Summary

Ensayo para la integridad de la barrera hematoencefálica en Drosophila melanogaster

Published: September 18, 2019
doi:

Summary

La integridad de la barrera hematoencefálica es fundamental para la función del sistema nervioso. En Drosophila melanogaster, la barrera hematoencefálica se forma por células gliales durante la embriogénesis tardía. Este protocolo describe los métodos para el ensayo para la formación y el mantenimiento de barreras hematoencefálicas en embriones D. melanogaster y larvas de tercera estrella.

Abstract

El desarrollo adecuado del sistema nervioso incluye la formación de la barrera hematoencefálica, la barrera de difusión que regula estrechamente el acceso al sistema nervioso y protege el tejido neural de toxinas y patógenos. Los defectos en la formación de esta barrera se han correlacionado con las neuropatías, y la descomposición de esta barrera se ha observado en muchas enfermedades neurodegenerativas. Por lo tanto, es fundamental identificar los genes que regulan la formación y el mantenimiento de la barrera hematoencefálica para identificar posibles dianas terapéuticas. Con el fin de entender las funciones exactas que estos genes juegan en el desarrollo neuronal, es necesario determinar los efectos de la expresión génica alterada en la integridad de la barrera hematoencefálica. Muchas de las moléculas que funcionan en el establecimiento de la barrera hematoencefálica se han encontrado para ser conservadas a través de especies eucariotas, incluyendo la mosca de la fruta, Drosophila melanogaster. Las moscas de la fruta han demostrado ser un excelente sistema modelo para examinar los mecanismos moleculares que regulan el desarrollo y la función del sistema nervioso. Este protocolo describe un procedimiento paso a paso para el ensayo de la integridad de la barrera hematoencefálica durante las etapas embrionarias y larvales del desarrollo de D. melanogaster.

Introduction

Durante el desarrollo, la comunicación celular y las interacciones son fundamentales para el establecimiento de la estructura y función de tejidos y órganos. En algunos casos, estas interacciones células-células sellan los órganos del entorno circundante para asegurar el funcionamiento adecuado del órgano. Este es el caso del sistema nervioso, que está aislado por la barrera hematoencefálica (BBB). Disfunción del BBB en seres humanos se ha relacionado con trastornos neurológicos incluyendo epilepsia, y la descomposición de la barrera se ha observado en enfermedades neurodegenerativas incluyendo esclerosis múltiple y esclerosis lateral amiotrófica1. En los mamíferos, el BBB está formado por uniones estrechas entre las células endoteliales2,3. Otros animales, incluyendo la mosca de la fruta, Drosophila melanogaster, tienen un BBB compuesto de células gliales. Estas células gliales forman una barrera selectivamente permeable para controlar el movimiento de nutrientes, productos de desecho, toxinas y moléculas grandes dentro y fuera del sistema nervioso4. Esto permite el mantenimiento del gradiente electroquímico necesario para disparar potenciales de acción, permitiendo la movilidad y coordinación4. En D. melanogaster, la glia protege el sistema nervioso de la hemolinfa5rica en potasio.

En el sistema nervioso central (SNC) y el sistema nervioso periférico (PNS) de D. melanogaster, dos capas glias externas, la glia subperineurial y la glia perineurial, así como una red externa de matriz extracelular, la lamela neural, forman la hemolinfa-cerebro y la barrera del nervio hemafifáfico6, conocido como el BBB a lo largo de este artículo. Durante el desarrollo la glia subperineurial se convierte nofoides y se agranda para rodear el sistema nervioso5,6,7,8,9,10,11 . La glia subperineurial forma uniones septato, que proporcionan la principal barrera de difusión entre la hemolinfa y el sistema nervioso5,6,12. Estas uniones son molecularmente similares a las uniones similares a septatos que se encuentran en los paranodos de la glia mielinante en vertebrados, y realizan la misma función que las uniones estrechas en el BBB de los mamíferos13,14, 15 , 16 , 17. La glia perineurial divide, crece y envuelve alrededor de la glia subperineurial para regular la difusión de metabolitos y moléculas grandes6,10,18,19. La formación de BBB se completa en 18,5 h después de la puesta de huevos (AEL) a 25 oC5,8. Estudios anteriores han identificado genes que son reguladores críticos de la formación BBB20,21,22. Para comprender mejor las funciones exactas de estos genes, es importante examinar el efecto de la mutación de estos reguladores potenciales en la integridad de bBB. Si bien estudios anteriores han esbozado enfoques para decir la integridad de BBB en embriones y larvas, aún no se ha descrito un protocolo integral para este ensayo5,7. Este protocolo paso a paso describe los métodos para decir la integridad de BBB durante las etapas embrionarias de D. melanogaster y la tercera etapa larval instar.

Protocol

1. Recogida de muestras Colección embryo En cada jaula de recolección de embriones, utilice un mínimo de 50 hembras vírgenes con 20 a 25 machos para las colecciones. Incubar estas moscas en una botella con alimentos de agar harina de maíz(Tabla de Materiales)durante 1 a 2 días antes de comenzar las colecciones23.NOTA: Se pueden utilizar más moscas, pero la proporción de mujeres a hombres debe mantenerse en 2:1. …

Representative Results

Los métodos descritos aquí permiten la visualización de la integridad del BBB en todo el SNC en embriones y larvas de D. melanogaster (Figura 1). Una vez completada la formación de BBB en la embriogénesis tardía, el BBB funciona para excluir moléculas grandes del cerebro y VNC5. Este protocolo aprovecha esta función para probar la formación BBB. Cuando se inyectaron embriones de tipo salvaje (Oregon R) en etapa tardía 17 (20-21 h de edad) con 10 kDa…

Discussion

Este protocolo proporciona una descripción completa de los pasos necesarios para el ensayo para la integridad de BBB durante las etapas larantes de D. melanogaster de D. melanogaster. Se han descrito enfoques similares en otros lugares para probar la integridad del BBB durante el desarrollo, así como en las etapas adultas5,7,29,30. Sin embargo, las descripciones de los procedimientos…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen al Dr. F. Bryan Pickett y al Dr. Rodney Dale por el uso de equipos para inyección. Este trabajo fue financiado por fondos de investigación de la Universidad Loyola de Chicago a M.D., D.T., y J.J.

Materials

10 kDa sulforhodamine 101 acid chloride (Texas Red) Dextran ThermoFisher Scientific D1863 Dextran should be diluted in autoclaved ddH2O to a concentration of 25 mg/mL.
20 μL Gel-Loading Pipette Tips Eppendorf 22351656
100% Ethanol (200 proof) Pharmco-Aaper 11000200
Active Dry Yeast Red Star
Agar Fisher Scientific BP1423
Agarose Fisher Scientific BP160-500
Air Compressor DeWalt D55140
Apple Juice Mott's Natural Apple Juice
Bleach Household Bleach 1-5% Hypochlorite
Borosilicate Glass Capillaries World Precision Instruments 1B100F-4
Bottle Plugs Fisher Scientific AS-277
Cell Strainers BD Falcon 352350
Confocal Microscope Olympus FV1000 Samples imaged using 20x objective (UPlanSApo 20x/ 0.75)
Cotton-Tipped Applicator Puritan 19-062614
Double-Sided Tape 1/2" Scotch
Dumont Tweezers; Pattern #5; .05 X .01mm Tip Roboz RS-5015
Fly Food Bottles Fisher Scientific AS-355
Fly Food Vials Fisher Scientific AS-515
Foot Pedal Treadlite II T-91-S
Gel Caster Bio-Rad 1704422
Gel Tray Bio-Rad 1704436
Glass Pipette VWR 14673-010
Glycerol Fisher Scientific BP229-1
Granulated sugar Purchased from grocery store.
Halocarbon Oil Lab Scientific, Inc. FLY-7000
Light Source Schott Ace I
Manipulator Stand World Precision Instruments M10
Micromanipulator World Precision Instruments KITE-R
Micropipette Puller Sutter Instrument Co. P-97
Needle Holder World Precision Instruments MPH310
Nightsea Filter Sets Electron Microscopy Science SFA-LFS-CY For visualization of YFP
Nightsea Full Adapter System w/ Royal Blue Color Light Head Electron Microscopy Science SFA-RB For visualization of GFP
Paintbrush Simply Simmons Chisel Blender #6
Pipetter Fisher Scientific 13-683C
Pneumatic Pump World Precision Instruments PV830 This is also referred to as a microinjector or pressure regulator. Since the model used in our study is no longer available this is one alternative.
Potassium Chloride Fisher Scientific BP366-500
Potassium Phosphate Dibasic Fisher Scientific BP363-500
Small Embryo Collection Cages Genesee Scientific 59-100
Sodium Chloride Fisher Scientific BP358-212
Sodium Phosphate Dibasic Anhydrous Fisher Scientific BP332-500
Steel Base Plate World Precision Instruments 5052
Stereomicroscope Carl Zeiss Stemi 2000 Used for tissue dissection.
Stereomicroscope with transmitted light source Baytronix Used for injection.
Tegosept (p-hydroxybenzoic acid, methyl ester) Genesee Scientific 20-258
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500 Nonionic surfactant
Vial Plugs Fisher Scientific AS-273

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Diesen Artikel zitieren
Davis, M. J., Talbot, D., Jemc, J. Assay for Blood-brain Barrier Integrity in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (151), e60233, doi:10.3791/60233 (2019).

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