Summary

ייצור חלבוני פיוז'ן IgG המתבטאים באופן ארעי בניקוטיאנה

Published: January 16, 2021
doi:

Summary

אנו מתארים כאן שיטה פשוטה לביטוי, חילוץ, וטיהור של IgG אנושי רקומביננטי התמזגו GFP בניקוטיאנה benthamiana. פרוטוקול זה ניתן להרחיב לטיהור והדמיה חזותית של חלבונים רבים המשתמשים כרומטוגרפיה עמודה. יתר על כן, הפרוטוקול הוא הסתגלות למעבדת הוראה פנים אל פנים ווירטואלית במכללה, מתן מחקר מבוסס פרוייקט.

Abstract

ביקוש גבוה לנוגדנים כהתערבויות טיפוליות למחלות זיהומיות, מטבוליות, אוטואימוניות, ניאופלסטיות ומחלות אחרות יוצר צורך הולך וגדל בפיתוח שיטות יעילות לייצור נוגדנים רקומביננטיים. נכון ל-2019, היו יותר מ-70 נוגדנים חד-קלונליים שאושרו על ידי ה-FDA, ויש פוטנציאל צמיחה אקספוננציאלי. למרות הבטחתם, הגבלת הגורמים לשימוש נרחב הם עלויות ייצור ומורכבות. בפוטנציה, צמחים מציעים אסטרטגיות ייצור חלבון בעלות נמוכה, בטוחה ומדרגית בקלות. צמחים כמו Nicotiana benthamiana לא רק יכול לקפל כראוי להרכיב חלבונים יונקים מורכבים, אלא גם יכול להוסיף שינויים קריטיים לאחר תרגום דומה לאלה המוצעים על ידי תרבויות תאים יונקים. בעבודה זו, באמצעות GFP מקורי וגרסה חומצית יציבה של חלבון פלורסנט ירוק (GFP) התמזגו לנוגדנים חד-שבטיים אנושיים, הצלחנו לדמיין את כל תהליך ההבעה והטיהור של נוגדנים ארעיים מצמחי N. benthamiana. בהתאם למטרת הניסוי, היתוך GFP מקורי יכול להבטיח הדמיה קלה יותר במהלך שלב הביטוי בצמחים, בעוד היתוך GFP יציב חומצה מאפשר הדמיה במהלך עיבוד במורד הזרם. הליך מדרגי וישיר זה יכול להתבצע על ידי חוקר יחיד לייצר כמויות מיליגרם של נוגדנים טהורים מאוד או חלבוני היתוך נוגדנים בעניין של ימים באמצעות רק כמה צמחים קטנים. טכניקה כזו יכולה להיות מורחבת להדמיה של כל סוג של תהליך טיהור נוגדנים ופוטנציאל חלבונים רבים אחרים, הן במערכות צמחים והן במערכות ביטוי אחרות. יתר על כן, טכניקות אלה יכולות להפיק תועלת מהוראות וירטואליות ולהיצא לפועל במעבדת הוראה על ידי סטודנטים לתואר ראשון בעלי ניסיון קודם מינימלי עם טכניקות ביולוגיה מולקולרית, מתן בסיס למחקר מבוסס פרוייקט עם יישומים בעולם האמיתי.

Introduction

דו”חות התעשייה מצביעים על כך ש-13 מתוך 20 התרופות המרוויחות ביותר בארה”ב היו ביולוגיות (תרופות מבוססות חלבון), מבין תשע מהן היו נוגדנים. נכון ל-2019, היו יותר מ-570 נוגדנים (Ab)טיפוליים בשלבי פיתוח קליניים שונים 1,2,3. המכירות הגלובליות הנוכחיות של Ab עולות על 100 מיליארד דולר, והשוק הטיפולי המונוקלונלי Ab (mAb) צפוי להניב עד 300 מיליארד דולר עד 20251,4. עם ביקוש גבוה כזה ותוססות צפויות בהכנסות, חוקרים כבר עובדים כדי לפתח דרכים לייצר Ab therapeutics בקנה מידה גדול יותר, עם איכות גבוהה יותר ועלויות נמוכות יותר. מערכות ביטוי המבוססות על צמחים כוללות מספר יתרונות על פני קווי תאים מסורתיים של יונקים לייצור במחיר סביר ובהיקף גדול של Ab therapeutics5,6. ייצור של טיפולים חלבונים בצמחים (“pharming מולקולרי”) אינו דורש ביו-כורים יקרים או מתקני תרבות תאים כמו טכניקות מסורתיות של תרבותתאים יונקים 7,8. צמחים לא יכולים לנדבק בפתוגנים אנושיים, מזעור זיהום פוטנציאלי9. ביטוי חלבון ארעי וטרנסגני המבוסס על צמחים יכול להיות מנוצל כחלופות בעלות נמוכה יותר למערכות ייצור יונקים אוחיידקים 10. למרות צמחים טרנסגניים מועדפים לייצור יבול, ייצור חלבון רקומביננטי באמצעות שיטה זו יכול לדרוש שבועות עד חודשים. התקדמות בביטוי ארעי באמצעות וקטורים ויראליים באמצעות מזרק או ואקום אגרו-סינון מאפשרת ייצור בקנה מידה קטן וגדול, בהתאמה, של החלבון הרצויבימים 11,12,13,14. ייצור mAbs נגד אבולה, דנגה, זיקה, וחלבונים רקומביננטיים רבים אחרים, יוצרו וטוהרו במהירות וביעילות באמצעות ביטוי ארעי בצמחים N. benthamiana 15,16,17,18,19. נסיבות אלה הופכות ביטוי ארעי המבוסס על צמחים לאפשרות אטרקטיבית לפיתוח טיפולי Ab מרובים והשיטות שהוצגו בפרוטוקולזה 20.

הדור הראשון mAbs היו של נגזרת מורין, אשר הביא אימונוגנים לא ספציפיים כאשר נעשה שימוש בניסויים בבניאדם 21. לאורך זמן, כימרית, הומנית, ובסופו של דבר, שרירי בטן אנושיים לחלוטין יוצרו כדי להפחית את החיסונים המושרה על ידי Ab therapeutics. למרבה הצער, חלק Abs אלה עדיין לגרום immunogenicity המארח בשל הבדלים גליקוסילציה21. התפתחויות בהנדסת צמחים אפשרו שינוי של גליקנים Ab, וזה חיוני מאז היציבות והפונקציה של Ab יכול להיות מושפע באופן משמעותי על ידי מצב גליקוסילציהשלה 22. ההתקדמות אפשרה ייצור במערכות צמחים של ביטוי ברמה גבוהה של mAbs הומני, המכיל גליקנים אנושיים וכתוצאה מכך את התכונות הביולוגיות הרצויות של תרופות אדם בייצורהמוני 19,21.

בנוסף שרירי בטן רקומביננטי, מולקולות היתוך Ab (היתוך Ab) נחקרו למטרות שונות בעשורים האחרונים. היתוך Ab מורכב לעתים קרובות שבר Ab או Ab התמזגו מולקולה או חלבון נועדו לעורר תגובות מתאי השפעה חיסונית23. מולקולות אלה נוצרו כהתערבויות טיפוליות פוטנציאליות לטיפול בפתולוגיות שונות כגוןסרטן ומחלות אוטואימוניות 24,25,26,27. תסביך חיסוני רקומביננטי (RICs) הם סוג נוסף של היתוך Ab שהועסקו כמועמדים לחיסון28. RICs לנצל את היכולת של המערכת החיסונית לזהות אזורי Fc של היתוך Ab נמצאו כדי לשפר את immunogenicity בשילוב עםפלטפורמות חיסון אחרות 29,30,31.

חלבון פלורסנט ירוק (GFP) הוא חלבון ביולומיין המופק מדוזה אקוורה ויקטוריה, אשר פולט אור ירוק כאשר מתרגש אור אולטרהסגול 32,33. במהלך השנים, השימוש של GFP כסמן חזותי של ביטוי גנים התרחב מביטוי בEscherichia קולי למערכות ביטוי חלבון רבות, כולל נ. benthamiana צמחים 34,35,36,37,38. סמנים גלויים, כגון GFP, יש השלכות בשפע בהוראה ולמידה של מושגים מדעיים. סטודנטים רבים ברמה ההדרגתי מתארים קשיים בתפיסת מושגים מדעיים כאשר הרעיון הנלמד אינו גלוי לעין בלתי, כגון המושגים של ביולוגיה מולקולרית ותחומיםקשורים 39. סמנים חזותיים, כמו GFP, יכולים לתרום לעיבוד מידע הקשור לתהליכים המדעיים, יכולים לעזור להפחית את הקשיים שהתלמידים מדווחים עליהם בלימוד מושגים מדעיים רבים.

למרות GFP משמש לעתים קרובות כסמן כדי לציין גן וביטוי vivo, קשה לדמיין את זה בתהליכים במורד הזרם אם באמצעות תנאים חומציים. נסיבות אלה נובעות בעיקר מכך ש-GFP אינו שומר על המבנה שלו ועל הפלואורסץ הנובע מכך ב-pH40 נמוך. סביבות חומציות זמניות נדרשות לעתים קרובות בתהליכי טיהור שונים, כגון חלבון G, חלבון A, וחלבון L כרומטוגרפיה, לעתים קרובותמנוצל עבור Ab טיהור 41,42,43,44. מוטנטים GFP שימשו כדי לשמור על פלואורסצינטי בתנאים חומציים45,46.

בכאן אנו מתארים שיטה פשוטה לביטוי, חילוץ, וטיהור של חלבוני היתוך IgG רקומביננטי בצמחים N. benthamiana. יצרנו GFP מסורתי התמזגו N-terminus של שרשרת כבדה IgG הומני, יצירת היתוך GFP-IgG. במקביל, פיתחנו את ההיתוך של רצף ממוטב codon צמח עבור GFP חומצה יציבה (asGFP) כדי N-terminus של שרשרת כבדה IgG הומני, יצירת היתוך asGFP-IgG. היתרונות של ייצור GFP-IgG כוללים את היכולת לדמיין את הנוכחות של חלבון היעד במהלך הביטוי, בעוד asGFP-IgG מאפשר לראות את הנוכחות של חלבון רקומביננטי לא רק שלבי הביטוי והחילוץ אלא גם בשלבי הטיהור של החלבון. פרוטוקול זה יכול להיות מותאם לייצור, טיהור, והדמיה חזותית של מגוון של חלבוני היתוך GFP המיוצר N. benthamiana ומטוהר באמצעות טכניקות כרומטוגרפיה הדורשות pH נמוך. התהליך יכול להיות מותאם גם לכמויות שונות של חומר עלה. בעוד Abs וחלבונים היתוך מתויגים GFP או asGFP אינם מיועדים לשימוש עבור טיפולים, שיטות אלה יכול להיות שימושי כמו פקדים במהלך ניסויים, ניתן גם להשתמש ככלי הוראה לביולוגיה מולקולרית ותאי וביוטכנולוגיה, הן פנים אל פנים וכמעט.

Protocol

1. לטפח נ. צמחים benthamiana מניחים כדורי כבול אדמה על מגש ויוצקים מבושלים קודם לכן, עדיין חמים (כ-40-45 מעלות צלזיוס), מים מעל כדורי כבול להתרחבות מלאה. לאחר כדורי מורחבים באופן מלא, מניחים 2-3 N. זרעי benthamiana על כל כדור כבול באמצעות פינצטה. יוצקים כ-0.5 לתוך מים כדי ?…

Representative Results

מחקר זה מדגים שיטה קלה ומהירה לייצר חלבונים רקומביננטיים ולדמיין אותם לאורך תהליכים במורד הזרם. באמצעות N. benthamiana ובעקבות הפרוטוקול שסופק, ייצור חלבון רקומביננטי המתואר כאן ניתן להשיג בתוך פחות משבוע. זרימת העבודה הכוללת של ביטוי צמח, חילוץ וטיהור מוצגת באות 1. השלבים ?…

Discussion

פרוטוקול זה יכול לשמש לאימות חזותי של כל Ab רקומביננטי או חלבון רקומביננטי המיוצר בצמחים N. benthamiana, כולל אלה הדורשים חשיפה זמנית לסביבות חומציות למטרותטיהור עמודה 42,43,44. יתר על כן, ההיתוך של asGFP לחלבונים אחרים במערכות ביטוי שונות יכול ל?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים למריה פיה דיפאלמה על עריכת הסרטון. אנו מודים גם למשרד לסיוע חינוכי ושירותי סטודנטים באוניברסיטת אריזונה על הסיוע הנדיב שלהם בדמי פרסום. מחקר עבור פרוטוקול זה נתמך על ידי בית הספר למדעי החיים, אוניברסיטת אריזונה.

Materials

5 mL syringe any N/A
50 mL syringe any N/A
Agar SIGMA-ALDRICH A5306
Blender with cups any N/A
Bromophenol blue Bio-Rad 1610404
DTT (DL-Dithiothreitol) MP BIOMEDICALS 219482101
EDTA (Ethylenedinitrilo)tetraacetic acid SIGMA-ALDRICH E-6760
Ethanol any N/A
Glycerol G-Biosciences BTNM-0037
Glycine SIGMA-ALDRICH G7126-500G
HCl (Hydrochloric acid) EMD MILLIPORE CORPORATION HX0603-4
Heating block any reputable supplier N/A
Jiffy-7 727 w/hole peat pellets Hummert International 14237000
Kanamycin Gold Biotechnology Inc K-120-100
KCl (Potassium Chloride) SIGMA-ALDRICH P9541-500G
KH2PO4 (Potassium Phosphate) J.t.baker 3248-05
KOH (Potassium Hydroxide) VWR BDH0262
Magnesium sulfate heptahydrate SIGMA-ALDRICH M2773
MES (2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid) SIGMA-ALDRICH M8250
Miracloth Millipore 4 75855-1R
Moisture control potting mix Miracle-Gro 755783
Na2HPO4 (Sodium Phosphate) J.t.baker 3827-01
NaCl (Sodium Chloride) Santa Cruz Biotechnology sc-203274C
Nicotiana benthamiana seeds any reputable supplier N/A
PMSF (Phenylmethylsulfonyl Fluoride) G-Biosciences 786-787
Polypropylene Column any N/A
Precision Plus Protein Dual Color Standards Bio-Rad 1610394
Protein G resin Thermo Fisher Scientific 20399
Rifampicin Gold Biotechnology Inc R-120-25
SDS (Sodium Dodecyl Sulfate) G-Biosciences DG093
Sodium Ascorbate SIGMA-ALDRICH A7631-500G
Spectrophotometer any reputable supplier N/A
Titan3 0.75 µm glass fiber filter ThermoScientific 40725-GM
Tray for peat pellets with dome any N/A
TRIS Base J.t.baker 4109-02
Tris-HCl Amresco M108-1KG
Tryptone SIGMA-ALDRICH 17221
UV lamp any N/A
Water Soluble All Purpose Plant Food Miracle-Gro 2000992
Yeast extract SIGMA-ALDRICH 9182

Referenzen

  1. Lu, R. M., et al. Development of therapeutic antibodies for the treatment of diseases. Journal of Biomedical Science. 27 (1), (2020).
  2. Kaplon, H., Reichert, J. M. Antibodies to watch in 2019. mAbs. 11 (2), 219-238 (2019).
  3. The top 20 drugs by U.S. sales. FiercePharma Available from: https://www.fiercepharma.com/special-report/top-20-drugs-by-2018-u-s-sales (2018)
  4. Grilo, A. L., Mantalaris, A. The Increasingly Human and Profitable Monoclonal Antibody Market. Trends in Biotechnology. 37 (1), 9-16 (2019).
  5. Kim, M. -. Y., et al. Novel vaccination approach for dengue infection based on recombinant immune complex universal platform. Vaccine. 33 (15), 1830-1838 (2015).
  6. Twyman, R. M., Schillberg, S., Fischer, R. Transgenic plants in the biopharmaceutical market. Expert Opinion on Emerging Drugs. 10 (1), 185-218 (2005).
  7. Stoger, E., Fischer, R., Moloney, M., Ma, J. K. -. C. Plant Molecular Pharming for the Treatment of Chronic and Infectious Diseases. Annual Review of Plant Biology. 65 (1), 743-768 (2014).
  8. Buyel, J. F., Fischer, R. Predictive models for transient protein expression in tobacco (Nicotiana tabacum L.) can optimize process time, yield, and downstream costs. Biotechnology and Bioengineering. 109 (10), 2575-2588 (2012).
  9. Yao, J., Weng, Y., Dickey, A., Wang, K. Y. Plants as factories for human pharmaceuticals: Applications and challenges. International Journal of Molecular Sciences. 16 (12), 28549-28565 (2015).
  10. Mor, T. S., Moon, Y. -. S., Palmer, K. E., Mason, H. S. Geminivirus vectors for high-level expression of foreign proteins in plant cells. Biotechnology and Bioengineering. 81 (4), 430-437 (2003).
  11. Hefferon, K. L. Plant virus expression vectors set the stage as production platforms for biopharmaceutical proteins. Virology. 433 (1), 1-6 (2012).
  12. Yamamoto, T., et al. Improvement of the transient expression system for production of recombinant proteins in plants. Scientific Reports. 8 (1), 4755 (2018).
  13. Zhong, G. Y., et al. Commercial production of aprotinin in transgenic maize seeds. Molecular Breeding. 5 (4), 345-356 (1999).
  14. Giddings, G., Allison, G., Brooks, D., Carter, A. Transgenic plants as factories for biopharmaceuticals. Nature Biotechnology. 18 (11), 1151-1155 (2000).
  15. Fulton, A., Lai, H., Chen, Q., Zhang, C. Purification of monoclonal antibody against Ebola GP1 protein expressed in Nicotiana benthamiana. Journal of Chromatography A. 1389, 128-132 (2015).
  16. Diamos, A., et al. A highly expressing, soluble, and stable plant-made IgG fusion carrying Zika virus envelope domain III elicits potent immunogenic responses in mice without adjuvant. Frontiers in immunology. 3140 (11), (2020).
  17. Hunter, J. G. L., et al. Evaluation of a toxoid fusion protein vaccine produced in plants to protect poultry against necrotic enteritis. PeerJ. 2019 (3), 6600 (2019).
  18. Dent, M., et al. Plant-produced anti-dengue virus monoclonal antibodies exhibit reduced antibody-dependent enhancement of infection activity. Journal of General Virology. 97 (12), 3280-3290 (2016).
  19. Diamos, A. G., et al. High Level Production of Monoclonal Antibodies Using an Optimized Plant Expression System. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 472 (2020).
  20. Olinger, G. G., et al. Delayed treatment of Ebola virus infection with plant-derived monoclonal antibodies provides protection in rhesus macaques. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (44), 18030-18035 (2012).
  21. Mastrangeli, R., Palinsky, W., Bierau, H. Glycoengineered antibodies: towards the next-generation of immunotherapeutics. Glycobiology. 29 (3), 199-210 (2019).
  22. Montero-Morales, L., Steinkellner, H. Advanced Plant-Based Glycan Engineering. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 6, 81 (2018).
  23. Joosten, V., Lokman, C., vanden Hondel, C. A. M. J. J., Punt, P. J. The production of antibody fragments and antibody fusion proteins by yeasts and filamentous fungi. Microbial Cell Factories. 2 (1), 1-15 (2003).
  24. Müller, D. Antibody fusions with immunomodulatory proteins for cancer therapy. Pharmacology and Therapeutics. 154, 57-66 (2015).
  25. Bootz, F., Neri, D. Immunocytokines: A novel class of products for the treatment of chronic inflammation and autoimmune conditions. Drug Discovery Today. 21 (1), 180-189 (2016).
  26. Jafari, R., Zolbanin, N. M., Rafatpanah, H., Majidi, J., Kazemi, T. Fc-fusion Proteins in Therapy: An Updated View. Current Medicinal Chemistry. 24 (12), (2017).
  27. Brinkmann, U., Kontermann, R. E. The making of bispecific antibodies. mAbs. 9 (2), 182-212 (2017).
  28. Mason, H. S. Recombinant immune complexes as versatile and potent vaccines. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 12 (4), 988-989 (2016).
  29. Mason, H. S. Recombinant immune complexes as versatile and potent vaccines. Human Vaccines and Immunotherapeutics. 12 (4), 988-989 (2016).
  30. Diamos, A. G., et al. Vaccine synergy with virus-like particle and immune complex platforms for delivery of human papillomavirus L2 antigen. Vaccine. 37 (1), 137-144 (2019).
  31. Diamos, A. G., et al. Codelivery of improved immune complex and virus-like particle vaccines containing Zika virus envelope domain III synergistically enhances immunogenicity. Vaccine. 38 (18), 3455-3463 (2020).
  32. Prasher, D. C., Eckenrode, V. K., Ward, W. W., Prendergast, F. G., Cormier, M. J. Primary structure of the Aequorea victoria green-fluorescent protein. Gene. 111 (2), 229-233 (1992).
  33. Chalfie, M., Tu, Y., Euskirchen, G., Ward, W. W., Prasher, D. C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 263 (5148), 802-805 (1994).
  34. Palm, M., Baumstark-Khan, C., Horneck, G. Green Fluorescent Protein (GFP) Expression in Mammalian Cells After UV-Irradiation. Fundamentals for the Assessment of Risks from Environmental Radiation. , 311-316 (1999).
  35. Paemeleire, K., et al. Intercellular calcium waves in HeLa cells expressing GFP-labeled connexin 43, 32, or 26. Molecular Biology of the Cell. 11 (5), 1815-1827 (2000).
  36. Harper, B. K., Stewart, C. N. Patterns of Green Fluorescent Protein Expression in Transgenic Plants. Plant Molecular Biology Reporter. 18 (2), 141 (2000).
  37. Kaishima, M., Ishii, J., Matsuno, T., Fukuda, N., Kondo, A. Expression of varied GFPs in Saccharomyces cerevisiae: Codon optimization yields stronger than expected expression and fluorescence intensity. Scientific Reports. 6, (2016).
  38. . Glow in the Dark: Fluorescent Proteins as Cell and Tissue-Specific Markers in Plants Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21772029/ (2020)
  39. Mnguni, L. E. The theoretical cognitive process of visualization for science education. SpringerPlus. 3 (1), 1-9 (2014).
  40. Shaner, N. C., Patterson, G. H., Davidson, M. W. Advances in fluorescent protein technology. Journal of Cell Science. 120 (24), 4247-4260 (2007).
  41. Bjorck, L., Kronvall, G. Purification and some properties of streptococcal protein G, a novel IgG-Binding reagent. The Journal of Immunology. 133 (2), (1984).
  42. Andrew, S. M., Titus, J. A. Purification of Immunoglobulin G. Current Protocols in Immunology. 21 (1), 1-12 (2001).
  43. Hober, S., Nord, K., Linhult, M. Protein A chromatography for antibody purification. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 848 (1), 40-47 (2007).
  44. Vola, R., Lombardi, A., Tarditi, L., Björck, L., Mariani, M. Recombinant proteins L and LG: efficient tools for purification of murine immunoglobulin G fragments. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications. 668 (2), 209-218 (1995).
  45. Shinoda, H., Ma, Y., Nakashima, R., Sakurai, K., Matsuda, T., Nagai, T. Acid-Tolerant Monomeric GFP from Olindias formosa. Cell Chemical Biology. 25 (3), 330-338 (2018).
  46. Roberts, T. M., et al. Identification and Characterisation of a pH-stable GFP. Scientific Reports. 6 (1), 1-9 (2016).
  47. Brunelle, J. L., Green, R. Coomassie blue staining. Methods in Enzymology. 541, 161-167 (2014).
  48. Mahmood, T., Western Yang, P. C. Western blot: Technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medical Sciences. 4 (9), 429-434 (2012).
  49. Vessoni Penna, T. C., Ishii, M., Cholewa, O., de Souza, L. C. Thermal characteristics of recombinant green fluorescent protein (GFPuv) extracted from Escherichia coli. Letters in Applied Microbiology. 38 (2), 135-139 (2004).
  50. Kang, S. J., Park, E. A., Lee, D. H., Hong, K. W. Comparison of the stability of eGFP displayed on the Bacillus subtilis spore surface using CotB and C-terminally truncated CotB proteins as an anchoring motif under extreme conditions. Applied Biological Chemistry. 62 (1), 41 (2019).
  51. Kuta, D. D., Tripathi, L. Agrobacterium-induced hypersensitive necrotic reaction in plant cells: a resistance response against Agrobacterium-mediated DNA transfer. African Journal of Biotechnology. 4 (8), 752-757 (2005).
  52. Qiusheng, Z., Bao, J., Likun, L., Xianhua, X. Effects of antioxidants on the plant regeneration and GUS expressive frequency of peanut (Arachis hypogaea) explants by Agrobacterium tumefaciens. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 81 (1), 83-90 (2005).
  53. Diamos, A. G., Rosenthal, S. H., Mason, H. S. H.S. 5′ and 3′ Untranslated Regions Strongly Enhance Performance of Geminiviral Replicons in Nicotiana benthamiana Leaves. Frontiers in Plant Science. 7, 200 (2016).
  54. Huang, Z., Chen, Q., Hjelm, B., Arntzen, C., Mason, H. A DNA replicon system for rapid high-level production of virus-like particles in plants. Biotechnology and Bioengineering. 103 (4), 706-714 (2009).
  55. Diamos, A. G., Mason, H. S. Modifying the Replication of Geminiviral Vectors Reduces Cell Death and Enhances Expression of Biopharmaceutical Proteins in Nicotiana benthamiana Leaves. Frontiers in Plant Science. 9, 1974 (2019).
  56. Gordon-Kamm, W., et al. Stimulation of the cell cycle and maize transformation by disruption of the plant retinoblastoma pathway. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (18), 11975-11980 (2002).
  57. Villemont, E., Dubois, F., Sangwan, R. S., Vasseur, G., Bourgeois, Y., Sangwan-Norreel, B. S. Role of the host cell cycle in the Agrobacterium-mediated genetic transformation of Petunia: Evidence of an S-phase control mechanism for T-DNA transfer. Planta. 201 (2), 160-172 (1997).
  58. Regnard, G. L., Halley-Stott, R. P., Tanzer, F. L., Hitzeroth, I. I., Rybicki, E. P. High level protein expression in plants through the use of a novel autonomously replicating geminivirus shuttle vector. Plant Biotechnology Journal. 8 (1), 38-46 (2010).
  59. Chen, Q., He, J., Phoolcharoen, W., Mason, H. S. Geminiviral vectors based on bean yellow dwarf virus for production of vaccine antigens and monoclonal antibodies in plants. Human Vaccines. 7 (3), 331-338 (2011).
  60. Morton, T. G., Gold, A. J., Sullivan, W. M. Influence of Overwatering and Fertilization on Nitrogen Losses from Home Lawns. Journal of Environmental Quality. 17 (1), 124-130 (1988).
  61. Brown, J. C. Iron Chlorosis in Plants. Advances in Agronomy. 13, 329-369 (1961).
  62. Morton, E. R., Fuqua, C. Laboratory Maintenance of Agrobacterium. Current Protocols in Microbiology. , (2012).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Kamzina, A. S., DiPalma, M. P., Hunter, J. G. L., Diamos, A. G., Armer, B., Mor, T. S., Mason, H. S. Production of IgG Fusion Proteins Transiently Expressed in Nicotiana benthamiana. J. Vis. Exp. (167), e61774, doi:10.3791/61774 (2021).

View Video