Summary

Колориметрический метод измерения содержания железа в растениях

Published: September 07, 2018
doi:

Summary

Мы представляем простой и надежный протокол для измерения содержания железа в тканях растений, с помощью метода колориметрические лазурь.

Abstract

Железо, один из самых важных микроэлементов в живых организмов, участвует в основных процессов, таких как дыхания и фотосинтеза. Содержание железа является довольно низким во всех организмах, равнозначно примерно 0,009% от сухого веса в растениях. На сегодняшний день, один из наиболее точных методов для измерения концентрации железа в тканях растений является пламя атомной абсорбционной спектроскопии. Однако этот подход является длительным и дорогостоящим и требует специального оборудования, не встречаются в лабораториях завода. Поэтому необходима более простой, но точный метод, который может использоваться регулярно. Колориметрический метод лазурь регулярно используется для качественного железа, пятнать в гистологических срезах животных и растений. В этом исследовании мы адаптировали лазурь, метод для количественных измерений железа в табачных листьев. Мы проверить точность этого метода, с помощью атомной спектроскопии и лазурь пятнать измерить содержание железа в том же образцах и нашли линейной регрессии (R2 = 0.988) между этими двумя процедурами. Мы заключаем, что метод лазурь для измерения количественных железа в тканях растений точный, простой и недорогой. Однако линейной регрессии, представленные здесь могут не подходить для других видов растений, из-за потенциального взаимодействия между образцом и реагент. Создание кривой регрессии таким образом необходима для различных видов растений.

Introduction

Железо (Fe) является важным микроэлементов во всех живых организмах. В растениях это важнейших микроэлементов1 из-за его участия в основных процессов, таких как биосинтеза хлорофилла, дыхание и фотосинтез. Высокое накопление ионов свободного железа вредно для растительных клеток за счет реакции, ведущие к освобождению свободных радикалов, вызывая оксидативного стресса. Для поддержания гомеостаза железа в растительной клетке, ионы хранятся в вакуоли и поглощенных внутри ferritins, белок клеток, непосредственно участвующих в Железный гомеостаза2 и структуры основного хранения железа во всех живых организмах. В то же время железо дефицитной анемии затрагивает значительную долю населения, привело растущую потребность растений рекомендовавшая Fe. Благодаря уникальным свойствам растений ферритина обогащение пищи с ферритина железом предлагает перспективные стратегии для борьбы с этой проблемой недоедания3.

Ионы железа, главным образом в двух окисления, а именно черных (двухвалентной Fe2 + или железа (II)) и железа (Fe трехвалентного3 + или железа (III)) формы. Несколько других форм железа, например кластеров железа4, также находятся в клетках. FE хранится в виде оксида железа в клетки и естественно форм hematites (Fe2O3) и ferryhidrites ((Fe)3 +2O3•0.5 H2O) при физиологических условиях5. Гидроксиды, сформированные в этих реакциях, особенно железа форме, имеют очень низкую растворимость. Удержание железа поэтому зависит от рН раствора и в значительной степени в твердом состоянии выше рН 5-6.

Учитывая плохая растворимость и высокая реакционная способность Fe ее передачи среди растительных тканей и органов должен быть связан с подходящим хелатирующий молекул. Кроме того необходимо контролировать его редокс государств между черной и железа формы1 . В листьях около 80% железа находится в фотосинтезирующих клеток, из-за ее существенную роль в транспортная система электронов, в биосинтезе цитохромов, хлорофилл и других молекул гема и в формировании Fe-S7кластеров. В случае железа избыток в ячейке излишек является перемещен в вакуоль, где Металл хранится в ферритина молекул8.

Железо может измеряться в тканях растений на несколько методов, включая пламени атомной абсорбционной спектроскопии9 (ФААС) или колориметрический анализов10, бывший, будучи гораздо более точным, чем последний. ФААС это очень точная техника, которая позволяет одному определить химический состав выборки на основе электромагнитного излучения отдельных элементов. ФААС преобразует ионов металлов в атомной государствам, пламя Отопление образца, привело к Ион возбуждения и выбросов определенной длины волны, когда данный Ион возвращается в состояние земли. Выбросы из различных ионов разделенных монохроматора и обнаружен датчик поглощения11. ФААС таким образом служит для непосредственно количественного определения концентрации железа. Другие методы для визуализации железа в биологических тканях доступны, однако. Индуктивно связанная плазма масс-спектрометрия (ИСП-МС)12 является очень точный метод измерения железа и других микроэлементов, но отсутствие оборудования, как для ФААС и ИСП-МС, является общей проблемой. С другой стороны измерения железа тиоцианат колориметрии13 недостает точности и не удается обнаружить небольшие вариации между выборками. Прусский синий окрашивание,14,,151617 это косвенный метод, основанный на реакции железа Ферроцианид калия (K4Fe(CN)6) с катионов Fe, производство сильный синий цвет и используется для обнаружения качественной железа в гистологических срезах тканей животных и растений.

Металлические (нулевой Валент) железо является редким в литосфере. Доминирующей не complexed ионной форме железа в окружающей среде основном диктуется количество кислорода в окрестностях, с будучи относительно более обильные в анаэробной среде черных и железа чугуна, преобладающая в аэробных сайтов. Эта последняя форма также является доминирующей в крайне-кислых средах, хотя возбудители черных железа окисления часто отличаются в анаэробных и кислой окрестности18. Когда железа солюбилизирован в 4% HCl (рН 0) в аэробных условиях, большая часть разреженных железа существует как железа (Fe)3 +19,20.

Реакции между ионами Fe и K4Fe(CN)6 являются следующие:

FE3 +: FeCl K4Fe(CN)6 +3 = KFe(III)Fe(II)(CN)6¯ + 3KCl

FE2 +: 4 FeCl2 + 2 K4Fe(CN)6 =4(Fe(CN)6) Fe2 + 8 KCl

В настоящем исследовании мы спросили ли Прусский голубой окраски может быть полезен для измерения уровня железа в растворе.

Первоначально мы проверили корреляции между концентрацией Fe в водном растворе и прусского синего окрашивания. Концентрация в водных растворах Fe (как FeCl2, FeCl3 или 1:1 смесь двух) был измерен атомной спектроскопии и поглощения (OD) после добавления лазурь. Рисунок 1 показывает кривые линейной регрессии для измерений, полученных каждым методом. Мы пришли к выводу, что Прусский синий метод может использоваться для количественного анализа концентрации железа в растворе.

Figure 1
Рисунок 1: линейной регрессии между Fe концентрация измеряется ФААС и поглощения света (OD, 715 Нм) получены методом Прусский синий. Синие квадраты и линии представляют собой Fe2 + решение, красные квадраты и линии представляют собой решение3 + Fe и черные квадраты и линии представляют собой смесь 1:1 между Fe2 + и Fe3 +. Были получены следующие регрессии: [Fe2 +] = 3 + 123 x ОД, r = 0.996, R2 = 0.989; [Fe3 +] = 1 + 292 x ОД, r = 0,999, R2 = 0,997; и [Fe2 +/ 3 +] = 11 + 146 x ОД, r = 0.983, R2 = 0.956. Fe2 + доноров был FeCl2 и Fe3 + доноров был FeCl3. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Адаптировать колориметрические Прусский синий метод для анализа количественных железа растительных тканей, содержание железа табачных листьев пепел был измерен пламени атомной абсорбционной спектроскопии и Прусский синий окрашивания. Там была хорошая корреляция между результаты из двух методов.

Protocol

1. завод материал и условия роста Семян один табака (сорт Самсун) семян на 5 х 5 см горшок заполнены среднего стандарта горшок. Поместите горшки на поддоны. Растут растения в комнате роста в условиях насыщенного дня (16/8 h свет/темно) при постоянной температуре 23 ° c. Орошения с водопрово…

Representative Results

Когда этот протокол осуществляется правильно, один должен получить отличную корреляцию между результаты, полученные методами Прусский синий и атомной спектроскопии. Таким образом метод Прусский синий может легко использоваться для получения точного измерения конц?…

Discussion

Измерения железа в тканях растений очень важно для оценки влияния орошения или других экологических условий. Здесь мы описали, легкой и точной колориметрический метод для Fe содержимого измерения в табачных листьев, которые могут быть легко адаптированы для других видов растений и тка?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Израиля Министерства науки, технологии и Spaceand грант от главного ученого израильского министерства сельского хозяйства (#16-16-0003).

Materials

Potassium Hexacyanoferrate(II) Fisher Chemical 14459-95-1 Reagent for the Pussian Blue
Millex Syringe Filter Unit, Vial Vent 0.22 μm Millec SLGP033RS Filter used to filter the ashes + 4% HCl Solution
Scintillation Vials Fisherbrand 03-337-4 Used to keep the dry powdered plant material during the burning procedure.
Disposable Syringe 10 ml Medi-Plus 1931 Syringe used during the filtration
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 231-595-7 Used in the 4% HCl solution to dilute the ashes and clean the materials
Tobacco, Nicotiana tabacum cv. Samsun NN Obtained from Prof. Simon Barak and routinely used in the Zaccai Lab Barak S, Nejidat A, Heimer Y, Volokita M. Transcriptional and posttranscriptional regulation of the glycolate oxidase gene in tobacco seedlings. Plant Molecular Biology. 2001 Mar 1;45(4):399-407. Tobacco cultivar used in this protocol
Glass Wool (Rock Wool) Sigma-Aldrich 659997-17-3 Used in the procedure of burning samples in the furnace.

References

  1. Kobayashi, T., Nishizawa, N. K. Iron uptake, translocation, and regulation in higher plants. Annual Review of Plant Biology. 63 (1), 131-152 (2012).
  2. Bradley, J. M., Le Brun, N. E., Moore, G. R. Ferritins: Furnishing proteins with iron. Journal of Biological Inorganic Chemistry. 21 (1), 13-28 (2012).
  3. Zielińska-Dawidziak, M. Plant ferritin – a source of iron to prevent its deficiency. Nutrients. 7 (2), 1184-1201 (2015).
  4. Johnson, D. C., Dean, D. R., Smith, A. D., Johnson, M. K. Structure, function, and formation of biological iron-sulfur clusters. Annual Review of Biochemistry. 74 (1), 247-281 (2015).
  5. Guo, H., Barnard, A. S. Naturally occurring iron oxide nanoparticles: morphology, surface chemistry and environmental stability. Journal of Materials Chemistry A. 1 (1), 27-42 (2013).
  6. Hem, J. D., Cropper, W. H. Chemistry of iron in natural water. Report US Geological Survey. , 1-31 (1962).
  7. Rout, G. R., Sahoo, S. Role of iron in plant growth and metabolism. Reviews in Agricultural Science. 3, 1-24 (2015).
  8. Speretto, R. A., Ricachenevsky, F. K., Stein, R. J., de Abreu Waldow, V., Fett, J. P. Iron stress in plants Dealing with deprivation and overload. Plant Stress. 4, 57-69 (2010).
  9. Tautkus, S., Steponeniene, L., Kazlauskas, R. Determination of iron in natural and mineral waters by flame atomic absorption spectrometry. Journal of the Serbian Chemical Society. 69 (5), 393-402 (2006).
  10. Braunschweig, J., Bosch, J., Heister, K., Kuebeck, C., Meckenstock, R. U. Reevaluation of colorimetric iron determination methods commonly used in geomicrobiology. Journal of Microbiological Methods. 89 (1), 41-48 (2012).
  11. PerkinElmer. . Atomic Spectroscopy – Guide to Selecting the Appropriate Technique and System. 16, (2011).
  12. Wachasunder, S. D., Nafade, A. Precision and accuracy control in the determination of heavy metals by atomic absorption spectrometry. Science. 58, 517-528 (2001).
  13. Woods, J. T., Mellon, M. G. Thiocyanate method for iron. A spectrophotometric study. Industrial & Engineering Chemistry Analytical Edition. 13 (8), 551-554 (1941).
  14. Perls, M. Nachweis von Eisenoxyd in gewissen Pigmenten. Virchows Archiv Fur Pathologische Anatomie Und Physiologie Und Fur Klinische Medizin. 39 (1), 42-48 (1867).
  15. Connorton, J. M., Jones, E. R., Rodriguez-Ramiro, I., Fairweather-Tait, S., Uauy, C., Balk, J. Altering expression of a vacuolar iron transporter doubles iron content in white wheat flour. bioRxiv. , 1-25 (2017).
  16. de la Fuente, V., Rufo, L., Rodríguez, N., Franco, A., Amils, R. Comparison of iron localization in wild plants and hydroponic cultures of Imperata cylindrica (L.) P. Beauv. Plant Soil. 418 (1-2), 25-35 (2017).
  17. Hsiao, P. Y., Cheng, C. P., Koh, K. W., Chan, M. T. The Arabidopsis defensin gene, AtPDF1.1, mediates defence against Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum via an iron-withholding defence system. Science Reports. 7 (1), 1-14 (2017).
  18. Johnson, D. B., Kanao, T., Hedrich, S. Redox transformations of iron at extremely low pH: Fundamental and applied aspects. Frontiers in Microbiology. 3, 1-13 (2012).
  19. Stumm, W., Lee, G. F. Oxygenation of ferrous iron. Industrial & Engineering Chemistry. 53 (2), 143-146 (1961).
  20. Jones, A. M., Griffin, P. J., Collins, R. N., Waite, T. D. Ferrous iron oxidation under acidic conditions – The effect of ferric oxide surfaces. Geochimica et Cosmochimica Acta. 145, 1-12 (2014).
  21. Hawkesworth, C. J., Kemp, A. I. S. Evolution of the continental crust. Nature. 443 (7113), (2006).
  22. Thompson, L. M., Louis, M., Troeh, F. R., Thompson, L. M. . Soils and soil fertility. , (1973).
  23. Krueger, B. J., Grassian, V. H., Cowin, J. P., Laskin, A. Heterogeneous chemistry of individual mineral dust particles from different dust source regions: The importance of particle mineralogy. Atmospheric Environment. 38 (36), 6253-6261 (2004).
  24. Bewick, V., Cheek, L., Ball, J. Statistics review 7: Correlation and regression. Journal of Critical Care. 7 (6), 451-459 (2003).
  25. Asuero, A. G., Sayago, A., González, A. G. The correlation coefficient: An overview. Critical Reviews in Analytical Chemistry. 36 (1), 41-59 (2006).
  26. . Analytical Chemistry. Calibration Curves Available from: https://www.jove.com/science-education/10188/calibration-curves (2018)
check_url/fr/57408?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Gitz, J. C., Sadot, N., Zaccai, M., Zarivach, R. A Colorimetric Method for Measuring Iron Content in Plants. J. Vis. Exp. (139), e57408, doi:10.3791/57408 (2018).

View Video