أكتوبر 2012: إن الرب في هذا الشهر

Summary

وهنا بعض الضوء عن القضية 2012 أكتوبر من مجلة التجارب تصور (إن الرب).

Abstract

Here are some highlights from the October 2012 issue of Journal of Visualized Experiments (JoVE).

Grønlund et al. demonstrate how to isolate and analyze specific cell types in plant leaves expressing green fluorescent protein (GFP) using fluorescence-activated cell sorting (FACS). This method overcomes the interfering fluorescence of the chlorophyll found in leaves, and distinguishes GFP-expressing protoplasts from non-GFP protoplasts.

In JoVE Neuroscience, Babona-Pilipos et al. demonstrate how to construct a chamber for measuring galvanotaxis, or cell migration within an electric field. Through time-lapse imaging and image analysis, the authors can study the migratory behavior of neural precursor cells in an electric field, which may lead to the use of electrical stimulation to direct neural precursors to sites of injury or disease.

Articles involving microfluidic platforms have a significant publication history in JoVE. Harris et al. have released three articles, which involve a microfluidic device for separating axons from neuronal cell bodies. This month in JoVE Neuroscience, Higashimori et al. use this microfluidic platform to investigate the interactions between neuronal axons and glial cells, which are critical for the physiological function of the nervous system.

In JoVE Bioengineering, two research groups demonstrate the novel bioadhesive properties of chitosan-a polymer derived from chitin, which is found in fungal cell walls or in the exoskeletons of crustaceans and insects. Chitosan is used in many industrial and agricultural applications, and bioengineers are also finding uses for it in surgical applications. Foster et al. have developed a laser-activated surgical film called Surgilux, which combines chitosan with indocyanine green ICG), a photosensitive dye. This surgical film binds strongly to tissue, such as muscle, after laser irradiation. Lauto et al. developed a surgical film that combines chitosan with the photoactive dye, rose Bengal. This novel film also binds strongly to tissues, such as intestine, after it is irradiated. These adhesive films are biocompatible and may potentially be used in various surgical procedures in place of sutures.

In JoVE Clinical and Translational Medicine, Fiema et al. demonstrate a high-throughput technique for validating biomarkers in graft vs. host disease, a common and life-threatening complication of cell or tissue transplantation. The authors use commercially available ELISAs to analyze multiple proteins in sequential fashion.

In JoVE Immunology and Infection, Keyel et al. demonstrate how to measure the real-time kinetics of immune cell responses to bacterial toxins using high-speed live cell microscopy. This method can be used to show how immune cells respond to bacterial toxins. Combined with high-speed 3D confocal microscopy, this technique can also visualize the cellular repair response.

In JoVE Applied Physics, Borisenko et al. determine the electronic structure of complex materials using angle-resolved photoemission spectroscopy in a synchotron radiation facility. By combining recent advances in synchotron radiation, surface science, and cryogenics, this method can gain a precise picture of the energy and momentum of electrons inside a solid, and address key questions in the field of condensed matter physics.

This preview summarizes just a few of the notable video-articles available in the October 2012 issue of JoVE. For additional videos, please visit www.jove.com.

Protocol

(أ) استنادا الشيتوزان، ليزر المنشط لاصق رقيقة الجراحية، 'SurgiLux ": إعداد والتظاهر. L. جون فوستر R.، إليزابيث كارستن الحيوي / مجموعة بحوث البوليمرات، جامعة نيو ساوث ويلز وصفت تلفيق رواية، مرنة رقيقة لاصقة الجراحية من المكونات FDA المعتمدة، الشيتوزان وخضرة الإندوسيانين. ويتجلى هذا الترابط لاصقة للأنسجة كولاجيني من خلال عملية التنشيط بسيطة مع ليزر الأشعة تحت الحمراء المنخفضة الطاقة. تصنيع وتطبيق روز البنغال، الشيتوزان أفلام في إصلاح الأنسجة ليزر أنطونيو Lauto 1، ماركوس Stoodley 2، ماثيو بارتون 1، جون مورلي W. 1، ديفيد أ. Mahns 1، ليوناردو لونغو 3، داميا معوض <sup> 1 1 الإلكترونيات البيولوجية وعلم الأعصاب مجموعة أبحاث ([بنس])، جامعة غرب سيدني، نيو ساوث ويلز أستراليا (2)، مدرسة الطب المتقدم الاسترالية، جامعة ماكواري، نيو ساوث ويلز أستراليا، 3 كلية الطب، جامعة سيينا، إيطاليا وهناك حاجة عادة لإصلاح الأنسجة الغرز أثناء العمليات الجراحية. ومع ذلك، يمكن أن يكون مشكلة تطبيقها كما هي الغازية، وربما تلف الأنسجة. وذكرت وسائل تلفيق هنا وتطبيق لاصقة الأنسجة الرواية. هذا الفيلم لاصقة والليزر وتنشيط لا تتطلب استخدام الخيوط الجراحية. A الفحص انجذاب غلفاني لتحليل حركية العصبية السلائف الهجرة خلية في الحقل الحالي مباشرة التطبيقية خارجيا الكهربائية Robart Babona-Pilipos 1، ميلوس R. بوبوفيتش 2، 3 سيندي M. Morshead 1معهد الحيوية والهندسة الطبية الحيوية، جامعة تورنتو، 2 يندهيرست مركز، تورونتو تأهيل معهد، 3 قسم الجراحة في جامعة تورونتو في هذا البروتوكول ونحن لشرح كيفية بناء الغرف المخصصة التي تسمح بتطبيق حقل كهربائي مباشر الحالية لتمكين الوقت الفاصل بين التصوير من الدماغ العصبية مشتقة الكبار إزفاء الخلية تمهيدا خلال انجذاب غلفاني. تحليل خلية معينة من الأوراق ل arabidopsis باستخدام مضان تنشيط الخلايا الفرز يسبر T. Grønlund 1، أليسون Eyres 1، سانجيف كومار 1، فيكي بوكانان، ولاستون 1، 2، L. ميريام جيفورد 1، 2 1 مدرسة علوم الحياة، جامعة وارويك، 2 ارويك نظم علم الأحياء، جامعة وارويك Aطريقة لإنتاج نبات protoplasts ل arabidopsis التي تتوافق مع مضان تنشيط الخلايا الفرز (FACS)، مما يسمح للدراسات السكان خلية معينة. هذا الأسلوب هو متوافق مع أي خط ل arabidopsis التي تعبر عن GFP في مجموعة فرعية من الخلايا. تصور الردود السم البكتيري المستحثة عن طريق لايف مضان المجهري الخليوي بيتر A. Keyel 1، ميشيل E. Heid 1، سيمون واتكنز C. 2، راسيل D. سالتر 1 1 قسم علم المناعة في جامعة بيتسبرغ مدرسة الطب، 2 قسم بيولوجيا الخلية وعلم وظائف الأعضاء، جامعة بيتسبرغ في كلية الطب طرق لتنقية الكولسترول ملزمة السم ستربتوليزين O من المؤتلف E. القولونية والتصور من السم ملزمة للعيش الخلايا حقيقية النواة هي وصفد. تسليم المترجمة من السم يؤدي الى تغييرات سريعة ومعقدة في الخلايا المستهدفة يكشف جوانب جديدة من الأحياء السم. عالية الإنتاجية ELISA متسلسل للتأكد من صحة العلامات الحيوية من الأمراض الطعم ضد المضيف الحاد * بريان Fiema، أندرو هاريس C. *، أوريلي غوميز، Pongtornpipat Praechompoo، Lamiman كيلي، مارك فاندر T. Lugt، صوفي Paczesny الأطفال الدم ونخاع برنامج زراعة، جامعة ميشيغان * ساهم هؤلاء الكتاب على حد سواء لا يمكن أن يؤديها عالية مرت من التحقق من صحة المؤشرات الحيوية مرشح متعددة ELISA متتابعة من أجل تقليل تجميد / الذوبان دورات واستخدام عينات البلازما الثمينة. هنا، ونحن لشرح كيفية أداء بالتسلسل ELISAs لمدة ستة مختلف المؤشرات الحيوية البلازما التحقق من صحة 1-3 من الطعم ضد المضيف المرض (GVHD) 4 على نفس ررأسماء العينة. تحليل التصوير من الخلايا العصبية إلى الخلايا الدبقية في التفاعل منهاج الثقافة ميكروفلويديك (MCP) المستندة إلى الخلايا العصبية والخلايا الدبقية اكسون نظام المشاركة في الثقافة هاروكي Higashimori 1، يونغجي يانغ 1، 2 1 قسم علم الأعصاب، جامعة تفتس، 2 علم الأعصاب البرنامج، تافتس ساكلر كلية العلوم الطبية الحيوية دراسات عليا هذه الدراسة توضح إجراءات إنشاء محور عصبي رواية العصبية و(الفلكية) الدبقية منصة شارك في الثقافة. في هذا النظام المشترك والثقافة، والتلاعب التفاعل المباشر بين محور عصبي واحد (واحد الخلية الدبقية) يصبح ممكنا، مما يسمح للتحليل الآلي للعصبون إشارات متبادلة لالدبقية. زاوية التحليل الطيفي إصدار ضوئي في حل درجات الحرارة المنخفضة جدا سيرغي V. Borisenko 1، فولوديمير B. Zabolotnyy 1، الكسندر A. Kordyuk 1، 2، دانيال V. Evtushinsky 1، تيمور K. كيم 1 و 3 و إيمانويلا Carleschi 4، بريان دويل P. 4، روزالبا فيتيبالدي 5، ماريو كوكو 5، أنطونيو Vecchione 5، 6 هيلموت بيرغر 1 معهد للبحوث الحالة الصلبة، IFW-دريسدن، 2 معهد الفيزياء المعادن من الأكاديمية الوطنية للعلوم في أوكرانيا، 3 مصدر ضوئي الماس LTD، 4 قسم الفيزياء، جامعة جوهانسبرج، 5 CNR-SPIN، وDipartimento دي Fisica ER " Caianiello "، وجامعة دي ساليرنو و 6 من معهد الفيزياء مسألة معقدة، مدرسة الفنون التطبيقية الاتحادية لوزان دي والهدف العام لهذه الطريقة هو تحديد هيكل منخفض الطاقة الالكترونية من المواد الصلبة في درجات الحرارة المنخفضة جدا باستخدام زاوية-حل Spectrosc إصدار ضوئيسخ مع الإشعاع السنكروتروني. تصنيع جهاز ميكروفلويديك لتجزئة الخلية العصبية ومحاور عصبية سوما جوزيف هاريس 1، Hyuna لي 1، Behrad وحيدي 1، كريستينا تو 2، ديفيد Cribbs 3، NOO لى جيون 1، كارل Cotman 3 1 قسم الهندسة الطبية الحيوية في جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 2 بحوث الخلايا الجذعية مركز جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 3 معهد الشيخوخة والخرف الدماغ في جامعة كاليفورنيا في ايرفين في هذا الفيديو نظهر تقنية الطباعة الحجرية الناعمة مع siloxane polydimethyl (PDMS) التي نستخدمها لfarbricate جهاز ميكروفلويديك لزراعة الخلايا العصبية. إعداد E18 الخلايا العصبية القشرية للفأر التقسيم في هيئة التصنيع العسكريrofluidic جهاز جوزيف هاريس 1، Hyuna لي 1، كريستينا تو تو 2، ديفيد Cribbs 3، كارل Cotman 3، NOO لى جيون 1 1 قسم الهندسة الطبية الحيوية في جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 2 بحوث الخلايا الجذعية مركز جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 3 معهد الشيخوخة والخرف الدماغ في جامعة كاليفورنيا في ايرفين في هذا الفيديو نظهر إعداد E18 الخلايا العصبية الفئران القشرية. غير البلازما الرابطة من PDMS للصناعات رخيصة من أجهزة ميكروفلويديك جوزيف هاريس 1، Hyuna لي 1، Behrad وحيدي 1، كريستينا تو 2، ديفيد Cribbs 3، كارل Cotman 3، NOO لى جيون 1 1 قسم الهندسه الطبية الحيويةز، جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 2 الخلايا الجذعية مركز أبحاث في جامعة كاليفورنيا في ايرفين، 3 معهد الشيخوخة والخرف الدماغ في جامعة كاليفورنيا في ايرفين ونحن في هذا الفيديو شرح كيفية استخدام الجهاز ميكروفلويديك العصبية دون ارتباط البلازما.