Summary

Uma plataforma microfluídica para a isolação de alta taxa de transferência de célula única e Cultura

Published: June 16, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol for isolating and culturing single cells with a microfluidic platform, which utilizes a new microwell design concept to allow for high-efficiency single cell isolation and long-term clonal culture.

Abstract

Studying the heterogeneity of single cells is crucial for many biological questions, but is technically difficult. Thus, there is a need for a simple, yet high-throughput, method to perform single-cell culture experiments. Here, we report a microfluidic chip-based strategy for high-efficiency single-cell isolation (~77%) and demonstrate its capability of performing long-term single-cell culture (up to 7 d) and cellular heterogeneity analysis using clonogenic assay. These applications were demonstrated with KT98 mouse neural stem cells, and A549 and MDA-MB-435 human cancer cells. High single-cell isolation efficiency and long-term culture capability are achieved by using different sizes of microwells on the top and bottom of the microfluidic channel. The small microwell array is designed for precisely isolating single-cells, and the large microwell array is used for single-cell clonal culture in the microfluidic chip. This microfluidic platform constitutes an attractive approach for single-cell culture applications, due to its flexibility of adjustable cell culture spaces for different culture strategies, without decreasing isolation efficiency.

Introduction

Actualmente colocando células isoladas individualmente num espaço de cultura é geralmente conseguido através de diluição limitante ou de células activadas por fluorescência (FACS). Para muitos laboratórios, diluição limitante é um método conveniente, uma vez que requer apenas uma pipeta e placas de cultura de tecidos, as quais estão prontamente disponíveis. Neste caso, uma suspensão de células é diluída em série até uma densidade celular apropriada, e, em seguida, colocados em poços de cultura, utilizando uma pipeta manual. Estas células individuais compartimentados são então utilizados para análise de células, tais como heterogeneidade genética e rastreio de uma colónia de formação 2. No entanto, este método é de baixo rendimento e de trabalho intensivo, sem a utilização de um braço robótico para assistência, devido à natureza distribuição de Poisson do método de diluição limitante restringe eventos de uma única célula a uma probabilidade máxima de 37% 3. máquinas de FACS com um braço robótico integrado pode superar a limitação da distribuição de Poisson pela precisão placção de uma única célula em um poço de cultura de cada vez 4. No entanto, a alta tensão de cisalhamento mecânico (assim, reduzido a viabilidade celular) 5 e compra da máquina e os custos operacionais têm limitado o seu uso em muitos laboratórios.

Para superar as limitações acima, em microescala dispositivos têm sido desenvolvidos para carregar altamente eficiente de células individuais em micropoços 6. No entanto, os micropoços não proporcionar um espaço adequado para as células carregadas com a proliferar, devido à necessidade de tornar o tamanho de cada micropoço próximo do de uma única célula de carga para maximizar a probabilidade de uma única célula. Como são necessários ensaios de cultura em muitas aplicações baseadas em células (por exemplo, ensaio clonogénico 7), micropoços maiores (90-650 um de diâmetro ou de comprimento lateral) também têm sido utilizados para permitir a culturas celulares prolongadas. No entanto, como o método da diluição limitante, eles também possuem baixas eficiências de carga de células individuais, que variam de 10 -. 30% 8, 9

Anteriormente, nós desenvolvemos uma plataforma de microfluidos de alto rendimento para isolar células individuais em micropoços individuais e demonstrar a sua aplicação no ensaio clonogénico das células isoladas. 10 O dispositivo foi feito com poli-dimetilsiloxano (PDMS), e compreende dois conjuntos de matrizes de micropoços com diferentes tamanhos de microcavidades, que podem melhorar em grande medida a eficiência no carregamento de uma única célula em um micropoço cujo tamanho é significativamente maior do que a célula. Notavelmente, este conceito "dupla bem" permite que o tamanho da área de cultura a ser ajustada de forma flexível, sem afectar a eficiência da captação de uma única célula, tornando-a simples de ajustar o desenho do dispositivo para se adequar a diferentes tipos de células e aplicações. Este método de elevada eficiência deveria ser útil para experiências de cultura de células de longo prazo para os estudos de heterogeneidade da célula e estabelecimento linha celular monoclonal.

Protocol

Nota: Os desenhos fotomáscara para a fabricação de dispositivos microfluídicos foram desenhadas usando um software de desenho assistido por computador (CAD). Os desenhos foram então utilizados para fabricar máscaras de crómio usando um serviço comercial. Os dispositivos PDMS foram feitas usando técnicas de litografia suave 11. 1. Fabricação de Mestre Moldes por litografia Antes do processo de fotolitografia 12, utilizar as bolachas de silício de 4…

Representative Results

A plataforma de microfluidos para o isolamento de uma única célula e de cultura compreende um micro-canal (200 um de altura) com dois conjuntos de matrizes de micropoços (Figura 2A). Os dois conjuntos de matrizes de micropoços são denominados como captura de poços (25 um de diâmetro e 27 uM em profundidade) e cultura poços (285 um de diâmetro e 300 mm de profundidade) para o isolamento de uma única célula e a cultura, respectivamente, e cada captura-se bem pos…

Discussion

Sistemas de dispositivo baseado em micropoços 6,14 têm sido utilizados para a manipulação de uma única célula e análise, tal como uma única célula em larga escala prendendo 6 e proliferação de células-tronco hematopoiéticas único 15. Embora o tamanho bem, número e forma podem ser ajustados a aplicações específicas, a eficiência de isolamento de uma única célula está sempre comprometida quando o tamanho do poço é aumentada. 9,15

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Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a grant from the National Health Research Institutes (03-A1 BNMP11-014).

Materials

AutoCAD software Autodesk AutoCAD LT 2011 Part No. 057C1-74A111-1001
Silicon wafer  Eltech corperation SPE0039
Conventional oven YEONG-SHIN company ovp45
Plasma cleaner Nordson AP-300 Bench-Top Plasma Treatment System
SU-8 50 negative photoresist MicroChem Y131269
SU-8 100 negative photoresist MicroChem Y131273
Spin coater Synrex Co., Ltd. SC-HMI 2" ~ 6"
Hotplate YOTEC company YS-300S
Msak aligner Deya Optronic CO. A1K-5-MDA
SU-8 developer Grand Chemical Companies GP5002-000000-72GC Propylene glycol monomethyl ether acetate
Scanning laser profilometer KEYENCE VK-X 100
Trichlorosilane Gelest, Inc SIT8174.0 TRIDECAFLUORO-1,1,2,2-TETRAHYDROOCTYL.  Hazardous. Corrosive to the respiratory tract., reacts violently with water.
Desiccator Bel-Art Products  F42020-0000 SPACE SAVER VACUUM DESICCATOR 190MM WHITE BASE
Polydimethylsiloxane (PDMS) kit Dow corning Sylgard 184
Harris Uni-Core puncher Ted Pella Inc. 15072 with 0.75 mm inner-diameter
Removable tape 3M Company Scotch Removable Tape 811
Stereomicroscope Leica Microsystems Leica E24
Bovine serum albumin (BSA) Bersing Technology ALB001.500
DMEM basal medium Gibco 12800-017
Fetal bovine serum Thermo Hyclone SH30071.03HI
Antibiotics Biowest L0014-100 Glutamine-Penicillin-Streptomycin
Recombinant enzyme mixture Innovative cell technology AM-105 Accumax
DiIC12(3) cell membrane dye BD Biosciences 354218 Used as a cell tracker
Syringe pump Harvard Apparatus 703007
Plastic syringe (1 mL) BD Biosciences 309659
23 gauge blunt needles Ever Sharp Technology, Inc. TD21
Poly-tetrafluoroethene (PTFE) tubing Ever Sharp Technology, Inc. TFT-23T  inner diameter, 0.51 mm; outer diameter, 0.82 mm

References

  1. Meacham, C. E., Morrison, S. J. Tumour heterogeneity and cancer cell plasticity. Nature. 501 (7467), 328-337 (2013).
  2. Vermeulen, L., et al. Single-cell cloning of colon cancer stem cells reveals a multi-lineage differentiation capacity. P Natl Acad Sci USA. 105 (36), 13427-13432 (2008).
  3. Shapiro, H. M. . Practical flow cytometry. , (2005).
  4. Leong, K. G., Wang, B. E., Johnson, L., Gao, W. Q. Generation of a prostate from a single adult stem cell. Nature. 456 (7223), 804-808 (2008).
  5. Shapiro, E., Biezuner, T., Linnarsson, S. Single-cell sequencing-based technologies will revolutionize whole-organism science. Nat Rev Genet. 14 (9), 618-630 (2013).
  6. Rettig, J. R., Folch, A. Large-scale single-cell trapping and imaging using microwell arrays. Anal. Chem. 77 (17), 5628-5634 (2005).
  7. Liu, J., et al. Soft fibrin gels promote selection and growth of tumorigenic cells. Nat Mater. 11 (8), 734-741 (2012).
  8. Charnley, M., Textor, M., Khademhosseini, A., Lutolf, M. P. Integration column: microwell arrays for mammalian cell culture. Integr. Biol. 1 (11-12), 11-12 (2009).
  9. Lindstrom, S., et al. High-density microwell chip for culture and analysis of stem cells. PloS one. 4 (9), e6997 (2009).
  10. Lin, C. H., et al. A microfluidic dual-well device for high-throughput single-cell capture and culture. Lab Chip. 15 (14), 2928-2938 (2015).
  11. Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography. Angew Chem Int Edit. 37 (5), 550-575 (1998).
  12. Shin, Y., et al. Microfluidic assay for simultaneous culture of multiple cell types on surfaces or within hydrogels. Nat Protoc. 7 (7), 1247-1259 (2012).
  13. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr. Protoc. Immunol. Appendix 3 (Appendix 3B), (2001).
  14. Lindstrom, S., Andersson-Svahn, H. Miniaturization of biological assays – Overview on microwell devices for single-cell analyses. Bba-Gen Subjects. 1810 (3), 308-316 (2011).
  15. Lecault, V., et al. High-throughput analysis of single hematopoietic stem cell proliferation in microfluidic cell culture arrays. Nat Methods. 8 (7), 581-593 (2011).
  16. Park, J. Y., et al. Single cell trapping in larger microwells capable of supporting cell spreading and proliferation. Microfluid Nanofluid. 8 (2), 263-268 (2010).
  17. Tirino, V., et al. Cancer stem cells in solid tumors: an overview and new approaches for their isolation and characterization. FASEB J. 27 (1), 13-24 (2013).
  18. Chen, P. C., Huang, Y. Y., Juang, J. L. MEMS microwell and microcolumn arrays: novel methods for high-throughput cell-based assays. Lab Chip. 11 (21), 3619-3625 (2011).
  19. Liang, P., et al. Drug Screening Using a Library of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes Reveals Disease-Specific Patterns of Cardiotoxicity. Circulation. 127 (16), 1677-1691 (2013).

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Citer Cet Article
Lin, C., Chang, H., Hsu, C. A Microfluidic Platform for High-throughput Single-cell Isolation and Culture. J. Vis. Exp. (112), e54105, doi:10.3791/54105 (2016).

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