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Article de méthode

Reprogrammation des cellules somatiques humaines dans cellules souches pluripotentes induites (CISP) Utilisation vecteur rétroviral avec la GFP

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DOI :

10.3791/3804

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3 avril 2012

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Dans cet article

Résumé

Une méthode pour générer de l'homme cellules souches pluripotentes induites (CISP) via un rétrovirus médiation expression ectopique de OCT4, SOX2, KLF4 et MYC est décrite. Un moyen pratique pour identifier l'homme colonies iPSC fondées sur l'expression de GFP est également discuté.

Résumé

Cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) sont pluripotentes et une source précieuse pour cellulaires dans la modélisation des maladies in vitro et la médecine régénérative 1. Il a été montré précédemment que des cellules somatiques humaines peuvent être reprogrammées pour la pluripotence par l'expression ectopique de quatre facteurs de transcription (Oct4, Sox2, Klf4 et Myc) et devenir cellules souches pluripotentes induites (CISP) 2-4. Comme les CSEh, CSPi humaines sont pluripotentes et une source potentielle de cellules autologues. Nous décrivons ici le protocole de reprogrammer des cellules de fibroblastes humains avec les quatre facteurs de reprogrammation clonés dans GFP-rétroviral contenant un squelette 4. En utilisant le protocole suivant, nous générons CSPi de l'homme dans les 3-4 semaines dans des conditions de culture des CSE humaines. Homme colonies iPSC ressemblent CSEh dans la morphologie et afficher la perte de la GFP de fluorescence en résultat de l'inactivation transgène rétroviral. colonies isolées iPSC mécaniquement sous un microsco fluorescencepe se comporter de la même façon que les CSEh. Dans ces cellules, nous avons détecter l'expression de multiples gènes de pluripotence et des marqueurs de surface.

Protocole

1. Reprogrammation par rétrovirus exprimant les facteurs de reprogrammation

  1. Des fibroblastes humains sont cultivées dans un milieu des fibroblastes (10% de FBS dans DMEM avec Pen / Strep).
  2. Un jour avant l'infection, la plaque de 1x10 5 fibroblastes humains dans un puits d'une plaque à 6 puits.
  3. Aspirer à moyen et à éliminer les cellules mortes et ajoutez 2 ml de milieu de fibroblastes frais. Ajouter du sulfate de protamine à une concentration finale de 5 ng / ml.
  4. Soigneusement ajouter la quantité appropriée de chacun des virus GFP-exprimer correspondant à une multiplicité d'infection (MOI) 5 5.....

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Discussion

L'expression de facteurs de transcription quatre fibroblastes humains à la reprogrammation des CSPi. De nombreuses tentatives ont été faites pour produire des CSPi humaines en utilisant des approches non-intégration ou non-génétiques pour générer CSPi cliniquement sûres. Jusqu'à présent, ces méthodes montrent l'efficacité très faible et nécessitent une optimisation plus poussée pour améliorer la reproductibilité 11-14. Rétro-méthodes ou lentiviral sont facilement utilisée pour calculer et applique.......

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Déclarations de divulgation

Nous n'avons rien à communiquer.

Remerciements

Ce travail a été financé par l'École de médecine de Yale et de bourses de recherche santé de l'enfant à partir de Charles Hood Foundation.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DMEM/F12Invitrogen1133005780 %
Substitut de sérum KnockoutInvitrogen10828-02820 %
L-Glutamine (200 mM)Invitrogen250300812 mM
Acides aminés non essentiels (10 mM)Invitrogen111400500,1 mM
β-Mercapt–éthanol (14,3 M) ou MTGInvitrogenM-62500,1 mM
bFGF-2 10 μg/mlGIBCO, par Life TechnologiesGF003AF4 ng/ml
Pénicilline/StreptomycineEMD Millipore15140-1221 %
DMEMInvitrogen1196511890 %
FBSInvitrogen1040702810 %
Pénicilline/StreptomycineEMD Millipore15140-1221 %
Tableau 1. Milieu de culture
OCT4AbcamAb198571:500
SSEA3EMD MilliporeMAB43031:100
SSEA4BD BiosciencesBD5602181:100
Tra-1-81BD BiosciencesBD5601731:100
Tra-1-60BD BiosciencesBD5601741:100
NANOGAbcamAb216241:500
Alexa-Fluor 488InvitrogenA110081:1000
Alexa-Fluor 555InvitrogenA214221:1000
DAPIInvitrogenD13061:5000
pMIG-OCT4Addgene17225
pMIG-SOX2Addgene17226
pMIG-KLF4Addgene17227
pMIG-MYCAddgene18119
Collagénase de type IVInvitrogen171040191 mg/ml
Gélatine, porcineSigma-AldrichG 18900,1 %
TritonSigma-AldrichX100-500ML0,2 %
ParaformaldéhydeSigma-Aldrich476084 %
BSAAmerican BioanalyticalAB018003 %
Cellules nourricières MEFEMD MilliporePMEF-N
Cell LifterCorning3008
Microscopie en fluorescence : microscope inversé avec filtre GFP
Tableau 2. Réactifs et équipements

Références

  1. Murry, C. E., Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell. 132, 661-680 (2008).
  2. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S.

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Réimpressions et autorisations

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