie Permeabilisierung der Plasmamembran und töten. Allerdings wurden diese Studien beschränkt Imaging Zellen zu einem bestimmten Zeitpunkt nach der Behandlung mit der Peptide anstatt Zeitraffer-Aufnahme die gleichen Zellen, ihre dynamischen Veränderungen in Reaktion auf defensin Herausforderung zu überwachen. In den letzten Jahren hat die Verwendung von Eindringmittel beschriftete Peptide in Verbindung mit live Cell imaging mit der konfokalen Mikroskopie Echtzeit-Visualisierung der Dynamik des AMP-Mikroben-Interaktionen ermöglicht. Beide natürlich gereinigt und chemisch synthetisierten antimykotische Peptide können mit Fluoreszenzmarkierungen markiert werden (z.B., DyLight, Rhodamin, BODIPY oder Alexa Fluor basierend Farbstoffe) und direkt während ihrer Interaktion mit Zellen von Time-Lapse beobachtet Live Cell Imaging. Die Verwendung dieser Peptide beschriftet unser Verständnis für die verschiedenen Aspekte der ihre MOA einschließlich Modus Eintritt, subzelluläre Lokalisation, intrazellulären Menschenhandel und Websites antimykotische Maßnahmen im lebenden Pilzzellen deutlich gestiegen 18.

Vor kurzem, haben mehrere Studien gezeigt, dass verschiedene Antimykotika Peptide einschließlich Anlage Defensine Leben Pilzzellen12,14,19,20internalisiert werden. Die MOA diese Defensine wahrscheinlich beinhalten Interaktion mit intrazellulären Ziele. Wir haben vor kurzem die antimykotische Wirkung von einer Pflanze defensin MtDef4 in zwei Schlauchpilz Pilzen, Neurospora Crassa und Fusarium Graminearumberichtet. MtDef4 wurde gezeigt, um verschiedene Wege für die Pilzzelle ein- und subzelluläre Lokalisation in diesen Pilzen14zu verwenden. Diese Studie verwendet chemisch synthetisiert Tetramethyl Rhodamin (TAMRA)-mit der Bezeichnung MtDef4 in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen (Membran-permeationsfähigen Farbstoff, SYTOX Green, der Membran selektiv Farbstoff, FM4-64; der Zelle Tod Reporter Farbstoff, Propidium Jodid) und metabolische Inhibitoren. Diese Analysen zeigten die Kinetik der Internalisierung von MtDef4, die Mechanismen der intrazellulären Transport und seine subzelluläre Ziele14.

Hier ist ein Protokoll für live Cell Imaging mit der konfokalen Mikroskopie vorgestellt. Das Protokoll nutzt Eindringmittel beschriftete Peptide in Kombination mit lebenswichtigen Fluoreszenzfarbstoffen Pflanze defensin-Pilz-Interaktionen, insbesondere zu studieren, die Pfade der Translokation und die intrazellulären Ziele der Defensine in Pilzzellen.

Protocol

1. Kennzeichnung der Defensine mit Fluorophore Wählen Sie eine Fluorophore, die minimale Auswirkungen auf die antimikrobiellen Eigenschaften sowie die Aufnahme und Lokalisierung von defensin innerhalb der lebenden Zelle hat.Hinweis: Optimale Fluorophor Auswahl richtet sich nach experimentellen Einzelziele. Spektrale und chemischen Eigenschaften, Photostabilität, Größe und Ladung der Fluorophor sollten berücksichtigt werden. Label defensin mit den ausgewählten Fluorophor mit einer entsprech…

Representative Results

Live Cell Imaging wurde durchgeführt, um zu verfolgen und vergleichen Sie die Internalisierung und subzelluläre Lokalisation der zwei Defensine, MtDef4 und MtDef5 von Medicago Truncatula; in Pilzzellen. TMR-MtDef4 wurde chemisch synthetisiert, während MtDef5 mit Dylight550 beschriftet war (Dylight550-MtDef5). Konidien inkubiert mit entweder defensin in Kombination mit der Membran selektiv Farbstoff FM4-64. Abbildung 1 zeigt, dass TMR-MtDef4 versch…

Discussion

In dieser Studie wurde eine zuverlässige live-Cell Image Methodik mit dem Einsatz von Eindringmittel beschrifteten antimykotische Defensine beschrieben, die Kinetik der Internalisierung dieser Peptide in Pilzzellen zu studieren und ihre subzelluläre Ziele zu bestimmen. Diese Methode ist ein mächtiges Werkzeug, um die Dynamik der Interaktion zwischen Defensine und Pilzzellen zeitlich und räumlich zu visualisieren.

Verschiedene Methoden wurden zur Untersuchung der Verinnerlichung und intraze…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir bedanken uns bei Dr. R. Howard Berg, Leiter der integrierten Mikroskopie-Einrichtung bei Donald Danforth Plant Science Center, für seine Beratung und Hilfe bei der konfokalen Mikroskopie. Die Autoren haben keinen Interessenkonflikt zu erklären.

Materials

FM4-64 Dye Life Technologies T13320
DyLight 550 Antibody Labeling Kit Thermo Scientific 84530
Glass Bottom Microwell Dishes Mat TeK P35G-1.5-10-C
Mira cloth EMD Millipore Corp 475855-1R
SP8-X confocal microscope Leica
ImageJ software FiJi For Image analysis
Imaris software Bitplane For Image analysis

Referenzen

  1. Jones, J. D. G., Dangl, J. L. The plant immune system. Nature. 444 (7117), 323-329 (2006).
  2. Tavormina, P., De Coninck, B., Nikonorova, N., De Smet, I., Cammue, B. P. A. The Plant Peptidome: An expanding repertoire of structural features and biological functions. Plant cell. 27 (8), 2095-2118 (2015).
  3. Van Der Weerden, N. L., Bleackley, M. R., Anderson, M. A. Properties and mechanisms of action of naturally occurring antifungal peptides. Cell. and Mol. Life Sci. 70 (19), 3545-3570 (2013).
  4. Van der Weerden, N. L., Anderson, M. A. Plant defensins: Common fold, multiple functions. Fungal Biol Rev. 26 (4), 121-131 (2013).
  5. De Coninck, B., Cammue, B. P. A., Thevissen, K. Modes of antifungal action and in planta functions of plant defensins and defensin-like peptides. Fungal Biol Rev. 26 (4), 109-120 (2013).
  6. Kaur, J., Sagaram, U. S., Shah, D. Can plant defensins be used to engineer durable commercially useful fungal resistance in crop plants?. Fungal Biol. Rev. 25 (3), 128-135 (2011).
  7. Vriens, K., Cammue, B. P. A., Thevissen, K. Antifungal plant defensins: Mechanisms of action and production. Molecules. 19 (8), 12280-12303 (2014).
  8. Sagaram, U. S., Kaur, J., Shah, D. Antifungal plant defensins: Structure-activity relationships, modes of action, and biotech applications. ACS Symp. Ser. 1095, 317-336 (2012).
  9. Thevissen, K., Francois, I. E. J. A., Aerts, A. M., Cammue, B. P. A. Fungal sphingolipids as targets for the development of selective antifungal therapeutics. Curr. Drug Targets. 6 (8), 923-928 (2005).
  10. Thevissen, K., Kristensen, H. H., Thomma, B. P. H. J., Cammue, B. P. A., Francois, I. E. J. A. Therapeutic potential of antifungal plant and insect defensins. Drug Discov. Today. 12 (21-22), 966-971 (2007).
  11. Aerts, A. M., François, I. E. J. A., Cammue, B. P. A., Thevissen, K. The mode of antifungal action of plant, insect and human defensins. Cell. Mol. Life Sci. 65 (13), 2069-2079 (2008).
  12. Van Der Weerden, N. L., Lay, F. T., Anderson, M. A. The plant defensin, NaD1, enters the cytoplasm of Fusarium oxysporum hyphae. J. Biol. Chem. 283 (21), 14445-14452 (2008).
  13. Lobo, D. S., Pereira, I. B., et al. Antifungal Pisum sativum Defensin 1 Interacts with Neurospora crassa Cyclin F Related to the Cell Cycle. Biochemie. 46 (4), 987-996 (2007).
  14. El-Mounadi, K., Islam, K. T., Hernandez-Ortiz, P., Read, N. D., Shah, D. M. Antifungal mechanisms of a plant defensin MtDef4 are not conserved between the ascomycete fungi Neurospora crassa and Fusarium graminearum. Mol. Microbiol. 100 (3), 542-559 (2016).
  15. Baxter, A. A., et al. The Tomato Defensin TPP3 Binds Phosphatidylinositol (4,5)-Bisphosphate via a Conserved Dimeric Cationic Grip Conformation To Mediate Cell Lysis. Mol. and Cell. Biol. 35 (11), 1964-1978 (2015).
  16. Kvansakul, M., et al. Binding of phosphatidic acid by NsD7 mediates the formation of helical defensin-lipid oligomeric assemblies and membrane permeabilization. Proc. Natl. Acad. Sci. 113, 11202-11207 (2016).
  17. Poon, I. K. H., et al. Phosphoinositide-mediated oligomerization of a defensin induces cell lysis. eLife. 3, e01808 (2014).
  18. Muñoz, A., Read, N. D. Live-cell imaging and analysis shed light on the complexity and dynamics of antimicrobial Peptide action. Front. Immunol. 3, 248 (2012).
  19. Hayes, B. M. E., et al. Identification and mechanism of action of the plant defensin NaD1 as a new member of the antifungal drug arsenal against candida albicans. Antimicrob. Agents Chemother. 57 (8), 3667-3675 (2013).
  20. Muñoz, A., Marcos, J. F., Read, N. D. Concentration-dependent mechanisms of cell penetration and killing by the de novo designed antifungal hexapeptide PAF26. Mol. Microbiol. 85 (1), 89-106 (2012).
  21. Eaton, C. J., et al. The guanine nucleotide exchange factor RIC8 regulates conidial germination through Gα proteins in Neurospora crassa. PLoS One. 7 (10), e48026 (2012).
  22. Leslie, J. F., Summerell, B. A. . The Fusarium. laboratory manual. , (2006).
  23. Broekaert, W. F., Terras, F. R. G., Cammue, B. P. A., Vanderleyden, J. An automated quantitative assay for fungal growth inhibition. FEMS Microbiol.Lett. 69 (1-2), 55-59 (1990).
  24. Sagaram, U. S., et al. Structural and functional studies of a phosphatidic acid-binding antifungal plant defensin MtDef4: Identification of an RGFRRR motif governing fungal cell entry. PLoS One. 8 (12), 1-22 (2013).
  25. Uchida, M., et al. Soft X-ray tomography of phenotypic switching and the cellular response to antifungal peptoids in Candida albicans. Proc. Natl. Acad. Sci. 106 (46), 19375-19380 (2009).
  26. Nair, R., et al. Better prediction of sub-cellular localization by combining evolutionary and structural information. Proteins Struct. Funct. Bioinform. 53 (4), 917-930 (2003).
  27. Scott, M. S., Calafell, S. J., Thomas, D. Y., Hallett, M. T. Refining protein subcellular localization. PLoS Comput. Biol. 1 (6), e66 (2005).
  28. Shagaghi, N., Bhave, M., Palombo, E., Clayton, A. Revealing the sequence of interactions of PuroA peptide with Candida albicans cells by live-cell imaging. Sci. Rep. 7, 43542 (2017).
check_url/de/55995?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Islam, K. T., Shah, D. M., El-Mounadi, K. Live-cell Imaging of Fungal Cells to Investigate Modes of Entry and Subcellular Localization of Antifungal Plant Defensins. J. Vis. Exp. (130), e55995, doi:10.3791/55995 (2017).

View Video