Nós descrevemos um método para melhorar significativamente a enxertia ortotópico de células de câncer de pulmão aos pulmões murino pelo pré-condicionamento das vias aéreas com lesão. Esta abordagem também pode ser aplicada para estudar interações do estroma dentro do microambiente pulmonar, disseminação metastática, co-morbidades do câncer pulmonar, e gerar mais eficiência paciente derivada xenografts.
Câncer de pulmão é uma doença refratária tratamento mortal que é biologicamente heterogênea. Para compreender e tratar eficazmente o espectro completo clínico de malignidade torácica, são necessários modelos animais adicionais que podem recapitular estágios e subtipos de câncer de pulmão humano diverso. Aloenxerto ou enxerto heterólogo modelos são versáteis e permitem a quantificação da capacidade tumorigênico em vivo, usando células malignas de origem humana ou murino. No entanto, métodos anteriormente descritos de enxertia de células de câncer de pulmão foram realizados em locais não-fisiológicas, tais como o flanco dos ratos, devido a ineficiência de transplante ortotópico de células para os pulmões. Neste estudo, descrevemos um método para melhorar a ortotópico enxertia do pulmão câncer célula pré-condicionamento das vias aéreas de ratos com bleomicina de agente induzindo a fibrose. Como um experimento de prova de conceito, nós aplicamos esta abordagem para engraft células tumorais de subtipo de adenocarcinoma do pulmão, obtidos de fontes humanas, ou rato em várias cepas de ratos. Demonstramos que ferir as vias aéreas com bleomicina antes da injeção de células de tumor aumenta a enxertia de células tumorais de 0-17% a 71-100%. Significativamente, esse método aprimorado incidência de tumor de pulmão e consequência subsequente usando modelos e diferentes cepas de rato. Além disso, células de câncer de pulmão engrafted disseminam dos pulmões em órgãos distantes relevantes. Assim, nós fornecemos um protocolo que pode ser usado para estabelecer e manter novos modelos ortotópico de câncer de pulmão com limitação da quantidade de células ou biospecimen e avaliar quantitativamente a oncogenicidade capacidade das células de câncer de pulmão em configurações fisiologicamente relevantes .
Câncer de pulmão é a principal causa de câncer relacionados a mortes em todo o mundo1. Pacientes com câncer de pulmão eventualmente sucumbiram de metástase para órgãos distantes, nomeadamente para o sistema nervoso central, fígado, glândulas supra-renais e os ossos2,3,4. Malignidade torácica foram tradicionalmente classificada como câncer de pulmão de pequenas células (CPPC) ou não-pequenas células lung cancer (NSCLC)5. CPNPC é o mais frequentemente diagnosticado malignidade e podem ser subdividido em diferentes subtipos histológicos, incluindo adenocarcinoma do pulmão (LUAD) e pulmão carcinoma de células escamosas (LUSC)6. Análise genômica dos cancros do pulmão primário humano ressecadas revelou que tumores dentro de um determinado histotype também podem expressar diversas perturbações moleculares, ainda mais, contribuindo para sua progressão clínica divergente e confundindo o prognóstico do paciente. A notável heterogeneidade dos cancros do pulmão representa um desafio significativo para o projeto racional, testes pré-clínicos e implementação de estratégias terapêuticas eficazes. Consequentemente, há uma necessidade de ampliar o repertório de modelos de câncer de pulmão experimental tractable para estudar as diversas origens celulares, subtipos moleculares e fases desta doença.
Várias abordagens usando modelos animais têm sido empregadas para estudar pulmão câncer na vivo, cada um com suas próprias vantagens e desvantagens dependendo as questà µ es biológicas de interesse. Modelos do rato geneticamente modificados (GEMMs) podem direcionar alterações genéticas específicas em um tipo de células progenitoras determinado, resultando em tumores que o progresso dentro de um hospedeiro imunocompetentes7. Embora extremamente poderoso e clinicamente relevantes, a morbidade de latência, variabilidade e/ou pulmão tumor associada com GEMMs pode ser proibitiva para certas medidas quantitativas e a detecção de metástases de fase final em órgãos distantes8. Uma abordagem complementar é o uso de modelos de aloenxerto, segundo o qual as células de câncer de pulmão, obtidos diretamente a partir de um tumor de rato ou derivado primeiro como linhagens celulares estabelecidas na cultura, são re-introduzidas em syngeneic anfitriões. De forma análoga, xenografts de câncer de pulmão são estabelecidos de amostras de paciente tumor derivado ou linhas de células humanas. Xenografts de linha celular humana ou pacientes derivadas xenografts (PDXs) são geralmente mantidos em ratos imunodeprimidos e, portanto, impedem a completa vigilância imune9. Apesar desta desvantagem, eles fornecem uma avenida para propagar a limitar as quantidades de humano biospecimens e estudo fundamental na vivo Propriedades de células cancerosas humanas, que codificam as aberrações genômicas mais complexas que os tumores GEMM.
Uma propriedade útil de aloenxertos e xenografts é que eles são receptivos a tradicional ensaios limitante de diluição de célula, empregados para quantificar a frequência de tumor iniciando células (TICs) dentro de uma população de células malignas10. Nesses experimentos, um número definido de células é injetado por via subcutânea o flanco dos animais e a frequência de tiques pode ser estimada com base na taxa de tomada de tumor. Tumores subcutâneos, entretanto, podem ser mais hipóxico11 e não podem modelo chaves restrições fisiológicas do microambiente do tumor de pulmão. Entrega de intratraqueal de tronco epitelial ou progenitoras para os pulmões de ratos é um método para estudar a regeneração pulmonar e das vias respiratórias de biologia de células-tronco12. No entanto, a taxa de enxertia desta técnica pode ser relativamente baixa, a menos que os pulmões são primeiro sujeitas a formas fisiológicas de lesão, tais como infecção viral13,14. Suporte de células estromais inflamatórias e/ou a ruptura da membrana de porão pulmão pode melhorar a retenção das células transplantadas em nichos de células-tronco relevantes na vias aéreas distais15. Fibrose, induzindo agentes também pode pre-condição os pulmões para melhorar a enxertia de células pluripotentes induzidas16 e células-tronco mesenquimais17. Se formas semelhantes de lesão das vias respiratórias podem afetar a taxa de enxertia, capacidade inicial de tumor e a consequência natural de células de câncer de pulmão deve ainda ser sistematicamente avaliada.
Neste estudo, descrevemos um método para aumentar a eficiência de ortotópico enxertia de células de câncer pulmonar, por pré-condicionamento nos pulmões de ratos com lesão. LUAD surge nas vias aéreas distais com um subconjunto significativo desses cânceres desenvolvendo um estroma fibrótico18 que muitas vezes se correlaciona com o prognóstico pobre19. Bleomicina, um peptídeo de híbrido natural nonribosomal-policetídeo, tem sido amplamente utilizada para induzir fibrose pulmonar em ratos20. Instilação de vias aéreas de bleomicina promove primeiro atrito epitelial nos alvéolos e recrutamento de células inflamatórias, incluindo macrófagos, neutrófilos e monócitos21. Isto é seguido por tecido remodelação nas vias aéreas distais, membrana basal reorganização22,23 e deposição de matriz extracelular (ECM)24. Os efeitos de uma injeção de bleomicina único são transitórios, com fibrose resolvendo após 30 dias na maioria dos estudos25. Usando modelos tanto aloenxertos e xenoenxertos, testamos se pré-condicionamento das vias aéreas de ratos com bleomicina poderia aumentar significativamente a taxa de tomada de células LUAD nos pulmões.
Marcantes clínicos paralelos foram documentados entre câncer de pulmão e outras doenças crônicas do pulmão36. Em particular, pacientes com fibrose pulmonar idiopática (IPF) tem uma predileção maior para desenvolver câncer de pulmão, e esta associação é independente de fumar história37,38. IPF é caracterizada pela destruição progressiva da arquitetura pulmonar e insuficiência respiratória através da deposição de ECM<s…
The authors have nothing to disclose.
Este estudo foi financiado por concessões do Instituto Nacional de câncer (R01CA166376 e R01CA191489 para D.X. Nguyen) e o departamento de defesa (W81XWH-16-1-0227 para D.X. Nguyen).
Bleomycin | Sigma | B5507-15UN | CAUTION Health hazard GHS08 |
Exel Catheter 24G | Fisher | 1484121 | Remove needle. For intratracheal injection |
Ketamine (Ketaset inl 100 mg/mL C3N 10 mL) | Butler Schein | 56344 | To anesthetize mice |
Xylazine | Butler Schein | 33198 | To anesthetize mice |
Ketoprofen, 5,000 mg | Cayman Chemical | 10006661 | Analgesic |
Puralube Veterinary Ophthalmic Ointment | BUTLER ANIMAL HEALTH COMPANY LLC | 8897 | To prevent eye dryness while under anesthesia |
D-Luciferin powder | Perkin Elmer Health Sciences Inc | 122799 | For luminescent imaging. Reconstitute powder with PBS for a working concentration of 15mg/mL. Protect from Light |
Rodent Intubation stand | Braintree Scientific | RIS-100 | Recommended stand for intratracheal injection |
MI-150 ILLUMINATOR 150W MI-150 | DOLAN-JENNER INDUSTRIES | MI-150 / EEG2823M | To illuminate and visualize trachea |
Graefe Forceps, 2.75 (7 cm) long serrat | Roboz | RS-5111 | For intratracheal injection |
Syringe Luer-Lok Sterile 5ml | BD / Fisher | 309646 | |
Satiny Smooth by Conair Dual Foil Wet/Dry Rechargeable Shaver | Conair | – | To shave mice |
Bonn Scissors, 3.5" straight 15 mm sharp/sharp sure cut blades | Roboz | RS-5840SC | |
15 mL conical tube | BD / Fisher | 352097 | |
1.5 mL centrifuge tubes | USA SCIENTIFIC INC | 1615-5500 | |
Vial Scintillation 7 mL Borosilicate Glass GPI | Fisher | 701350 | |
Filter pipette tips (200 μL) | USA SCIENTIFIC INC | 1120-8710 | |
Phosphate Buffered Saline | Life Technologies | 14190-144 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200-056 | |
DMEM high glucose | Life Technologies | 11965-092 | |
RPMI Medium 1640 | Life Technologies | 11875-093 | |
Fetal bovine serum USDA | Life Technologies | 10437-028 | |
Penicillin-Streptomycin | Life Technologies | 15140-122 | |
Amphotericin B | Sigma | A2942-20ML | |
Trypan Blue Stain 0.4% | Life Technologies | 15250-061 | |
Countess Automated Cell Counter | Life Technologies | AMQAX1000 | |
Flask T/C 75cm sq canted neck, blue cap | Fisher / Corning | 353135 | |
IVIS Spectrum Xenogen Bioluminiscence | Perkin Elmer Health Sciences Inc | 124262 | For in vivo bioluminescence imaging |
Living image software | Perkin Elmer Health Sciences Inc | 128113 | For in vivo bioluminescence analysis |
XGI-8 Gas Anesthesia System | Perkin Elmer Health Sciences Inc | 118918 | For Isoflurane anesthesia |
BD Ultra-Fine II Short Needle Insulin Syringe 1 cc. 31 G x 8 mm (5/16 in) | BD / Fisher | BD328418 | For retro-orbital luciferin injection |
Syringe 1ml | BD / Fisher | 14-823-434 | For intraperitoneal injections |
26 G x 1/2 in. needle | BD / Fisher | 305111 | For intraperitoneal injections |
4% Paraformaldehyde | VWR | 43368-9M | CAUTION Health hazard GHS07, GHS08. For fixing tissue |
Pipet-Lite Pipette, Unv. SL-200XLS+ | METTLER-TOLEDO INTERNATIONAL | 17014411 | |
Mayer's Hematoxylin | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | 517-28-2 | |
Eosin Y stain 0.25% (w/v) in 57% | Fisher | 67-63-0 | |
Masson Trichrome Stain Kit | IMEB Inc | K7228 | For masson trichrome stain to visualize collagen |
Superfrost plus glass slides | Fisher | 1255015 | |
6 well plate | Corning | C3516 | |
Universal Mycoplasma Detection Kit | ATCC | 30-1012K | |
OCT Embedding compound | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | 62550-12 | For embedding tissue for frozen sections |
Leica CM3050 S Research Cryostat | Leica | CM3050 S | To section tissue for staining analysis |
Keyence All-in One Fluorescence Microscope | Keyence | BZ-X700 | |
ImageJ | US National Institutes of Health | IJ1.46 | http://rsbweb.nih.gov/ij/ download.html |
Prism 7.0 for Mac OS X | GraphPad Software, Inc. | – | |
Athymic (Crl:NU(NCr)-Foxn1nu) mice | Charles River | NIH-553 | |
NSG (NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ) mice | Jackson Laboratories | 5557 | |
B6129SF1/J mice | Jackson Laboratories | 101043 | |
NIH-H2030 cells | ATCC | CRL-5914 | |
368T1 | generously provided by Monte Winslow (Standford University) | – | |
PC9 cells | Nguyen DX et al. Cell. 2009;138:51–62 | – | |
H2030 BrM3 cells | Nguyen DX et al. Cell. 2009;138:51–62 | – |