Summary

Una plataforma microfluídica para el aislamiento de gran procesamiento de celda única y Cultura

Published: June 16, 2016
doi:

Summary

Here, we present a protocol for isolating and culturing single cells with a microfluidic platform, which utilizes a new microwell design concept to allow for high-efficiency single cell isolation and long-term clonal culture.

Abstract

Studying the heterogeneity of single cells is crucial for many biological questions, but is technically difficult. Thus, there is a need for a simple, yet high-throughput, method to perform single-cell culture experiments. Here, we report a microfluidic chip-based strategy for high-efficiency single-cell isolation (~77%) and demonstrate its capability of performing long-term single-cell culture (up to 7 d) and cellular heterogeneity analysis using clonogenic assay. These applications were demonstrated with KT98 mouse neural stem cells, and A549 and MDA-MB-435 human cancer cells. High single-cell isolation efficiency and long-term culture capability are achieved by using different sizes of microwells on the top and bottom of the microfluidic channel. The small microwell array is designed for precisely isolating single-cells, and the large microwell array is used for single-cell clonal culture in the microfluidic chip. This microfluidic platform constitutes an attractive approach for single-cell culture applications, due to its flexibility of adjustable cell culture spaces for different culture strategies, without decreasing isolation efficiency.

Introduction

Actualmente la colocación de las células individuales de forma individual en un espacio de cultivo se logra comúnmente mediante el uso de la dilución limitante o células activadas por fluorescencia (FACS). Para muchos laboratorios, dilución limitante es un método conveniente, ya que sólo requiere una pipeta y del tejido placas de cultivo, que son fácilmente disponibles. En este caso, una suspensión de células se diluye en serie a una densidad celular apropiada, y después se colocó en pocillos de cultivo mediante el uso de una pipeta manual. Estas células individuales compartimentados se utilizan entonces para el análisis de células, tales como la heterogeneidad genética de detección 1 y 2 Formación de Colonias. Sin embargo, este método es de bajo rendimiento y de trabajo intensivo, sin utilizar un brazo robótico para la asistencia, ya que la naturaleza distribución de Poisson del método de dilución limitante restringe eventos de una sola célula a una probabilidad máxima de 37% 3. máquinas de FACS con un brazo robótico integrado que pueden superar la limitación de la distribución de Poisson con precisión por placing una sola célula en un pocillo de cultivo a la vez 4. Sin embargo, el alto esfuerzo de cizalla mecánica (por lo tanto, disminuye la viabilidad celular) 5 y la compra de la máquina y los costes operativos han limitado su uso en muchos laboratorios.

Para superar las limitaciones anteriores, los dispositivos a microescala se han desarrollado para altamente eficiente cargar células individuales en micropocillos 6. Sin embargo, los micropocillos no proporcionan un espacio adecuado para las células cargadas proliferen, debido a la necesidad de hacer que el tamaño de cada pocillo, próxima a la de una sola célula para maximizar la probabilidad de carga de una sola célula. Como se requieren ensayos de cultivo en muchas aplicaciones basadas en células (por ejemplo, ensayo clonogénico 7), micropocillos de mayor tamaño (90 a 650 micras de diámetro o de longitud lateral) también se han utilizado para permitir cultivos celulares prolongados. Sin embargo, como el método de dilución limitante, también poseen bajas eficiencias individuales de carga de células, que van desde 10 -. 30% 8, 9

Anteriormente, hemos desarrollado una plataforma de microfluidos de alto rendimiento para aislar células individuales en micropocillos individuales y demostrar su aplicación en ensayo clonogénico de las células aisladas. 10 El dispositivo se hizo con poli-dimetilsiloxano (PDMS), y comprende dos conjuntos de matrices de micropocillos con diferentes tamaños de micropocillos, que pueden mejorar en gran medida la eficiencia en la carga de una sola célula en un micropocillo cuyo tamaño es significativamente más grande que la célula. Cabe destacar que este concepto de "doble bien" permite que el tamaño de la zona de cultivo para ajustarse de manera flexible sin afectar a la eficiencia de la captura de una sola célula, por lo que es fácil de ajustar el diseño del dispositivo para adaptarse a diferentes tipos de células y aplicaciones. Este método de alta eficiencia debería ser útil para experimentos de cultivo celular a largo plazo para los estudios de heterogeneidad celular y el establecimiento línea celular monoclonal.

Protocol

Nota: Los diseños photomask para nuestra fabricación de dispositivos de microfluidos se elaboraron mediante el uso de un software de diseño asistido por ordenador (CAD). Los diseños fueron luego utilizados para la fabricación de máscaras de cromo utilizando un servicio comercial. Los dispositivos de PDMS se hicieron usando técnicas de litografía blanda. 11 1. La fabricación de moldes por Maestro Litografía Antes de que el proceso de fotolitografía 12,</s…

Representative Results

La plataforma de microfluidos para el aislamiento y cultivo de células individuales comprende un microcanal (200 micras de altura) con dos conjuntos de matrices de micropocillos (Figura 2A). Los dos conjuntos de matrices de micropocillos se denominan como de captura de pocillos (25 m de diámetro y 27 m de profundidad) y la cultura pocillos (285 micras de diámetro y 300 m de profundidad) para el aislamiento de células individuales y la cultura, respectivamente, y cada…

Discussion

Sistemas de dispositivos basados ​​en micropocillos 6,14 se han utilizado para la manipulación de una sola célula y análisis, como única célula a gran escala atrapando 6 y la proliferación de células madre hematopoyéticas única 15. Aunque el tamaño así, el número y forma se puede ajustar para aplicaciones específicas, la eficacia de aislamiento de una sola célula se ve comprometida siempre cuando se aumenta el tamaño del pozo. 9,15

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Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a grant from the National Health Research Institutes (03-A1 BNMP11-014).

Materials

AutoCAD software Autodesk AutoCAD LT 2011 Part No. 057C1-74A111-1001
Silicon wafer  Eltech corperation SPE0039
Conventional oven YEONG-SHIN company ovp45
Plasma cleaner Nordson AP-300 Bench-Top Plasma Treatment System
SU-8 50 negative photoresist MicroChem Y131269
SU-8 100 negative photoresist MicroChem Y131273
Spin coater Synrex Co., Ltd. SC-HMI 2" ~ 6"
Hotplate YOTEC company YS-300S
Msak aligner Deya Optronic CO. A1K-5-MDA
SU-8 developer Grand Chemical Companies GP5002-000000-72GC Propylene glycol monomethyl ether acetate
Scanning laser profilometer KEYENCE VK-X 100
Trichlorosilane Gelest, Inc SIT8174.0 TRIDECAFLUORO-1,1,2,2-TETRAHYDROOCTYL.  Hazardous. Corrosive to the respiratory tract., reacts violently with water.
Desiccator Bel-Art Products  F42020-0000 SPACE SAVER VACUUM DESICCATOR 190MM WHITE BASE
Polydimethylsiloxane (PDMS) kit Dow corning Sylgard 184
Harris Uni-Core puncher Ted Pella Inc. 15072 with 0.75 mm inner-diameter
Removable tape 3M Company Scotch Removable Tape 811
Stereomicroscope Leica Microsystems Leica E24
Bovine serum albumin (BSA) Bersing Technology ALB001.500
DMEM basal medium Gibco 12800-017
Fetal bovine serum Thermo Hyclone SH30071.03HI
Antibiotics Biowest L0014-100 Glutamine-Penicillin-Streptomycin
Recombinant enzyme mixture Innovative cell technology AM-105 Accumax
DiIC12(3) cell membrane dye BD Biosciences 354218 Used as a cell tracker
Syringe pump Harvard Apparatus 703007
Plastic syringe (1 mL) BD Biosciences 309659
23 gauge blunt needles Ever Sharp Technology, Inc. TD21
Poly-tetrafluoroethene (PTFE) tubing Ever Sharp Technology, Inc. TFT-23T  inner diameter, 0.51 mm; outer diameter, 0.82 mm

References

  1. Meacham, C. E., Morrison, S. J. Tumour heterogeneity and cancer cell plasticity. Nature. 501 (7467), 328-337 (2013).
  2. Vermeulen, L., et al. Single-cell cloning of colon cancer stem cells reveals a multi-lineage differentiation capacity. P Natl Acad Sci USA. 105 (36), 13427-13432 (2008).
  3. Shapiro, H. M. . Practical flow cytometry. , (2005).
  4. Leong, K. G., Wang, B. E., Johnson, L., Gao, W. Q. Generation of a prostate from a single adult stem cell. Nature. 456 (7223), 804-808 (2008).
  5. Shapiro, E., Biezuner, T., Linnarsson, S. Single-cell sequencing-based technologies will revolutionize whole-organism science. Nat Rev Genet. 14 (9), 618-630 (2013).
  6. Rettig, J. R., Folch, A. Large-scale single-cell trapping and imaging using microwell arrays. Anal. Chem. 77 (17), 5628-5634 (2005).
  7. Liu, J., et al. Soft fibrin gels promote selection and growth of tumorigenic cells. Nat Mater. 11 (8), 734-741 (2012).
  8. Charnley, M., Textor, M., Khademhosseini, A., Lutolf, M. P. Integration column: microwell arrays for mammalian cell culture. Integr. Biol. 1 (11-12), 11-12 (2009).
  9. Lindstrom, S., et al. High-density microwell chip for culture and analysis of stem cells. PloS one. 4 (9), e6997 (2009).
  10. Lin, C. H., et al. A microfluidic dual-well device for high-throughput single-cell capture and culture. Lab Chip. 15 (14), 2928-2938 (2015).
  11. Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography. Angew Chem Int Edit. 37 (5), 550-575 (1998).
  12. Shin, Y., et al. Microfluidic assay for simultaneous culture of multiple cell types on surfaces or within hydrogels. Nat Protoc. 7 (7), 1247-1259 (2012).
  13. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr. Protoc. Immunol. Appendix 3 (Appendix 3B), (2001).
  14. Lindstrom, S., Andersson-Svahn, H. Miniaturization of biological assays – Overview on microwell devices for single-cell analyses. Bba-Gen Subjects. 1810 (3), 308-316 (2011).
  15. Lecault, V., et al. High-throughput analysis of single hematopoietic stem cell proliferation in microfluidic cell culture arrays. Nat Methods. 8 (7), 581-593 (2011).
  16. Park, J. Y., et al. Single cell trapping in larger microwells capable of supporting cell spreading and proliferation. Microfluid Nanofluid. 8 (2), 263-268 (2010).
  17. Tirino, V., et al. Cancer stem cells in solid tumors: an overview and new approaches for their isolation and characterization. FASEB J. 27 (1), 13-24 (2013).
  18. Chen, P. C., Huang, Y. Y., Juang, J. L. MEMS microwell and microcolumn arrays: novel methods for high-throughput cell-based assays. Lab Chip. 11 (21), 3619-3625 (2011).
  19. Liang, P., et al. Drug Screening Using a Library of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes Reveals Disease-Specific Patterns of Cardiotoxicity. Circulation. 127 (16), 1677-1691 (2013).

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Citer Cet Article
Lin, C., Chang, H., Hsu, C. A Microfluidic Platform for High-throughput Single-cell Isolation and Culture. J. Vis. Exp. (112), e54105, doi:10.3791/54105 (2016).

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