Summary

Un modèle In Vitro pour étudier l’effet de la thérapie photodynamique véhiculée par 5-Acide aminolévulinique sur Staphylococcus aureus Biofilm

Published: April 16, 2018
doi:

Summary

Ce manuscrit décrit un protocole afin d’étudier l’effet antimicrobien de la thérapie photodynamique induite par l’acide 5-aminolévulinique (ALA-PDT) sur un biofilm de Staphylococcus aureus . Ce protocole peut être utilisé pour développer un modèle in vitro afin d’étudier le traitement des biofilms bactériens par PDT à l’avenir.

Abstract

Staphylococcus aureus (Staphylococcus aureus) est un pathogène humain commun, ce qui provoque des infections pyogènes et systémiques. Infections à S. aureus sont difficiles à éliminer non seulement en raison de l’émergence de souches résistantes aux antibiotiques, mais aussi sa capacité à forme biofilms. Récemment, la thérapie photodynamique (TPD) a été indiquée comme l’un des traitements possibles pour contrôler les infections du biofilm. Cependant, plus amples études sont nécessaires pour améliorer notre ignorance de son effet sur les biofilms bactériens, ainsi que les mécanismes sous-jacents. Ce manuscrit décrit un modèle in vitro de PDT avec de l’acide 5-aminolévulinique (5-ALA), un précurseur de la réelle photosensibilisateur, protoporphyrine IX (PpIX). Brièvement, mature S. aureus biofilms ont été incubées avec ALA et ensuite exposées à la lumière. Par la suite, l’effet antibactérien de ALA-PDT sur S. aureus biofilm a été quantifié en calculant les colonies formant des unités (UFC) et visualisée par viabilité fluorescente coloration via confocal laser scanning microscopy (CLSM). Résultats représentatifs ont démontré une forte action antibactérienne de l’ALA-PDT sur les biofilms de S. aureus . Ce protocole est simple et peut être utilisé pour développer un modèle in vitro afin d’étudier le traitement des biofilms de S. aureus par ALA-PDT. À l’avenir, il pourrait également être référencée dans d’études PDT utilisant autres photosensibilisateurs pour différentes souches bactériennes avec des ajustements minimes.

Introduction

S. aureus est un pathogène Gram positif important qui colonise la peau et les muqueuses des hôtes humains. Sa capacité à forme biofilms est considéré comme un aspect important de sa pathogénie1. Biofilms bactériens sont une communauté de bactéries noyées dans une matrice autoproduite, qui est composée de substances polymériques extracellulaires, y compris les polysaccharides, ADN et des protéines. Cette matrice joue un rôle important dans la persistance des infections bactériennes, contribuant à un haut degré de résistance au système immunitaire humain et thérapies anti-microbiens actuels2. Les antibiotiques sont toujours le traitement majeur pour les infections de biofilm, bien que les effets des antibiotiques sur les biofilms sont limitées. Il a été démontré précédemment que les cellules dans les biofilms sont 10 à 1 000 fois plus résistantes aux antibiotiques par rapport à leurs homologues planctoniques3. Ainsi, les stratégies alternatives sont nécessaires à la conquête de ce sujet.

PDT, un autre traitement pour les infections bactériennes, utilise la lumière d’une longueur d’onde appropriée pour activer les substances photosensibilisantes. Cela conduit à la production d’espèces oxygénées réactives (ROS), qui sont mortelles pour cibler les cellules en perturbant la paroi cellulaire, inactivation des enzymes et endommager l’ADN4. Cette caractéristique de cible multiples, il est difficile pour les bactéries à développer une résistance au traitement PDT.

L’effet antimicrobien du PDT sur les biofilms bactériens et fongiques, avec plusieurs substances photosensibilisantes, comme le bleu de toluidine, vert de malachite, bleu de méthylène, chlore e6 et porphyrines, a été étudiée dans les précédents rapports5,6, 7,8,9,10,11,12,13. 5-ALA, une prodrogue de la réelle photosensibilisateur, PpIX, se caractérise par son faible poids moléculaire et une clairance rapide12,14. Ces avantages donnent ALA-PDT potentiel majeur comme une application thérapeutique. Bien que l’effet de ALA-PDT sur bactéries planctoniques a été étudiée par de nombreux groupes12, l’effet antimicrobien des ALA-PDT sur les biofilms bactériens n’a pas encore été élucidé. Pendant ce temps, il est difficile de comparer les résultats entre les études antérieures. Une des raisons est que les différents protocoles sont utilisés par divers groupes. Par conséquent, ce protocole décrit un modèle in vitro d’un système de ALA-PDT basé sur notre précédent travail15. L’effet de ce modèle a été confirmée par le calcul de l’UFC et de la viabilité de coloration avec CLSM.

Protocol

1. la Formation de Biofilm Formation de biofilm en Microplaque 96 puits Récupérer la souche USA300 de Staphylococcus aureus et 3 formation de biofilm souches cliniques (C1 – C3) conservés à-80 ° C.Remarque : La capacité des souches cliniques pour former des biofilms a été déterminée par l’essai de plaque de microtitration décrit précédemment15. Inoculer la bactérie dans 5 mL tryptone soja bouillon (BST) de milieu et de …

Representative Results

Diminution de la viabilité de la bactérie dans les biofilms après traitement ALA-PDT par rapport aux contrôles (ALA – LED-, ALA + LED – et ALA-LED +) USA300 tant les trois souches cliniques (Figure 1). Pour confirmer les résultats de l’UFC de dosage et observent l’antibactérien effet de ALA-PDT sur le S. aureus biofilm in situ, les biofilms USA300 ont été visualisées p…

Discussion

PDT est un traitement bien étudié pour le traitement du cancer depuis il a été inventé il y a plus de 100 ans18. Durant la dernière décennie, PDT a été appliqué comme stratégie d’antimicrobiens et a montré l’efficacité contre certaines bactéries pathogènes résistants aux antibiotiques12. Par rapport à l’État planctonique, biofilms bactériens semblent être plus résistants aux traitements antibiotiques3, tandis que l’effet …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été financé par la Fondation des sciences de Nature nationale de Chine pour jeunes chercheurs (no 81300810), programme de formation de Shanghai Young médecin (n° 20141057) et Fondation de sciences naturelles nationales de la Chine (81671982, 81271791 et 81571955). Nous tenons à remercier LetPub (www.letpub.com) d’assistance linguistique lors de la préparation de ce manuscrit.

Materials

Tryptone Soya Broth (TSB) OXOID CM0129B
Tryptone Soya Agar (TSA) OXOID CM0131
SYTO9 Thermo Fisher Scientific L7012 The LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability Kits 
Propidium iodide (PI) Thermo Fisher Scientific L7012 The LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability Kits 
Pancreatin Sigma-Aldrich P3292
5-aminolevulinic acid (ALA) Fudan Zhangjiang Bio-Pharm 3.1
Staphylococcus aureus strain USA300 / / The source of USA 300 references “Tenover FC, Goering RV. J Antimicrob Chemother. 2009 Sep; 64(3):441-6”.
Staphylococcus aureus clinical strains (C1-C3) / / All clinical strains were isolated from patients with chronic rhinosinusitis in the Department of Otorhinolaryngology-Head and Neck Surgery, Eye and ENT Hospital of Fudan University [Zhang QZ, Zhao KQ, Wu Y, et al. PLoS One. 2017 Mar; 12(3): e0174627].
96-well microplate Corning Inc 3599 Clear Flat Bottom Polystyrene TC-Treated Microplates, Individually Wrapped, with Lid, Sterile
Fluorodish NEST Biotechnology 801001 Glass bottom, Non-pyrogenic
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL Eppendorf 0030120086
Eppendorf microcentrifuge 5417 Eppendorf Z365998 | SIGMA
Incubator Thermo Fisher Scientific SHKE4000 MaxQ 4000 Benchtop Orbital Shakers
Light emitting diode (LED) Wuhan Yage Optic and Electronic Technique CO LED-IB
Leica TCS SP8 confocal laser-scanning microscope Leica Microsystems
Leica LAS AF software Leica Microsystems
IMARIS software Bitplane

Referencias

  1. Lewis, K. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob Agents Chemother. 45 (4), 999-1007 (2001).
  2. Rabin, N., et al. Biofilm formation mechanisms and targets for developing antibiofilm agents. Future Med Chem. 7 (4), 493-512 (2015).
  3. Mah, T. F., O’Toole, G. A. Mechanisms of biofilm resistance to antimicrobial agents. Trends Microbiol. 9 (1), 34-39 (2001).
  4. Sharma, M., et al. Toluidine blue-mediated photodynamic effects on staphylococcal biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 52 (1), 299-305 (2008).
  5. Rosa, L. P., da Silva, F. C., Nader, S. A., Meira, G. A., Viana, M. S. In vitro effectiveness of antimicrobial photodynamic therapy (APDT) using a 660 nm laser and malachite green dye in Staphylococcus aureus biofilms arranged on compact and cancellous bone specimens. Lasers Med Sci. 29 (6), 1959-1965 (2014).
  6. Rosa, L. P., Silva, F. C., Nader, S. A., Meira, G. A., Viana, M. S. Effectiveness of antimicrobial photodynamic therapy using a 660 nm laser and methyline blue dye for inactivating Staphylococcus aureus biofilms in compact and cancellous bones: An in vitro study. Photodiagnosis Photodyn Ther. 12 (2), 276-281 (2015).
  7. Mai, B., et al. The antibacterial effect of sinoporphyrin sodium photodynamic therapy on Staphylococcus aureus planktonic and biofilm cultures. Lasers Surg Med. 48 (4), 400-408 (2016).
  8. Gandara, L., Mamone, L., Bohm, G. C., Buzzola, F., Casas, A. Enhancement of photodynamic inactivation of Staphylococcus aureus biofilms by disruptive strategies. Lasers Med Sci. 32 (8), 1757-1767 (2017).
  9. Baltazar, L. M., et al. Antimicrobial photodynamic therapy: an effective alternative approach to control fungal infections. Front Microbiol. 6, 202 (2015).
  10. Fernandes, T., Bhavsar, C., Sawarkar, S., D’Souza, A. Current and novel approaches for control of dental biofilm. Int J Pharm. 536 (1), 199-210 (2017).
  11. De Sordi, L., et al. Development of Photodynamic Antimicrobial Chemotherapy (PACT) for Clostridium difficile. PLoS One. 10 (8), e0135039 (2015).
  12. Harris, F., Pierpoint, L. Photodynamic therapy based on 5-aminolevulinic acid and its use as an antimicrobial agent. Med Res Rev. 32 (6), 1292-1327 (2012).
  13. Donnelly, R. F., McCarron, P. A., Tunney, M. M. Antifungal photodynamic therapy. Microbiol Res. 163 (1), 1-12 (2008).
  14. Shi, H., Li, J., Zhang, H., Zhang, J., Sun, H. Effect of 5-aminolevulinic acid photodynamic therapy on Candida albicans biofilms: An in vitro study. Photodiagnosis Photodyn Ther. 15, 40-45 (2016).
  15. Zhang, Q. Z., et al. 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic therapy and its strain-dependent combined effect with antibiotics on Staphylococcus aureus biofilm. PLoS One. 12 (3), 0174627 (2017).
  16. Chang, Y. C., et al. Rapid single cell detection of Staphylococcus aureus by aptamer-conjugated gold nanoparticles. Sci Rep. 3, 1863 (2013).
  17. Barra, F., et al. Photodynamic and Antibiotic Therapy in Combination to Fight Biofilms and Resistant Surface Bacterial Infections. Int J Mol Sci. 16 (9), 20417-20430 (2015).
  18. St Denis, T. G., et al. All you need is light: antimicrobial photoinactivation as an evolving and emerging discovery strategy against infectious disease. Virulence. 2 (6), 509-520 (2011).
  19. O’Neill, J. F., Hope, C. K., Wilson, M. Oral bacteria in multi-species biofilms can be killed by red light in the presence of toluidine blue. Lasers Surg Med. 31 (2), 86-90 (2002).
  20. Li, X., et al. Effects of 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic therapy on antibiotic-resistant staphylococcal biofilm: an in vitro study. J Surg Res. 184 (2), 1013-1021 (2013).
  21. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2 (2), 95-108 (2004).
  22. Elias, S., Banin, E. Multi-species biofilms: living with friendly neighbors. FEMS Microbiol Rev. 36 (5), 990-1004 (2012).
  23. Wu, J., et al. Design and Proof of Programmed 5-Aminolevulinic Acid Prodrug Nanocarriers for Targeted Photodynamic Cancer Therapy. ACS Appl Mater Interfaces. 9 (17), 14596-14605 (2017).
check_url/es/57604?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Zhao, K., Wu, Y., Yi, Y., Feng, S., Wei, R., Ma, Y., Zheng, C., Qu, D. An In Vitro Model to Study the Effect of 5-Aminolevulinic Acid-mediated Photodynamic Therapy on Staphylococcus aureus Biofilm. J. Vis. Exp. (134), e57604, doi:10.3791/57604 (2018).

View Video