Октябрь 2012: В этом месяце в Юпитер

Summary

Вот некоторые основные моменты из октябре 2012 вопрос о журнале Визуализированные Эксперименты (Юпитера).

Abstract

Here are some highlights from the October 2012 issue of Journal of Visualized Experiments (JoVE).

Grønlund et al. demonstrate how to isolate and analyze specific cell types in plant leaves expressing green fluorescent protein (GFP) using fluorescence-activated cell sorting (FACS). This method overcomes the interfering fluorescence of the chlorophyll found in leaves, and distinguishes GFP-expressing protoplasts from non-GFP protoplasts.

In JoVE Neuroscience, Babona-Pilipos et al. demonstrate how to construct a chamber for measuring galvanotaxis, or cell migration within an electric field. Through time-lapse imaging and image analysis, the authors can study the migratory behavior of neural precursor cells in an electric field, which may lead to the use of electrical stimulation to direct neural precursors to sites of injury or disease.

Articles involving microfluidic platforms have a significant publication history in JoVE. Harris et al. have released three articles, which involve a microfluidic device for separating axons from neuronal cell bodies. This month in JoVE Neuroscience, Higashimori et al. use this microfluidic platform to investigate the interactions between neuronal axons and glial cells, which are critical for the physiological function of the nervous system.

In JoVE Bioengineering, two research groups demonstrate the novel bioadhesive properties of chitosan-a polymer derived from chitin, which is found in fungal cell walls or in the exoskeletons of crustaceans and insects. Chitosan is used in many industrial and agricultural applications, and bioengineers are also finding uses for it in surgical applications. Foster et al. have developed a laser-activated surgical film called Surgilux, which combines chitosan with indocyanine green ICG), a photosensitive dye. This surgical film binds strongly to tissue, such as muscle, after laser irradiation. Lauto et al. developed a surgical film that combines chitosan with the photoactive dye, rose Bengal. This novel film also binds strongly to tissues, such as intestine, after it is irradiated. These adhesive films are biocompatible and may potentially be used in various surgical procedures in place of sutures.

In JoVE Clinical and Translational Medicine, Fiema et al. demonstrate a high-throughput technique for validating biomarkers in graft vs. host disease, a common and life-threatening complication of cell or tissue transplantation. The authors use commercially available ELISAs to analyze multiple proteins in sequential fashion.

In JoVE Immunology and Infection, Keyel et al. demonstrate how to measure the real-time kinetics of immune cell responses to bacterial toxins using high-speed live cell microscopy. This method can be used to show how immune cells respond to bacterial toxins. Combined with high-speed 3D confocal microscopy, this technique can also visualize the cellular repair response.

In JoVE Applied Physics, Borisenko et al. determine the electronic structure of complex materials using angle-resolved photoemission spectroscopy in a synchotron radiation facility. By combining recent advances in synchotron radiation, surface science, and cryogenics, this method can gain a precise picture of the energy and momentum of electrons inside a solid, and address key questions in the field of condensed matter physics.

This preview summarizes just a few of the notable video-articles available in the October 2012 issue of JoVE. For additional videos, please visit www.jove.com.

Protocol

Хитозан основе, лазерная активированный тонкопленочных хирургических клей », SurgiLux": подготовка и демонстрация. Л. Джон Р. Фостер, Элизабет Karsten Bio / Полимерные Research Group, Университетом Нового Южного Уэльса Изготовление новых, гибких тонкопленочных хирургического клея от FDA утвержденных ингредиентов, хитозан и индоцианин зеленый описано. Приклеивание этого клея на коллагеновой ткани через простой процесс активации с маломощным инфракрасным лазером показала. Изготовление и применение бенгальским розовым-хитозан Фильмы в лазерной восстановления тканей Антонио Lauto 1, Маркус Stoodley 2, Мэтью Бартон 1, Джон Морли 1, David A. Mahns 1, Леонардо Лонго 3, Damia Mawad <sup> 1 1 Биоэлектроника и неврологии (BENS) исследовательской группой Университета Западного Сиднея, Новый Южный Уэльс Австралии, 2 австралийская школа повышения квалификации врачей, Macquarie University, Южный Уэльс, Австралия, 3 школы медицины Университета Сиены, Италия Швы, как правило, необходимы для восстановления тканей во время хирургических процедур. Однако их применение может быть проблематичным, поскольку они являются инвазивными и может привести к повреждению тканей. Изготовление и применение методов романа клей ткани здесь сообщается. Этот клей пленки лазерным активированы и не требуют использования швов. Гальванотаксис пробирного анализа нейронных клеток-предшественников Кинетика миграции извне постоянного тока электрическое поле Робарт Babona-Pilipos 1, Милош Р. Поповича 2, Синди М. Morshead 3 1Институт биоматериалов и биомедицинской инженерии, Университет Торонто, 2 Lyndhurst Centre, Торонто реабилитации института, 3 отделение хирургии, Университет Торонто В этом протоколе мы покажем, как для создания пользовательских камер, что позволяет применять постоянный ток электрического поля для включения покадровой визуализации мозга взрослого человека, полученных нейронных перемещение клеток-предшественников во время гальванотаксиса. Сотовые конкретного анализа листьев Arabidopsis с помощью флуоресцентной активирован сортировки клеток Jesper Т. Гронлунд 1, Элисон Eyres 1, Санджив Кумар 1, Vicky Бьюкенен-Волластон 1, 2, Мириам Л. Гиффорд 1, 2 1 Школа естественных наук, Университет Уорвика, 2 Warwick системной биологии, Университет Уорвика Способ получения протопластов листьев Arabidopsis, которые совместимы с флуоресценции активирован сортировки клеток (FACS), что позволяет для исследования конкретных клеточных популяций. Этот метод совместим с любыми Arabidopsis линии, которая выражает GFP в подмножество клеток. Визуализация бактериальный токсин индуцированные ответы с помощью флуоресцентной микроскопии Онлайн сотовых Петр Алексеевич Keyel 1, Мишель Е. Heid 1, Simon C. Watkins 2, Russell D. Salter 1 1 Кафедра иммунологии, Университет Питтсбурга школа медицины, 2 отдела клеточной биологии и физиологии Университета Питтсбурга школа медицины Методы очистки холестерина обязательного токсина стрептолизин O из рекомбинантной E. палочки и визуализации токсина обязательным жить эукариотической клетки описыватьD. Локализованные доставки токсин вызывает быстрые и сложные изменения в целевые клетки раскрывая новые аспекты токсина биологии. Высокая пропускная способность последовательного ELISA для проверки биомаркеров острого трансплантат против хозяина Брайан Fiema *, Эндрю С. Харрис *, Орели Гомес, Praechompoo Pongtornpipat, Келли Lamiman, Марк Т. Вандер Lugt, Софи Paczesny Детская крови и пересадке мозга программе, Мичиганский университет * Эти авторы способствовали в равной степени Высокая пропускная проверки нескольких биомаркеров кандидат может быть выполнена последовательная ELISA для того, чтобы свести к минимуму циклов замораживания / оттаивания и использования драгоценных образцов плазмы. Здесь мы покажем, как последовательно выполнять ИФА для шести различных подтверждено биомаркеров плазмы 1-3 трансплантат против хозяина (РТПХ) 4 на той же плОУРА образца. Анализ изображений нейрона к Glia Взаимодействие в Микрофлюидных Платформа культуры (MCP) на основе нейронных аксонов и глии Co-культуре системы Харуки Higashimori 1, Yongjie Ян 1, 2 1 Кафедра неврологии, Университет Тафтса, 2 Neuroscience программы, Тафтс Sackler школа Высшее медико-биологических наук Данное исследование описывает процедуры создания новых нейронных аксонов и (ASTRO) глии совместного культивирования платформы. В этой совместной системе культуры, манипуляции прямого взаимодействия между одним аксона (и единственной глиальных клеток) становится возможным, позволяя механистического анализа взаимного нейрона к глиальных сигнализации. Фотоэмиссии с угловым разрешением спектроскопии при сверхнизких температурах Сергей Владимирович Borisenko 1, Владимир Б. Zabolotnyy 1, А. В. Kordyuk 1, 2, Данил В. Evtushinsky 1, Тимур К. Ким 1, 3, Emanuela Carleschi 4, Брайан Дойл П. 4, Rosalba Фиттипальди 5, Марио Cuoco 5, Антонио Vecchione 5, Хельмут Бергер 6 1 Институт твердого Государственный научно-исследовательский, IFW-Dresden, 2 Институт физики металлов Национальной академии наук Украины, 3 Diamond Light Source LTD, 4, физический факультет Университета Йоханнесбурга, 5 CNR-SPIN, и Dipartimento ди Fisica "ER Caianiello ", Università ди Салерно, 6 Институт физики сложный вопрос, Федеральной политехнической школе Лозанны Основная цель этого метода состоит в определении низких энергий электронной структуры твердых тел при сверхнизких температурах с помощью фотоэмиссии с угловым разрешением спектроскопияКопировать с синхротронного излучения. Изготовление микрофлюидных устройство для изолированность нейрона Сома и Аксоны Джозеф Харрис 1, Hyuna Ли 1, Behrad Вахиди 1, Кристина Ту 2, Дэвид Cribbs 3, Ноо Ли Чон 1, Карл Cotman 3 1 Кафедра биомедицинской инженерии, Университет Калифорнии в Ирвине, 2 Stem Cell Research Center, Калифорнийский университет, Ирвайн, 3 института старения мозга и слабоумие, Калифорнийский университет, Ирвайн В этом видео мы продемонстрируем технику мягкой литографии с полидиметилсилоксана (PDMS), который мы используем, чтобы farbricate микрофлюидных устройство для культивирования нейронов. Подготовка E18 корковых нейронов крысы для раздробленности в микрофонrofluidic устройств Джозеф Харрис 1, Hyuna Ли 1, Кристина Tu Tu 2, Дэвид Cribbs 3, Карл Cotman 3, Ноо Ли Чон 1 1 Кафедра биомедицинской инженерии, Университет Калифорнии в Ирвине, 2 Stem Cell Research Center, Калифорнийский университет, Ирвайн, 3 института старения мозга и слабоумие, Калифорнийский университет, Ирвайн В этом видео мы покажем, подготовка E18 корковых нейронов крысы. Non-плазменной Склеивание PDMS для недорогих Изготовление микрожидкостных устройств Джозеф Харрис 1, Hyuna Ли 1, Behrad Вахиди 1, Кристина Ту 2, Дэвид Cribbs 3, Карл Cotman 3, Ноо Ли Чон 1 1 Кафедра медико-биологических Engineerinг, Калифорнийский университет, Ирвайн, 2 Stem Cell Research Center, Калифорнийский университет, Ирвайн, 3 института старения мозга и слабоумие, Калифорнийский университет, Ирвайн В этом видео мы покажем, как с помощью нейронных микрофлюидных устройство без связи плазме.